Summary

فيفو السابقين تقييم من تعب، وانقباض في عضلات الهيكل العظمي تناوب متفرقة

Published: November 01, 2012
doi:

Summary

وصفنا طريقة لقياس قوة العضلات مباشرة، القوة العضلية، وتعب حركية مقلص من العضلات الهيكلية معزولة في<em> في المختبر</em> النظام باستخدام التحفيز المجال. معلومات عن قيمة كا<sup> 2 +</supويمكن الحصول على> خصائص وآليات التعامل مع تقلص في العضلات باستخدام بروتوكولات تحفيز مختلفة.

Abstract

الموصوفة هنا هو وسيلة لقياس انقباض عضلات الهيكل العظمي معزولة. ويمكن الحصول على المعلمات مثل قوة العضلات، قوة العضلات، وحركية مقلص، تعب، والانتعاش بعد التعب لتقييم جوانب محددة من اقتران الاستثارة و التقلص (ECC) عملية مثل استثارة، والآلات ومقلص كا 2 + قدرة المناولة. هذا الأسلوب يزيل أعصاب والدم، ويركز على العضلات والهيكل العظمي عزلت نفسها. ونحن نستخدم هذه الطريقة بشكل روتيني لتحديد المكونات الجينية التي تغير الخاصية مقلص من الهيكل العظمي والعضلات على الرغم من تحوير مسارات الكالسيوم + 2 الإشارة. هنا، نحن تصف والتي تم تشخيصها حديثا النمط الظاهري العضلات والهيكل العظمي، أي تناوب ميكانيكي، كمثال على المعلومات المختلفة والغنية التي يمكن الحصول عليها باستخدام مقايسة في العضلات المختبر انقباض. مزيج من هذا الاختبار مع المقايسات خلية واحدة، والنهج الوراثية وbiochemiيمكن المقايسات stry تقدم معلومات هامة في آليات ECC في الهيكل العظمي والعضلات.

Introduction

عضلات الهيكل العظمي نعلق على عظام الهيكل العظمي وتوليد القوى مقلص تحت سيطرة الجهاز العصبي المركزي. تقارن الاستثارة و التقلص (ECC) يشير إلى عملية تحويل حافزا الكهربائية إلى ميكانيكية استجابة. كاليفورنيا 2 + إشارات يعتبر عنصرا أساسيا من وظيفة العضلات والهيكل العظمي في مقلص. كا 2 + فعالة من تعبئة شبكية الهيولى العضلية (SR) هو عنصر هام لECC في خلايا العضلات 1، 2، والتغيرات في الخلايا الكالسيوم 2 + إشارات تكمن وراء ضعف المقابل تقلص في عدد من أمراض العضلات 3-5. التقييم السليم لانقباض العضلات والضروري مجانية إلى كا 2 + التصوير وغيرها من المقايسات للحصول على أفكار في وظيفة العضلات والهيكل العظمي، وليس فقط على مستوى مقلص، ولكن أيضا على المستوى الحركي. ويمكن أيضا قوة وسرعة الحصول عليها إبلاغ خاصية هامة منالقوة العضلية ووضع عملية ECC تحت مختلف الظروف الفسيولوجية المرضية في جسم المريض و.

هذا المجال خصب للبحث لديها تاريخ غني للغاية والعديد من النظريات من خلال تقلص العضلات ظهرت ألفي 6. البحث الحديثة العضلات يبدأ على الأرجح في 1674-1682 مع ملاحظة مجهرية عبر التصدعات و myofibrils في الألياف العضلية قبل يوينهويك 6. ما يقرب من قرن في وقت لاحق، لاحظ لويجي جالفاني أن العقود العضلات الضفدع بقوة عندما لمس العصب مع مشرط خلال تصريف شرارة كهربائية من آلة بعيدة 7-9. ويمكن أيضا أن تنتج الانكماش من خلال ربط العصب إلى العضلات في الساق خلال موصل معدني. صيغت في نهاية المطاف تفاصيل آلية معقدة الإشارات الكهربائية التي ينادي بها جالفاني من هودجكين، وهكسلي كاتز في معادلة الشهير 10 و 11 التي أصبحت أساس الكهربية. الملاحظات ملحوظا من رينGER عن آثار الكالسيوم خارج الخلية 2 + على انقباض القلب والعضلات الهيكلية الضفدع 12-15 بمثابة الخطوة الرئيسية الأولى في الاعتراف كا 2 + كمنظم رئيسي من انقباض العضلات 16 و 17. من عام 1980 وحتى يومنا هذا قد تحقق وابلا من الاكتشافات في مجال انقباض العضلات بسبب انقباض إدخال العضلات وتعب البروتوكولات في عضلات الهيكل العظمي الفئران 18. وكانت جونز وادواردز أول من يشير إلى أن التعب متقطعة التردد المنخفض (ممارسة النشاط انخفاض في القوة) كان مرتبطا 19 مع تغييرات في آلية ECC وليس جهاز مقلص. في أواخر عام 1980 وأوائل عام 1990، وKolkeck وآخرون 20، Kolbeck وNosek 21، وريد 22 باستخدام العضلات الحجاب الحاجز من نماذج القوارض لدراسة آثار theophyllines، cortiosterone، والجذور الحرة على انقباض العضلات والهيكل العظمي، في حين بروكس وFaulknوكانت أول من إيه تقرير عن قياسات القوة والقياسات المتكررة السلطة في العضلات سريعة وبطيئة من الفئران 22. وبالإضافة إلى ذلك، كانت Lannegren، Westerblad، الحمل، وWesterblad أول من ربط مباشرة مع فيفو السابقين انقباض الخلايا كا 2 + التنظيم والتي تشكك في دور الحماض في العضلات والارهاق 23 و 24.

وقد ساهمت مختبراتنا بشكل ملحوظ منذ عام 2000 في وقت مبكر نحو فهم جينات جديدة مع تغييري والأدوار التنظيمية على ECC العضلات مع أدوارا حاسمة في انقباض العضلات، تعب، والشيخوخة باستخدام مزيج من سليمة الدراسات الماوس انقباض العضلات، وداخل الخلايا الكالسيوم الرصد + 2 في ألياف العضلات سليمة والبشرة والتلاعب الجزيئية الجينية 3-5، 25-29.

نحن هنا بالتفصيل بروتوكول تجريبي لقياس انقباض النعلية المعزولة الفئران والباسطة لأصابع الطويلة (EDL) العضلات، والتي تتوافق في الغالب إلى بطء الأكسدة (I نوع الألياف العضلية وIIA) والعضلات في الغالب سريع glyocolytic (نوع بنك الاستثمار الدولي ومنظمة شات ألياف العضلات) مع خصائص متميزة مقلص. في هذا البروتوكول، تم عزل العضلات سليمة ووتر المجمعات استحم في نظام PowerLab ADI غرفة Radnotti المتوفرة مع الأكسجين النقي أو أي مزيج من الأكسجين (95٪) وCO 2 (5٪). تم إنشاؤها بواسطة قوات مقلص التحفيز الكهربائي من العشب مشجعا والكشف باستخدام محول القوة التي تم دمجها مع نظام PowerLab/400 ADI، مما يسمح التخصيص من إجراءات الماكرو للسيطرة على اقتناء وجمع ورقمنة، وتخزين البيانات. يمكن قياس قوة هذا الإعداد العضلات، القوة العضلية، فضلا عن قوة العلاقة مقابل التردد، والتعب في العضلات، والتعب التعافي من العضلات والسرعة والخصائص الحركية العامة لتقلص العضلات. وبالإضافة إلى ذلك، يمكن رصد آثار المخدرات على تقلص العضلات من خلال هذه التجارب. </p>

وضع مزايا هذه الطريقة في إزالة مكونات الخلايا العصبية والأوعية الدموية بعيدا عن الهيكل العظمي والعضلات، والسماح التقييم المباشر من الخصائص الجوهرية للإصابة العضلات. وبالإضافة إلى ذلك، بحكم المقايسات انقباض الجسم الحي تسمح التلاعب في الوسط خارج الخلية المحيطة العضلات المعزولة، والتي تمكن من استخدام التلاعب الدوائية من مختلف القنوات وتخلل أيون نقل من أجل تحديد أدوارها الفسيولوجية لوظيفة العضلات والهيكل العظمي.

وقد سمح هذا النظام فيفو السابقين لنا لاكتشاف السلوك مؤخرا alternan متميزة في بعض الاستعدادات العضلات متحولة، والتي كانت مرتبطة الكالسيوم داخل الخلايا 2 + تغيير خصائص التعامل مع 4. كما تم تعريفها تناوب حلقات انفجار المتقلبة للقوة مقلص خلال مرحلة تراجع الملف الشخصي مجهد. خلال هذه الأحداث قوات مقلص زيادة حظات فوق مستواه السابق من القوة دخلال شهر التحفيز مجهد، ربما لأكثر إما كا 2 + هو أن يطلق سراحه أو آلية مقلص أصبحت أكثر حساسية لCA 2 + 30. يمكن علاج حمض cyclopiazonic (CPA)، وهو مانع للعكس من الهيولى العضلية، الشبكة الهيولية الباطنة أتباز الكالسيوم (SERCA)، والكافيين، وناهض من قناة ryanodine (RyR) وكرر مجهد التحفيز لحث جميع تناوب الميكانيكية مما يوحي بأن ترتبط مباشرة إلى تناوب التشكيل من عملية توصيل EC. مظاهرة للأسلوب للحث على تسجيل وتناوب ميكانيكي في الإعداد انقباض في المختبر يخدم كمثال لإظهار المعلمات التجريبية المتنوعة التي يمكن الحصول عليها مع هذا النظام أو تلك مماثلة، على أساس الاهتمامات البحثية الفردية.

هذه الطريقة قد تكون ذات فائدة للباحثين الذين يدرسون علم وظائف الأعضاء العضلات. ويمكن أيضا أن تستخدم الإعداد مماثلة لمجمعات معزولة عن غيرها من الهيكل العظمي muscle-tendon/ligamentالتشريحية المواقع، فضلا عن الألياف واحد وشرائط العضلات.

Protocol

حل التركيب: 2.5 ملم CA 2 + حل Tyrode: 140 مم كلوريد الصوديوم، 5 ملي بوكل، HEPES 10 مم، 2.5 مم CaCl 2، 2 ملم MgCl 2 و 10 ملي الجلوكوز 0 ملي CA 2 + حل Tyrode: 140 مم كلوريد الصوديوم، 5 ملي بوكل، HEPES ملي 10، 2 م?…

Discussion

قياس قوة مقلص وتعب المهم لتقييم شامل من وظيفة العضلات والهيكل العظمي. والغرض الرئيسي من هذا الفحص هو تحديد التغيرات في قوة العضلات وخصائص مجهد في ظل ظروف مرضية معينة، مثل sarcopenia والتعب في العضلات، واختبار تأثير المخدرات / الكواشف على انقباض العضلات. منذ يرتبط ارتباطا …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل من قبل SDG AHA 10SDG2630086 لX تشاو، RO1-J AR061385 إلى ما وGO RC2AR05896 المنح لM. Brotto

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
2-APB Tocris 1224 Blocker of a number of Ca2+ entry channels including SOC and TRP etc.
SKF96365 Sigma SKF-96365 Blocker of a number of Ca2+ entry channels including SOC and receptor-mediated Ca2+ entry etc.
BTP-2 Millipore 203890-5MG Relatively specific SOC blocker
CPA Sigma C1530 Reversible SERCA blocker
caffeine Sigma C0750 Fast action RyR agonist
Radnoti Four Unit Tissue Organ Bath System Radnoti 159920
Combination Tissue Support/Stimulating Electrode Radnoti 160151 Vertical Zig Zag Type with tissue support
Quad Bridge Amp ADInstruments FE224
PowerLab/400 ADInstruments This product is no longer available. Choose other version of the data acquisition system.
Force Transducers (5 mg – 25 g) ADInstruments MLT0201/RAD
Chart v4.02 ADInstruments LabChart 7.3 is the latest version of Chart software.
S8800 Dual Pulse Digital Stimulator GRASS TECHNOLOGIES This product is no longer available. S88X Dual Output Square Pulse Stimulator is a newer stimulator.
RF Transformer Isolation Unit GRASS TECHNOLOGIES Model SIU5

References

  1. Winegrad, S. Role of intracellular calcium movements in excitation-contraction coupling in skeletal muscle. Fed. 24, 1146-1152 (1965).
  2. Sandow, A. Excitation-contraction coupling in skeletal muscle. Pharmacol. Rev. 17, 265-320 (1965).
  3. Thornton, A. M. Store-operated Ca(2+) entry (SOCE) contributes to normal skeletal muscle contractility in young but not in aged skeletal muscle. Aging. 3, 621-634 (2011).
  4. Zhao, X. Ca2+ overload and sarcoplasmic reticulum instability in tric-a null skeletal muscle. J. Biol. Chem. 285, 37370-37376 (2010).
  5. Brotto, M. A. Defective maintenance of intracellular Ca2+ homeostasis is linked to increased muscle fatigability in the MG29 null mice. Cell Res. 14, 373-378 (2004).
  6. Florkin, M. Machina carnis. The Biochemistry of Muscular Contraction in its Historical Development. Med. Hist. 17, 316-317 (1973).
  7. Galvani, A., Aldini, J. De viribus electricitatis in motu musculari commentarius. ApudSocietatem Typographicam. , (1792).
  8. Fulton, J. F., Fulton, J. F., Wilson, L. G. . Selected Reading in the History of Physiology. , (1930).
  9. Piccolino, M. Luigi Galvani and animal electricity: two centuries after the foundation of electrophysiology. Trends Neurosci. 20, 443-448 (1997).
  10. Hodgkin, A. L. The Croonian Lecture: Ionic Movements and Electrical Activity in Giant Nerve Fibres. Proceedings of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 148, 1-37 (1958).
  11. Hodgkin, A. L. . The Sherrington Lectures VII the Conduction of the Nervous Impulse. , 71964 (1965).
  12. Ringer, S. A further contribution regarding the influence of the different constituents of the blood on the contraction of the heart. J. Physiol. 4, 29-42.3 .
  13. Ringer, S. Further experiments regarding the influence of small quantities of lime, and other salts on muscular tissue. J. Physiol. 7, 291-308 .
  14. Ringer, S., Buxton, D. W. Concerning the action of calcium, potassium and sodium salts upon the eel’s heart and upon the skeletal muscles of the frog. J. Physiol. 8, 15-19 .
  15. Ringer, S. Regarding the action of lime, potassium and sodium salts on skeletal muscle. J. Physiol. 8, 20-24 (1887).
  16. Campbell, A. K. . Intracellular Calcium its Universal Role as Regulator. , (1983).
  17. Mol, J. . Cell Cardiol. 16, ll3-ll6 (1984).
  18. Ridings, J. W., Barry, S. R., Faulkner, J. A. Aminophylline enhances contractility of frog skeletal muscle: an effect dependent on extracellular calcium. J. Appl. Physiol. 67, 671-676 (1989).
  19. Fitts, R. H. The cross-bridge cycle and skeletal muscle fatigue. J. Appl. Physiol. 104, 551-558 (2008).
  20. Kolbeck, R. C., Speir, W. A. Diaphragm contactility as related to cellular calcium metabolism: Influence of theophylline and fatigue. American Review of Respiratory Disease. 139, 495 (1989).
  21. Kolbeck, R. C., Nosek, T. M. Fatigue of rapid and slow onset in isolated perfused rat and mouse diaphragms. J. Appl. Physiol. 77, 1991-1998 (1994).
  22. Moore, B. J. Diaphragm atrophy and weakness in cortisone-treated rats. J. Appl. Physiol. 67, 2420-2426 (1989).
  23. Lannergren, J., Westerblad, H. Force decline due to fatigue and intracellular acidification in isolated fibres from mouse skeletal muscle. J. Physiol. 434, 307-322 (1991).
  24. Westerblad, H. Spatial gradients of intracellular calcium in skeletal muscle during fatigue. Pflugers Arch. 415, 734-740 (1990).
  25. Zhao, X. Enhanced resistance to fatigue and altered calcium handling properties of sarcalumenin knockout mice. Physiol. Genomics. 23, 72-78 (2005).
  26. Wang, X. Cardioprotection of ischemia/reperfusion injury by cholesterol-dependent MG53-mediated membrane repair. Circ. Res. 107, 76-83 (2010).
  27. Cai, C. MG53 nucleates assembly of cell membrane repair machinery. Nat. Cell Biol. 11, 56-64 (2009).
  28. Shen, J. Deficiency of MIP/MTMR14 phosphatase induces a muscle disorder by disrupting Ca(2+) homeostasis. Nat. Cell Biol. 11, 769-776 (2009).
  29. Romero-Suarez, S. Muscle-specific inositide phosphatase (MIP/MTMR14) is reduced with age and its loss accelerates skeletal muscle aging process by altering calcium homeostasis. Aging (Albany NY). 2, 504-513 (2010).
  30. Yazawa, M. TRIC channels are essential for Ca2+ handling in intracellular stores. Nature. 448, 78-82 (2007).
  31. Brotto, M. A., Nosek, T. M., Kolbeck, R. C. Influence of ageing on the fatigability of isolated mouse skeletal muscles from mature and aged mice. Exp. Physiol. 87, 77-82 (2002).
  32. Zhao, X. Compromised store-operated Ca2+ entry in aged skeletal muscle. Aging Cell. 7, 561-568 (2008).
  33. Pan, Z. Dysfunction of store-operated calcium channel in muscle cells lacking mg29. Nat. Cell Biol. 4, 379-383 (2002).
  34. Zhao, X. Azumolene inhibits a component of store-operated calcium entry coupled to the skeletal muscle ryanodine receptor. J. Biol. Chem. 281, 33477-33486 (2006).
  35. Renaud, J. M. Modulation of force development by Na+, K+, Na+ K+ pump and KATP channel during muscular activity. Can. J. Appl. Physiol. 27, 296-315 (2002).
  36. Brotto, M. A. Functional and biochemical modifications in skeletal muscles from malarial mice. Exp. Physiol. 90, 417-425 (2005).
  37. Brotto, M. A. Hypoxia and fatigue-induced modification of function and proteins in intact and skinned murine diaphragm muscle. Pflugers Arch. 440, 727-734 (2000).
  38. Smith, M. A., Reid, M. B. Redox modulation of contractile function in respiratory and limb skeletal muscle. Respir Physiol Neurobiol. 151, 229-241 (2006).
  39. Bagni, M. A., Cecchi, G., Colomo, F. Myofilament spacing and force generation in intact frog muscle fibres. J. Physiol. 430, 61-75 (1990).
check_url/4198?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Park, K. H., Brotto, L., Lehoang, O., Brotto, M., Ma, J., Zhao, X. Ex Vivo Assessment of Contractility, Fatigability and Alternans in Isolated Skeletal Muscles. J. Vis. Exp. (69), e4198, doi:10.3791/4198 (2012).

View Video