Summary

Utilisation de la séquence d'arrêt SecM comme un outil pour isoler les polypeptides Ribosome Bound

Published: June 19, 2012
doi:

Summary

Nous décrivons ici une technique qui est maintenant couramment utilisé pour isoler de manière stable liés ribosome complexes de la chaîne naissante (RNC). Cette technique tire parti de la découverte que de 17 acides aminés de long "séquence d'arrêt" SecM peut arrêter élongation de la traduction dans un procaryote (<em> E. coli</em>) Du système, lorsqu'il est inséré dans (ou fusionné à l'extrémité C-terminale) de pratiquement toute la protéine.

Abstract

Des recherches approfondies ont fourni des preuves suffisantes indiquant que repliement des protéines dans la cellule est un processus de co-traductionnelle 1-5. Toutefois, la voie exacte que la chaîne polypeptide suit au cours de co-traductionnelle de pliage pour réaliser sa forme fonctionnelle est encore une énigme. Afin de comprendre ce processus et de déterminer la conformation exacte des intermédiaires co-traductionnelles de pliage, il est essentiel de développer des techniques qui permettent l'isolement des porteurs de chaînes naissantes RNC de tailles prédéterminées afin de permettre leur analyse ultérieure structurelle.

SecM (moniteur sécrétion) est un acide aminé 170 E. protéines coli qui régule l'expression de l'aval Seca (conduite sécrétion) ATPase dans l'opéron SECM-secA 6. Nakatogawa et Ito initialement que une séquence de 17 acides aminés de longueur (G 150-FSTPVWISQA QGIRA P-166) dans la région C-terminale de la protéine SecM est nécessaire et suffisant pourprovoquer de décrochage de l'allongement SecM à Gly165, produisant ainsi peptidyl-glycyl-ARNt stable lié à la ribosomal P place 7-9. Plus important encore, il a été constaté que cette séquence de 17 acides aminés de long peut être fusionné à l'extrémité C-terminale de pratiquement n'importe quelle protéine de pleine longueur et / ou tronquée permettant ainsi la production de RNC porteurs de chaînes naissantes de tailles prédéterminées 7. Ainsi, lorsqu'il est fondu ou est insérée dans la protéine cible, la séquence de décrochage SecM produit arrêt de l'allongement de la chaîne polypeptidique et génère RNC stables in vivo dans E. coli et les cellules in vitro dans un système acellulaire. Centrifugation en gradient de saccharose est en outre utilisé pour isoler RNC.

Les RNC isolés peuvent être utilisés pour analyser les caractéristiques structurales et fonctionnelles des intermédiaires co-traductionnelles de pliage. Récemment, cette technique a été utilisée avec succès pour mieux comprendre la structure de plusieurs chaînes de ribosomes liés naissantes 10,11. Ici on décrit l'isolement de bovin gamma-B cristallin fusionné à RNC SecM et généré dans un système de traduction in vitro.

Protocol

1. Préparation Patron de l'ADN et la transcription in vitro Le gène d'intérêt est cloné dans un T7 et / ou, par exemple sur la base promoteur SP6 plasmide. Pour obtenir RNC d'intérêt, C-terminale du polypeptide cible est étendu par adjonction séquence inducteur d'arrêt de SecM FXXXXWIXXXXGIRAGP 7. Afin d'assurer que le fragment polypeptide d'intérêt se extruder hors du tunnel ribosomique, la partie C-terminale de la protéine cible doit être au…

Discussion

Pour obtenir des résultats reproductibles, la qualité et la concentration des composants utilisés pour la transcription in vitro et la traduction sont essentielles. Nous avons utilisé commercialement disponibles dans la transcription in vitro et des extraits de la traduction et elles donnent des résultats efficaces et reproductibles, s'il est manipulé avec soin. Qualité de l'ARNm peut affecter la traduction, de sorte qu'il est d'une importance capitale pour test…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été financé par Human Frontier Science Program de subvention RGP0024.

Materials

Name of reagent/ Kit Company Catalogue number
MEGAscript T7 High yield Transcription Kit Ambion AM1333
RTS 100 E.coli HY Kit 5 Prime 2401100
Ribonuclease Inhibitor Invitrogen 15518012
Trans [35S]-Label MP Biomedicals 0151006
Amicon Ultra-4 Centrifugal Filter Unit Millipore UFC801008
Storage phosphor autoradiography GE Healthcare Typhoon 9410 variable mode imager
Density Gradient Fractionation Systems Teledyne Isco, Inc. ISCO Programmable Density Gradient System
Sucrose Gradient Centrifugation Beckman Coulter Optima L-90 K Preparative Ultracentrifuge

References

  1. Fedorov, A. N., Baldwin, T. O. Cotranslational protein folding. J. Biol. Chem. 272, 32715-32718 (1997).
  2. Hardesty, B., Kramer, G. Folding of a nascent peptide on the ribosome. Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 66, 41-66 (2001).
  3. Kramer, G., Boehringer, D., Ban, N., Bukau, B. The ribosome as a platform for co-translational processing, folding and targeting of newly synthesized proteins. Nat. Struct. Mol. Biol. 16, 589-597 (2009).
  4. Komar, A. A. A pause for thought along the co-translational folding pathway. Trends Biochem. Sci. 34, 16-24 (2009).
  5. Cabrita, L. D., Dobson, C. M., Christodoulou, J. Protein folding on the ribosome. Curr. Opin. Struct. Biol. 20, 33-45 (2010).
  6. Oliver, D., Norman, J., Sarker, S. Regulation of Escherichia coli secA by cellular protein secretion proficiency requires an intact gene X signal sequence and an active translocon. J. Bacteriol. 180, 5240-5242 (1998).
  7. Nakatogawa, H., Ito, K. The ribosomal exit tunnel functions as a discriminating gate. Cell. 108, 629-636 (2002).
  8. Nakatogawa, H., Ito, K. Secretion monitor, SecM, undergoes self-translation arrest in the cytosol. Mol. Cell. 7, 185-192 .
  9. Muto, H., Nakatogawa, H., Ito, K. Genetically encoded but non polypeptide prolyl-tRNA functions in the A site for SecM-mediated ribosomal stall. Mol. Cell. 22, 545-552 (2006).
  10. Cabrita, L. D., Hsu, S. T., Launay, H., Dobson, C. M., Christodoulou, J. Probing ribosome-nascent chain complexes produced in vivo by NMR spectroscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 22239-22244 (2009).
  11. Eichmann, C., Preissler, S., Riek, R., Deuerling, E. Cotranslational structure acquisition of nascent polypeptides monitored by NMR spectroscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 107, 9111-9116 (2010).
  12. Kolb, V. A., Makeyev, E. V., Spirin, A. S. Enzymatic activity of the ribosome-bound nascent polypeptide. FEBS Lett. 378, 166-170 (1996).
  13. Ban, N., Nissen, P., Hansen, J., Moore, P. B. The complete atomic structure of the large ribosomal subunit at 2.4 Å resolution. Science. 289, 905-920 (2000).
  14. Voss, N. R., Gerstein, M., Steitz, T. A., Moore, P. B. The geometry of the ribosomal polypeptide exit tunnel. J. Mol. Biol. 360, 893-906 (2006).
  15. Schägger, H., von Jagow, G. Tricine-sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis for the separation of proteins in the range from 1 to 100 kDa. Anal. Biochem. 166, 368-379 (1987).
  16. Komar, A. A., Kommer, A., Krasheninnikov, I. A., Spirin, A. S. Cotranslational folding of globin. J. Biol. Chem. 272, 10646-10651 (1997).
  17. Keiler, K. C., Waller, P. R., Sauer, R. T. Role of a peptide tagging system in degradation of proteins synthesized from damaged messenger RNA. Science. 271, 990-993 (1996).
  18. Evans, M. S., Ugrinov, K. G., Frese, M. A., Clark, P. L. Homogeneous stalled ribosome nascent chain complexes produced in vivo or in vitro. Nat. Methods. 2, 757-762 (2005).
check_url/4027?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Jha, S. S., Komar, A. A. Using SecM Arrest Sequence as a Tool to Isolate Ribosome Bound Polypeptides. J. Vis. Exp. (64), e4027, doi:10.3791/4027 (2012).

View Video