Summary

Ex Vivo оценке сократимости, утомляемость и аНегпапз в изолированных скелетных мышц

Published: November 01, 2012
doi:

Summary

Мы описываем метод непосредственного измерения мышечной силы, мышечной силы, сократительная кинетики и утомляемость изолированных скелетных мышц в<em> В пробирке</em> Системы с помощью полей стимуляцию. Ценную информацию о Ca<sup> 2 +</sup> Обработке свойств и сократительную техники мышц можно получить, используя различные стимулирующие протоколов.

Abstract

Описанный здесь метод измерения сократимость изолированной скелетной мускулатуры. Такие параметры, как сила мышц, мышечная сила, сократительная кинетики, утомляемость, и восстановления после усталости может быть получена для оценки конкретных аспектов возбуждения сокращения связи (ECC) процессов, таких как возбудимость, сократительная техники и Ca 2 + обработка способности. Этот метод удаляет нерв и кровоснабжение и делает акцент на изолированном скелетные мышцы. Мы регулярно использовать этот метод для выявления генетических компонентов, которые изменяют сократительные свойства скелетных мышц, хотя модуляции Ca 2 + сигнальных путей. Здесь мы описываем вновь выявленных скелетных мышц фенотип, то есть, механик аНегпапз, как пример разнообразной и богатой информации, которая может быть получена с использованием в пробирке анализа сократимости мышц. Сочетание этого анализа с одной анализы клетки, генетический подходы и биохимическихСтрый анализов может предоставить важную информацию о механизмах ECC в скелетных мышцах.

Introduction

Скелетные мышцы прикрепляются к костям скелета и генерировать сократительной силы под контролем центральной нервной системы. Возбуждение-сжатия связи (ECC) относится к процессу преобразования электрических стимулов для механического ответа. Ca 2 + сигнализация является важным компонентом сократительной функции скелетных мышц. Эффективное Ca 2 + мобилизации из саркоплазматического ретикулума (СР) является важным компонентом для ECC в мышечных клетках 1, 2, и изменения внутриклеточного Ca 2 + сигнализация лежат в основе соответствующего сократительной дисфункции в ряде мышечных заболеваний 3-5. Правильная оценка сократительной способности мышц является важным и бесплатный Ca 2 + визуализации и другие анализы, чтобы получить представление функции скелетных мышц, а не только на сократительную уровне, но и на кинетическом уровне. Сила и скорость могут быть также получены сообщить важное свойствомышечной силы и состояние процесса ECC при различных физиологических и патофизиологических условиях.

Это плодородный области исследований имеет очень богатую историю и множество теорий мышечного сокращения появилось более двух тысячелетий 6. Современные исследования мышц, вероятно, начинается в 1674-1682 с микроскопическим наблюдением крест-страт и миофибрилл в мышечных волокнах Левенгук 6. Почти столетие спустя, Луиджи Гальвани заметил, что контракты мышцы лягушки активно, когда его нерв коснулся скальпелем во время искрового разряда из далекого электрических машин 7-9. Сокращение может также быть произведено путем подключения ногу нерва к мышце через металлический проводник. Подробная информация о комплексе электрический механизм сигнализации выступают Гальвани в конечном итоге были сформулированы Ходжкина, Хаксли и Кац в своем знаменитом уравнении 10, 11, который стал основой электрофизиологии. Замечательные наблюдения Rinгер о воздействии внеклеточного Ca 2 + на сократимость сердца лягушки и скелетных мышцах 12-15 представляют собой первый важный шаг в признании Ca 2 + в качестве ключевого регулятора мышечной сократимости 16, 17. С 1980-х годов до наших дней всплеск открытий в области сократимость мышц был реализован в связи с введением сократимости мышц и утомляемость протоколов в мышиных скелетных мышц 18. Джонс и Эдвардс были первыми, чтобы предположить, что низкая частота прерывистого усталости (упражнение вызванных сокращением в силу) 19 были связаны с изменениями в механизме ECC, а не сократительного аппарата. В конце 1980-х и начале 1990-х годов, Kolkeck и др. 20, Kolbeck и Nosek 21, и Рид 22 были использованием мышцы диафрагмы от грызунов моделей для изучения влияния теофиллины, cortiosterone, и свободных радикалов на скелетные сократимости мышц, в то время как Брукс и Faulknэ были первыми сообщить о повторяющихся измерений силы и мощности в быстрых и медленных мышц у мышей 22. Кроме того, Lannegren, Westerblad, Lamb, и Westerblad были первыми, чтобы напрямую связать бывшие сократимость естественных условиях с внутриклеточного Са 2 + регулировании и начали подвергать сомнению роль ацидоз в мышечной усталости 23, 24.

Наши лаборатории внесли значительный вклад с начала 2000-х годов к пониманию новых генов с модулирующим и нормативной роли на мышцы ECC с важнейшую роль в мышечной сократимости, утомляемость и старение, используя сочетание нетронутой исследований мышцы мыши сократимость, внутриклеточный Ca 2 + мониторинг неповрежденной и кожей мышечных волокон и молекулярно-генетических манипуляций 3-5, 25-29.

Здесь мы подробно экспериментальный протокол для измерения сократимость изолированного мышиного камбаловидной и разгибателей пальцев мышцы (EDL) мышц, которые соответствуют главным образом медленным окислительного (тип I и IIa волокон мышц) и по большей части быстро glyocolytic мышцы (тип IIb и волокон IIx мышцы) с различными сократительных свойств. В этом протоколе целой мышцы, сухожилия комплексы были выделены и купались в ADI PowerLab Radnotti камерная система поставляется либо с чистым кислородом или смесью кислорода (95%) и CO 2 (5%). Сократительных сил, создаваемых электрическими раздражениями из травы стимулятора и обнаружить, используя датчик силы, которая была интегрирована с системой ADI PowerLab/400, позволяя настраивать макро-процедур контроля приобретения, сбора, оцифровки и хранения данных. Эта установка может измерять силу мышц, мышечной силы, а также силы от частоты отношения, мышечной усталости, восстановления мышечной усталости, скорость и общую кинетические свойства мышц. Кроме того, воздействие наркотиков на сокращение мышц можно контролировать с помощью этих экспериментов. </p>

Преимущества этого метода заключается в удалении нейронов и сосудистого компонентов от скелетных мышц, что позволяет прямой оценки внутренних свойств сокращающейся мышцы. Кроме того, экс анализы сократимость естественных условиях позволяют манипуляции с внеклеточной средой окружающих изолированной мышцы, что позволяет использовать фармакологические манипуляции различных ионных каналов проникновения и перевозчиков с целью определения их физиологической роли функции скелетных мышц.

Это бывшая система естественных условиях позволил нам недавно обнаружили различные поведения alternan в некоторых мутантов подготовки мышц, которые были связаны с измененными внутриклеточного Ca 2 + обработка свойства 4. АНегпапз определяется как колебания эпизодов взрыв сократительной силы во время снижения фазы утомительно анкету. Во время этих событий сократительной силы мгновенно увеличить выше прежнего уровня силы Dтором утомительно стимуляции, возможно потому, что либо более Ca 2 + в настоящее время освобождены или сократительной техника стала более чувствительной к Ca 2 + 30. Лечение циклопьязониковой кислоты (CPA), обратимые блокатор саркоплазматического-эндоплазматической сети кальция АТФазы (SERCA), кофеин, агонист рианодиновых каналов (RyR) и утомительно повторяющихся раздражений могут вызвать механическое аНегпапз 4, предполагая, что аНегпапз которые непосредственно связаны с модуляции процесса связью ЕС. Демонстрация метод, чтобы побудить и записывать механиком в аНегпапз в настройках сократимость пробирке служит в качестве примера, чтобы показать самые разнообразные экспериментальные параметры, которые могут быть получены с этой системой или подобные, основанные на индивидуальных интересов исследования.

Этот метод может представлять интерес для исследователей, изучающих физиологию мышц. Похожие настройки также могут быть использованы для изолированных скелетных комплексов muscle-tendon/ligament от другиханатомических местах, а также для одиночных волокон и мышечных полосок.

Protocol

Решение составе: 2,5 мМ Ca 2 + Tyrode решение: 140 мм NaCl, 5 мМ KCl, 10 HEPES мм, 2,5 мм CaCl 2, 2 мМ MgCl 2 и 10 мМ глюкозы 0 мМ Ca 2 + Tyrode решение: 140 мм NaCl, 5 мМ KCl, 10 HEPES мм, 2 мм MgCl 2, 0,1 мМ этиленгликоль тетрауксусной кислоты (EGTA) и 10 мМ глюкозы Примеч…

Discussion

Измерение сократительной силы и утомляемость имеет важное значение для общей оценки функции скелетных мышц. Основной целью этого анализа является выявление изменений в мышечной силе и утомительно свойства при некоторых патологических состояниях, таких как саркопения и мышечной уст?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана AHA SDG 10SDG2630086 Чжао X, RO1-AR061385 Ма J и GO Грант RC2AR05896 в Brotto M.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
2-APB Tocris 1224 Blocker of a number of Ca2+ entry channels including SOC and TRP etc.
SKF96365 Sigma SKF-96365 Blocker of a number of Ca2+ entry channels including SOC and receptor-mediated Ca2+ entry etc.
BTP-2 Millipore 203890-5MG Relatively specific SOC blocker
CPA Sigma C1530 Reversible SERCA blocker
caffeine Sigma C0750 Fast action RyR agonist
Radnoti Four Unit Tissue Organ Bath System Radnoti 159920
Combination Tissue Support/Stimulating Electrode Radnoti 160151 Vertical Zig Zag Type with tissue support
Quad Bridge Amp ADInstruments FE224
PowerLab/400 ADInstruments This product is no longer available. Choose other version of the data acquisition system.
Force Transducers (5 mg – 25 g) ADInstruments MLT0201/RAD
Chart v4.02 ADInstruments LabChart 7.3 is the latest version of Chart software.
S8800 Dual Pulse Digital Stimulator GRASS TECHNOLOGIES This product is no longer available. S88X Dual Output Square Pulse Stimulator is a newer stimulator.
RF Transformer Isolation Unit GRASS TECHNOLOGIES Model SIU5

References

  1. Winegrad, S. Role of intracellular calcium movements in excitation-contraction coupling in skeletal muscle. Fed. 24, 1146-1152 (1965).
  2. Sandow, A. Excitation-contraction coupling in skeletal muscle. Pharmacol. Rev. 17, 265-320 (1965).
  3. Thornton, A. M. Store-operated Ca(2+) entry (SOCE) contributes to normal skeletal muscle contractility in young but not in aged skeletal muscle. Aging. 3, 621-634 (2011).
  4. Zhao, X. Ca2+ overload and sarcoplasmic reticulum instability in tric-a null skeletal muscle. J. Biol. Chem. 285, 37370-37376 (2010).
  5. Brotto, M. A. Defective maintenance of intracellular Ca2+ homeostasis is linked to increased muscle fatigability in the MG29 null mice. Cell Res. 14, 373-378 (2004).
  6. Florkin, M. Machina carnis. The Biochemistry of Muscular Contraction in its Historical Development. Med. Hist. 17, 316-317 (1973).
  7. Galvani, A., Aldini, J. De viribus electricitatis in motu musculari commentarius. ApudSocietatem Typographicam. , (1792).
  8. Fulton, J. F., Fulton, J. F., Wilson, L. G. . Selected Reading in the History of Physiology. , (1930).
  9. Piccolino, M. Luigi Galvani and animal electricity: two centuries after the foundation of electrophysiology. Trends Neurosci. 20, 443-448 (1997).
  10. Hodgkin, A. L. The Croonian Lecture: Ionic Movements and Electrical Activity in Giant Nerve Fibres. Proceedings of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 148, 1-37 (1958).
  11. Hodgkin, A. L. . The Sherrington Lectures VII the Conduction of the Nervous Impulse. , 71964 (1965).
  12. Ringer, S. A further contribution regarding the influence of the different constituents of the blood on the contraction of the heart. J. Physiol. 4, 29-42.3 .
  13. Ringer, S. Further experiments regarding the influence of small quantities of lime, and other salts on muscular tissue. J. Physiol. 7, 291-308 .
  14. Ringer, S., Buxton, D. W. Concerning the action of calcium, potassium and sodium salts upon the eel’s heart and upon the skeletal muscles of the frog. J. Physiol. 8, 15-19 .
  15. Ringer, S. Regarding the action of lime, potassium and sodium salts on skeletal muscle. J. Physiol. 8, 20-24 (1887).
  16. Campbell, A. K. . Intracellular Calcium its Universal Role as Regulator. , (1983).
  17. Mol, J. . Cell Cardiol. 16, ll3-ll6 (1984).
  18. Ridings, J. W., Barry, S. R., Faulkner, J. A. Aminophylline enhances contractility of frog skeletal muscle: an effect dependent on extracellular calcium. J. Appl. Physiol. 67, 671-676 (1989).
  19. Fitts, R. H. The cross-bridge cycle and skeletal muscle fatigue. J. Appl. Physiol. 104, 551-558 (2008).
  20. Kolbeck, R. C., Speir, W. A. Diaphragm contactility as related to cellular calcium metabolism: Influence of theophylline and fatigue. American Review of Respiratory Disease. 139, 495 (1989).
  21. Kolbeck, R. C., Nosek, T. M. Fatigue of rapid and slow onset in isolated perfused rat and mouse diaphragms. J. Appl. Physiol. 77, 1991-1998 (1994).
  22. Moore, B. J. Diaphragm atrophy and weakness in cortisone-treated rats. J. Appl. Physiol. 67, 2420-2426 (1989).
  23. Lannergren, J., Westerblad, H. Force decline due to fatigue and intracellular acidification in isolated fibres from mouse skeletal muscle. J. Physiol. 434, 307-322 (1991).
  24. Westerblad, H. Spatial gradients of intracellular calcium in skeletal muscle during fatigue. Pflugers Arch. 415, 734-740 (1990).
  25. Zhao, X. Enhanced resistance to fatigue and altered calcium handling properties of sarcalumenin knockout mice. Physiol. Genomics. 23, 72-78 (2005).
  26. Wang, X. Cardioprotection of ischemia/reperfusion injury by cholesterol-dependent MG53-mediated membrane repair. Circ. Res. 107, 76-83 (2010).
  27. Cai, C. MG53 nucleates assembly of cell membrane repair machinery. Nat. Cell Biol. 11, 56-64 (2009).
  28. Shen, J. Deficiency of MIP/MTMR14 phosphatase induces a muscle disorder by disrupting Ca(2+) homeostasis. Nat. Cell Biol. 11, 769-776 (2009).
  29. Romero-Suarez, S. Muscle-specific inositide phosphatase (MIP/MTMR14) is reduced with age and its loss accelerates skeletal muscle aging process by altering calcium homeostasis. Aging (Albany NY). 2, 504-513 (2010).
  30. Yazawa, M. TRIC channels are essential for Ca2+ handling in intracellular stores. Nature. 448, 78-82 (2007).
  31. Brotto, M. A., Nosek, T. M., Kolbeck, R. C. Influence of ageing on the fatigability of isolated mouse skeletal muscles from mature and aged mice. Exp. Physiol. 87, 77-82 (2002).
  32. Zhao, X. Compromised store-operated Ca2+ entry in aged skeletal muscle. Aging Cell. 7, 561-568 (2008).
  33. Pan, Z. Dysfunction of store-operated calcium channel in muscle cells lacking mg29. Nat. Cell Biol. 4, 379-383 (2002).
  34. Zhao, X. Azumolene inhibits a component of store-operated calcium entry coupled to the skeletal muscle ryanodine receptor. J. Biol. Chem. 281, 33477-33486 (2006).
  35. Renaud, J. M. Modulation of force development by Na+, K+, Na+ K+ pump and KATP channel during muscular activity. Can. J. Appl. Physiol. 27, 296-315 (2002).
  36. Brotto, M. A. Functional and biochemical modifications in skeletal muscles from malarial mice. Exp. Physiol. 90, 417-425 (2005).
  37. Brotto, M. A. Hypoxia and fatigue-induced modification of function and proteins in intact and skinned murine diaphragm muscle. Pflugers Arch. 440, 727-734 (2000).
  38. Smith, M. A., Reid, M. B. Redox modulation of contractile function in respiratory and limb skeletal muscle. Respir Physiol Neurobiol. 151, 229-241 (2006).
  39. Bagni, M. A., Cecchi, G., Colomo, F. Myofilament spacing and force generation in intact frog muscle fibres. J. Physiol. 430, 61-75 (1990).
check_url/4198?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Park, K. H., Brotto, L., Lehoang, O., Brotto, M., Ma, J., Zhao, X. Ex Vivo Assessment of Contractility, Fatigability and Alternans in Isolated Skeletal Muscles. J. Vis. Exp. (69), e4198, doi:10.3791/4198 (2012).

View Video