Summary

Ribozom Ciltli Polipeptitler izole bir aracı olarak SECM Tutuklanma sırası kullanılarak

Published: June 19, 2012
doi:

Summary

Biz burada artık rutin stabil bağlı ribozom doğmakta olan zincir kompleksleri (RNCs) izole etmek için kullanılan bir tekniği açıklar. Bu teknik bir 17 amino asit uzunluğunda SECM "tutuklama" dizisi bir prokaryotik çeviri uzama durdurmak olduğunu keşif yararlanır (<em> E. coli</em> Hemen hemen herhangi bir proteinin (ya da C-terminali ile kaynaşmış) içine yerleştirilir) sistem.

Abstract

Kapsamlı araştırma hücrede protein katlanması eş öteleme işlemi 1-5 olduğunu düşündüren yeterli kanıt sağlamıştır. Ancak, polipeptid zinciri işlevsel formunu elde etmek için işbirliği translasyonal katlama sırasında izlediği kesin yolu hala bir muammadır. Bu proses anlamak ve co-translasyon katlama aramaddelerinin tam konformasyon belirlemek amacıyla, bu da daha fazla yapısal analizi izin vermek için önceden belirlenmiş bir büyüklükteki olgunlaşmamış zincirler taşıyan RNCs izolasyonu izin teknikleri geliştirmek için gereklidir.

SECM (sekresyon monitör) 170 amino asit olan E. SECM-seca operon 6 içerisinde aşağı SecA (salgılanması sürüş) ATPase ekspresyon düzenleyen coli proteini. Nakatogawa ve Ito başlangıçta SECM proteininin C-ucu bölgesi içinde bir 17 amino asit sekansı, uzun (150-FSTPVWISQA QGIRA g p-166) için yeterli ve gerekli olduğu bulunduböylece peptidil-glisil-tRNA stabil 7-9 P-site ribozomal bağlı üreten, Gly165 az SECM uzama durmasına neden olur. Daha da önemlisi, bu 17 amino asit sekansı, uzun, böylece önceden belirlenmiş boyutlardaki 7 olgunlaşmamış zincirler taşıyan RNCs üretimini sağlayan hemen hemen herhangi bir tam uzunlukta ve / veya kesilmiş proteininin C-ucu oluşturacak şekilde eklenebilir olduğu bulunmuştur. Böylece, hedef proteinin içine kaynaşmış ya takıldığında, SECM durdurduklarını sekansı polipeptid zinciri uzama durması üretir ve E. in vivo hem de istikrarlı RNCs üretir coli hücreleri ve hücre içermeyen sisteminde in vitro. Sakkaroz degrade santrifüj daha RNCs izole etmek için kullanılır.

İzole RNCs co-translasyon katlama aramaddelerinin yapısal ve fonksiyonel özellikleri analiz etmek için kullanılabilir. Son zamanlarda, bu tekniğin başarılı birçok ribozom bağlı doğmakta zincirleri 10,11 yapısı içgörü kazanmak için kullanılmıştır. Burada sığır Gamma-B kristalen izolasyonu tarif SECM için erimiş ve in vitro çeviri sistemi bir oluşturulur RNCs.

Protocol

1. Şablon DNA hazırlanması ve in vitro transkripsiyonu sonucunda Ilgi genindeki bir T7 ve / veya örneğin plazmid göre SP6 promoter içinde klonlanmış edilir. Ilgi RNCs elde etmek için, polipeptid hedef C-terminali SECM FXXXXWIXXXXGIRAGP 7 durması indükleyici dizisinin eklenmesi ile uzar. Ilgi polipeptid fragmanı ribozom tünel dışarı a'ya emin olmak için, hedef protein C-ucu kısmı 12-14, en azından 30 amino asitleri ile uzatılabilir zorundadır. Esnek bir…

Discussion

In vitro transkripsiyonu ve çeviri için kullanılan bileşenlerin tekrarlanabilir sonuçlar, kalite ve konsantrasyonu için kritiktir. Biz in vitro transkripsiyon ve çeviri özleri içinde piyasaya kullanmış ve dikkatli eğer onlar, verimli ve tekrarlanabilir sonuçlar verir. MRNA Kalite çeviri etkileyebilir, bu nedenle in vitro çeviri için kullanmadan önce mRNA bütünlüğünü test etmek için büyük önem taşımaktadır. In vitro çeviri için inkübas…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma İnsan Frontier Bilim Programı hibe RGP0024 tarafından finanse edildi.

Materials

Name of reagent/ Kit Company Catalogue number
MEGAscript T7 High yield Transcription Kit Ambion AM1333
RTS 100 E.coli HY Kit 5 Prime 2401100
Ribonuclease Inhibitor Invitrogen 15518012
Trans [35S]-Label MP Biomedicals 0151006
Amicon Ultra-4 Centrifugal Filter Unit Millipore UFC801008
Storage phosphor autoradiography GE Healthcare Typhoon 9410 variable mode imager
Density Gradient Fractionation Systems Teledyne Isco, Inc. ISCO Programmable Density Gradient System
Sucrose Gradient Centrifugation Beckman Coulter Optima L-90 K Preparative Ultracentrifuge

References

  1. Fedorov, A. N., Baldwin, T. O. Cotranslational protein folding. J. Biol. Chem. 272, 32715-32718 (1997).
  2. Hardesty, B., Kramer, G. Folding of a nascent peptide on the ribosome. Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 66, 41-66 (2001).
  3. Kramer, G., Boehringer, D., Ban, N., Bukau, B. The ribosome as a platform for co-translational processing, folding and targeting of newly synthesized proteins. Nat. Struct. Mol. Biol. 16, 589-597 (2009).
  4. Komar, A. A. A pause for thought along the co-translational folding pathway. Trends Biochem. Sci. 34, 16-24 (2009).
  5. Cabrita, L. D., Dobson, C. M., Christodoulou, J. Protein folding on the ribosome. Curr. Opin. Struct. Biol. 20, 33-45 (2010).
  6. Oliver, D., Norman, J., Sarker, S. Regulation of Escherichia coli secA by cellular protein secretion proficiency requires an intact gene X signal sequence and an active translocon. J. Bacteriol. 180, 5240-5242 (1998).
  7. Nakatogawa, H., Ito, K. The ribosomal exit tunnel functions as a discriminating gate. Cell. 108, 629-636 (2002).
  8. Nakatogawa, H., Ito, K. Secretion monitor, SecM, undergoes self-translation arrest in the cytosol. Mol. Cell. 7, 185-192 .
  9. Muto, H., Nakatogawa, H., Ito, K. Genetically encoded but non polypeptide prolyl-tRNA functions in the A site for SecM-mediated ribosomal stall. Mol. Cell. 22, 545-552 (2006).
  10. Cabrita, L. D., Hsu, S. T., Launay, H., Dobson, C. M., Christodoulou, J. Probing ribosome-nascent chain complexes produced in vivo by NMR spectroscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 22239-22244 (2009).
  11. Eichmann, C., Preissler, S., Riek, R., Deuerling, E. Cotranslational structure acquisition of nascent polypeptides monitored by NMR spectroscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 107, 9111-9116 (2010).
  12. Kolb, V. A., Makeyev, E. V., Spirin, A. S. Enzymatic activity of the ribosome-bound nascent polypeptide. FEBS Lett. 378, 166-170 (1996).
  13. Ban, N., Nissen, P., Hansen, J., Moore, P. B. The complete atomic structure of the large ribosomal subunit at 2.4 Å resolution. Science. 289, 905-920 (2000).
  14. Voss, N. R., Gerstein, M., Steitz, T. A., Moore, P. B. The geometry of the ribosomal polypeptide exit tunnel. J. Mol. Biol. 360, 893-906 (2006).
  15. Schägger, H., von Jagow, G. Tricine-sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis for the separation of proteins in the range from 1 to 100 kDa. Anal. Biochem. 166, 368-379 (1987).
  16. Komar, A. A., Kommer, A., Krasheninnikov, I. A., Spirin, A. S. Cotranslational folding of globin. J. Biol. Chem. 272, 10646-10651 (1997).
  17. Keiler, K. C., Waller, P. R., Sauer, R. T. Role of a peptide tagging system in degradation of proteins synthesized from damaged messenger RNA. Science. 271, 990-993 (1996).
  18. Evans, M. S., Ugrinov, K. G., Frese, M. A., Clark, P. L. Homogeneous stalled ribosome nascent chain complexes produced in vivo or in vitro. Nat. Methods. 2, 757-762 (2005).
check_url/4027?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Jha, S. S., Komar, A. A. Using SecM Arrest Sequence as a Tool to Isolate Ribosome Bound Polypeptides. J. Vis. Exp. (64), e4027, doi:10.3791/4027 (2012).

View Video