Summary

Mapeamento bacterianas redes funcionais e vias<em> Escherichia Coli</em> Usando sintéticos matrizes genéticas

Published: November 12, 2012
doi:

Summary

Sistemáticas e em grande escala genético sintético telas (gene-gene ou epistasia) interação pode ser usado para explorar a redundância genética e via de cross-talk. Aqui, descrevemos um alto rendimento quantitativo tecnologia de rastreamento genético sintético matriz, denominada eSGA que desenvolvemos para a elucidação de relações epistáticos e explorar redes de interação genéticos em<em> Escherichia coli</em>.

Abstract

Fenótipos são determinados por uma série complexa de física (por exemplo, proteína-proteína) e funcionais (por exemplo, gene-gene ou genética) interacções (GI) 1. Enquanto interações físicas podem indicar que as proteínas bacterianas estão associadas como complexos, eles não revelam necessariamente via de nível relationships1 funcionais. Telas de GI, em que o crescimento de mutantes duplos tendo dois genes eliminados ou inactivados é medida e comparada com os mutantes correspondentes individuais, pode iluminar dependências epistáticos entre loci e, portanto, proporcionam um meio para consultar e descobrir novas relações funcionais 2. Mapas de grande escala GI foram relatados por organismos eucarióticos como o fermento 3-7, mas a informação GI permanece escassa para procariontes 8, o que dificulta a anotação funcional de genomas bacterianos. Para este fim, e outros desenvolveram alto rendimento quantitativo bacterianas métodos de rastreio de IG 9, 10 </sup>.

Aqui, apresentamos os principais passos necessários para realizar E. quantitativa coli Genetic Matriz Sintética procedimento de triagem (eSGA) em um genoma de escala-9, utilizando-se a conjugação bacteriana natural e recombinação homóloga para gerar sistematicamente e medir a aptidão de um grande número de mutantes duplos em um formato de matriz de colónia. Resumidamente, um robô é usado para transferir , através de conjugação, cloranfenicol (Cm) – marcado alelos mutantes de Hfr engenharia (alta freqüência de recombinação) 'linhagens doadoras em um conjunto ordenado de canamicina (Kan) – marcadas F-receptor cepas. Normalmente, usamos a perda de função de mutantes simples tendo deleções de genes não essenciais (por exemplo, a recolha de 'Keio' 11) e as mutações de genes essenciais hypomorphic (isto é, os alelos que conferem a expressão da proteína reduzida, a estabilidade, ou a actividade de 9, 12, 13) para consultar as associações funcionais de genes essenciais e não essenciais, resvamente. Após a conjugação e subsequente troca genética mediada por recombinação homóloga, os duplos mutantes resultantes são seleccionadas em meio sólido contendo ambos os antibióticos. Depois de conseqüência, as placas são digitalmente fotografada e tamanhos colônia são quantitativamente registados com um sistema interno de tratamento automatizado de imagem 14. IG são reveladas quando a taxa de crescimento de um mutante duplo ou é significativamente melhor ou pior do que 9 esperada. SIG (ou negativo) agravante muitas vezes resultam entre a perda de função de mutações em pares de genes de vias compensatórias que incidem sobre o mesmo processo essencial 2. Aqui, a perda de um único gene é tamponada, tal que um ou outro mutante único é viável. No entanto, a perda de ambas as vias é prejudicial e resulta em letalidade sintética ou de doença (isto é, crescimento lento). Inversamente, aliviando (ou positivos) podem ocorrer interacções entre os genes na mesma via ou a proteína do complexo 2, como odeleção de um ou outro gene sozinho é frequentemente suficiente para perturbar o funcionamento normal da via ou complexo de tal forma que as perturbações adicionais não reduzem a actividade, e, consequentemente, o crescimento adicional. No geral, a identificação sistemática e análise de redes de GI pode fornecer imparciais, mapas globais de relações funcionais entre um grande número de genes, dos quais via de informações em nível de perdida por outras abordagens podem ser inferidas 9.

Protocol

1. Construção de cepas mutantes HFR Doadores Cavalli por Recombineering 15, 16 Os passos para a construção dos corantes doadores eSGA são descritos abaixo. Resumidamente, usamos λ alvo – Red recombinação homóloga mediada 16 da cassete seleccionável amplificado de ADN marcador de fragmentos gerados por PCR, para criar não essenciais mutantes de deleção de genes (secção 1.1), ou de genes essenciais hypomorphic estirpes dadoras mutante (secç?…

Representative Results

GIs reveal functional relationships between genes. Similarly, since genes in the same pathway display similar GI patterns and the GI profile similarity represents the congruency of phenotypes, we can group functionally related genes into pathways by clustering their GI profiles. Integrating GI and GI correlation networks with physical interaction information or other association data, such as genomic context (GC) relationships can also reveal the organization of higher-order functional modules that define core bio…

Discussion

Temos delineado um protocolo passo a passo para a utilização de triagem eSGA robótico para investigar funções de genes bacterianos em um nível caminho interrogando GI. Esta abordagem pode ser usada para estudar os genes individuais, bem como os sistemas biológicos inteiras em E. coli. Cuidadosamente executar as etapas experimentais descritas acima, incluindo todos os controles apropriados, e rigorosamente análise e validação dos dados de forma independente GI são aspectos fundamentais para o sucesso …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado por fundos do Genome Canada, o Instituto Ontário Genomics, e os Institutos Canadenses de Pesquisa em Saúde de bolsas para JG e AG AE é um receptor de Vanier de Bolsas de Pós-Graduação no Canadá.

Materials

        I. Antibiotics 2 36471
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Chloramphenicol   Bioshop #CLR201   3 36472
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Kanamycin     #KAN201   4 36480
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Ampicillin     # AMP201   5 36473
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        2. Luria-Bertani medium 6 36474
Remove
LB powder   Bioshop #LBL405   7 36478
Remove
Agar   Bioshop #AGR003   8 36481
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        3. Bacterial Strains and Plasmids 9 36475
Remove
Hfr Cavalli strain λred system (JL238)   Babu et al.14.     10 36476
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pKD3   E. coli Genetic Stock Centre, Yale     11 36477
Remove
Keio E. coli F- recipient collection   National BioResource Project (NBRP) of Japan11     12 36479
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Hypomorphic E. coli F- SPA-tag strains   Open biosystems; Babu et al.14     13 36491
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        4. Primers 14 36486
Remove
pKD3-based desalted constant primers       F1: 5′-GGCTGACATGGGAATTAGC-3′
R1: 5′-AGATTGCAGCATTACACGTCTT-3′
15 36482
Remove
Desalted custom primers       Cm-R: 5′-TTATACGCAAGGCGACAAGG-3′
Cm-F: 5′- GATCTTCCGTCACAGGTAGG-3′
16 36483
Remove
Desalted custom primers       F2 and R2: 20 nt constant regions based on pKD3 sequence and 45 nt custom homology regions
F2 constant region:
5′-CATATGAATATCCTCCTTA-3′
R2 constant region:
5′-TGTGTAGGCTGGAGCTGCTTC-3’S1 and S2: 27 nt constant regions for priming the amplification of the SPA-Cm cassette and 45 nt custom homology regions
S1 constant region:
5’AGCTGGAGGATCCATGGAAAAGAGAAG -3′
S2 constant region:
5′- GGCCCCATATGAATATCCTCCTTAGTT -3′

KOCO-F and KOCO-C: 20 nt primers 200 bp away from the non-essential gene deletion site or the essential
gene SPA-tag insertion site
17 36484
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        5. PCR and Electrophoresis Reagents 18 36485
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Taq DNA polymerase   Fermentas # EP0281   19 36487
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10X PCR buffer   Fermentas # EP0281   20 36488
Remove
10 mM dNTPs   Fermentas # EP0281   21 36489
Remove
25 mM MgCl2   Fermentas # EP0281   22 36490
Remove
Agarose   Bioshop # AGA002   23 36492
Remove
Loading dye   NEB #B7021S   24 36493
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Ethidium bromide   Bioshop # ETB444   25 36497
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10X TBE buffer   Bioshop # ETB444.10   26 36494
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Tris Base   Bioshop # TRS001   27 36495
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Boric acid   Sigma # T1503-1KG   28 36496
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0.5 M EDTA (pH 8.0)   Sigma # B6768-500G   29 36498
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DNA ladder   NEB #N3232L   30 36499
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        6. DNA isolation and Clean-up Kits 31 36500
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Genomic DNA isolation and purification kit   Promega #A1120   32 36501
Remove
Plasmid Midi kit   Qiagen # 12143   33 36502
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QIAquick PCR purification kit   Qiagen #28104   34 36512
Remove
        7. Equipment for PCR, Transformation and Replica-pinning 35 36503
Remove
Thermal cycler   BioRad, iCycler     36 36504
Remove
Agarose gel electrophoresis   BioRad     37 36505
Remove
Electroporator   Bio-Rad GenePulser II     38 36506
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0.2 cm electroporation cuvette   Bio-Rad     39 36507
Remove
42 °C water bath shaker   Innova 3100     40 36508
Remove
Beckman Coulter TJ-25 centrifuge   Beckman Coulter     41 36519
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32 °C shaker   New Brunswick Scientific, USA     42 36509
Remove
32 °C plate incubator   Fisher Scientific     43 36510
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RoToR-HDA benchtop robot   Singer Instruments     44 36511
Remove
96, 384 and 1,536 pin density pads   Singer Instruments     45 36513
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96 or 384 long pins   Singer Instruments     46 36514
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        8. Imaging Equipments 47 36515
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Camera stand   Kaiser     48 36516
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Digital camera, 10 megapixel   Any Vendor     49 36517
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Light boxes, Testrite 16″ x 24″ units   Testrite     50 36527
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        9. Pads or Plates Recycling 51 36518
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10% bleach   Any Vendor     52 36520
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70% ethanol   Any Vendor     53 36521
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Sterile distilled water   Any Vendor     54 36522
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Flow hood   Any Vendor     55 36523
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Ultraviolet lamp   Any Vendor     56 36524
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        10. Labware 57 36525
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50 ml polypropylene tubes   Any Vendor     58 36526
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1.5 ml micro-centrifuge tubes   Any Vendor     59 36528
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250 ml conical flaks   VWR # 29140-045   60 36529
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15 ml sterile culture tubes   Thermo Scientific # 366052   61 36530
Remove
Cryogenic vials   VWR # 479-3221   62 36531
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Rectangular Plates   Singer Instruments     63 36532
Remove
96-well and 384-well microtitre plates   Singer Instruments Nunc   64 36533
Remove
Plate roller for sealing multi-well   Sigma #R1275   65 36535
Remove
plates   ABgene # AB-0580   66 36534
Remove
Adhesive plate seals   Fisher Scientific # 13-990-14   67 36537
Remove
-80 °C freezer   Any Vendor     68 36536
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References

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Cite This Article
Gagarinova, A., Babu, M., Greenblatt, J., Emili, A. Mapping Bacterial Functional Networks and Pathways in Escherichia Coli using Synthetic Genetic Arrays. J. Vis. Exp. (69), e4056, doi:10.3791/4056 (2012).

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