Summary

軸索、樹状突起および脳スライスにおける個々のニューロンの樹状突起棘から電位感受性色素記録

Published: November 29, 2012
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Summary

サブミクロンの空間とサブミリ秒の時間分解能で膜電位の変化を監視するためのイメージング技術が記載されている。電位感受性色素のレーザー励起に基づく手法では、軸索と軸索側枝、樹枝状の端子、および個々の樹状突起棘における信号の測定が可能です。

Abstract

生物物理学的特性および単一ニューロンの機能的な組織を理解し、それらがどのように情報を処理する脳がどのように機能するかを理解するための基本です。任意の神経細胞の主な機能は、通常、複数の情報源から、電気信号​​を処理することです。神経突起の電気的特性は、詳細な測定の不存在下で予測することは非常に、複雑でダイナミック、そして、一般的な場合では、不可能である。彼らは活動電位の開始に影響を与えるために特定の場所で神経プロセスと合計する上の原点のサイトから移動する際に、複数のサイトで、サブスレッショルドイベントを一つは、理想的には、監視できるようにしたいと思い、このような測定を得るために。この目標は、電極を用いる測定の技術的制限により、任意のニューロンで達成されていません。この欠点を克服するために、それは大規模な並列recordinを許可するイメージング技術でパッチ電極のアプローチを補完することが非常に望ましいニューロンのすべての部分からのGS。サブミリセカンド、サブマイクロメートルの分解能によって特徴付け-有機電位感受性色素(V メートルイメージング)と膜電位の過渡光記録-ここでは、このような手法を説明します。我々の方法は、電位感受性分子プローブ2の先駆的な研究に基づいています。初期の技術の多くの側面を連続数十3、5、11より改善されてきた。また、前作はV メートルイメージングの二つの本質的な特性を文書化した。まず、蛍光シグナルは、全体の生理的な範囲で膜電位(、10、14、16、100 mVから-100 MV)に直線的に比例します。第二に、ここで使用される電圧感受性色素(JPW 3028)と、ロード·ニューロンは、検出可能な薬理作用を持っていません。色素ローディング中にスパイクの広がり記録、7 4完全に可逆的である。さらに、実験的証拠は、それが得ることが可能であることを示しています前の任意の検出可能な光毒性効果4、6、12、13への録音のかなりの数(最大数百人まで)。現在のところ、我々は、V メートルイメージング技術の感度を最大にするために、最適に近い波長でのレーザ光 ​​源の明るさと優れた安定性を活用しています。現在の感度は軸索と軸索側枝は、端末樹の枝、及び個々の樹状突起棘含むニューロンのすべての部分からV メートル過渡複数のサイト光学録音を可能にする。信号の相互作用に関する情報が取得された定量的な解析だけでなく、ムービーの形で直接可視化することができます。

Protocol

1。機器セットアップステップ1.1。イメージングセットアップ膜電位感受性色素信号を記録するための鍵は、適切なセットアップデザインです。我々は、3つのカメラを搭載した正立顕微鏡(オリンパスBX51WIまたはツァイスAxioExaminer)を使用します。セットアップはニコン60X/1.0 NAまたはツァイス63X/1.0 NAの水浸漬目標のいずれかを使用して、落射蛍光、広?…

Representative Results

成功した共焦点顕微鏡は、スライスの表面に近いとフォーカスの一方の面に配置されている無傷の神経プロセスの明確な識別を可能にするべきである。前電位感受性色素負荷への電圧イメージングに適した神経細胞の選択は非常に重要です。皮質スライス(Crymトランスジェニックマウス系統)にEGFPを発現L5錐体細胞の共焦点画像の例を図2に示します。個々のニューロンの軸索は…

Discussion

この記事では、サブミクロンおよびサブミリ時空間分解能で個々の神経細胞の電気的活動を監視するための電位感受性色素記録方法を説明します。最適に近い波長のレーザー励起が(信号の大きさに関して)従来のアプローチ以上〜50倍記録の感度を向上させました。感度電流は樹状突起、軸索、軸索側枝と軸索末端だけでなく、個々の樹状突起棘を含む個々のニューロンのすべての部分か?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

私たちは親切に染料を提供するためレスリー·M.·レーブにだけでなく、この技術の初期開発に参加した私たちの共同研究者クヌートHolthoff、アーサーKonnerthとマルコCanepariに感謝しています。 NSFの助成金、IOS-0817969、NIHの助成NS068407とM136043で、エール大学神経科学カヴリ研究所によってサポートされています。

Materials

Name of the component Company Catalogue number Comments (optional)
Setup components
Upright Microscope Olympus Inc. BX51WI With three camera ports
Motorized Movable Stage Siskiyou MXOPi.2
Epi-fluorescence Condenser for Olympus BX51 TILL Photonics 0000-560-11659
Upright Microscope Carl Zeiss, LLC AxioExaminer D1 With three camera ports
Motorized Top Plate Scientifica Limited MMBP
Epi-fluorescence Condenser for Zeiss AxioExaminer TILL Photonics
Data Acquisition Camera RedShirtImaging LLC NeuroCCD-SM High speed, low read noise
CCD for IR-DIC Dage-MTI IR-1000
Spinning-Disc Confocal Scanner Yokogawa CSU-10
High Spatial Resolution CCD on Confocal Scanner PCO AG PixelFly 1392×1024 pixels
DPSS CW Laser (532 Nm) CNI Optoelectronics Tech. Co., Ltd MLL-III-532 400mW Excitation light source
Multi-Mode Fiber Launcher Siskiyou SM-CFT
Light Guide TILL Photonics 0000-515-11524
Shutter Vincent Associates LS6
Vibration Isolation Table Minus k Technology MK26
Specific reagents
Di-2-ANEPEQ (JPW 1114) Life Technologies D-6923 Voltage sensitive dye
Crym-EGFP Mouse Line GENSAT (MMRRC) STOCK Tg(Crym-EGFP)GF82Gsat/Mmcd Sparsely expressing EGFP in Layer 5 cortical neurons

References

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Cite This Article
Popovic, M., Gao, X., Zecevic, D. Voltage-sensitive Dye Recording from Axons, Dendrites and Dendritic Spines of Individual Neurons in Brain Slices. J. Vis. Exp. (69), e4261, doi:10.3791/4261 (2012).

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