Summary

Spenning-sensitive Dye Opptak fra Axoner, dendritter og dendrittiske spines av enkelte nerveceller i hjernen skiver

Published: November 29, 2012
doi:

Summary

En avbildningsteknikk for monitorering av membranpotensialet forandringer med sub-mikrometer romlig og sub-millisekund tidsoppløsning er beskrevet. Teknikken er basert på laser eksitasjon av spenningssensitive fargestoffer, kan målinger av signaler i axoner og axon collaterals, terminal dendritic grener og individuelle dendritic spines.

Abstract

Forstå biofysiske egenskaper og funksjonelle organisering av single nevroner og hvordan de behandler informasjon er grunnleggende for å forstå hvordan hjernen fungerer. Den primære funksjon av noen nervecelle er å behandle elektriske signaler, vanligvis fra flere kilder. Elektriske egenskaper av neuronal prosesser er usedvanlig kompleks, dynamisk, og, i det generelle tilfelle, er umulig å forutsi i fravær av detaljerte målinger. Å få en slik måling en ville, ideelt sett, liker å være i stand til å overvåke, på flere områder, terskelnivået hendelser som de reiser fra nettstedene til opprinnelsen på neuronal prosesser og summate på spesielle steder å påvirke handlingen potensielle innvielse. Dette målet har ikke blitt oppnådd i noen nevron grunn av tekniske begrensninger av målinger som benytter elektroder. For å overvinne denne ulempen, er det svært ønskelig å utfylle patch-elektroden tilnærming med avbildningsteknikker som tillater omfattende parallell Recordings fra alle deler av et nevron. Her beskriver vi en slik teknikk – optisk innspilling av membran potensielle transienter med organiske spenningssensitive fargestoffer (V m-imaging) – preget av sub-millisekund og sub-mikrometer oppløsning. Vår metode er basert på banebrytende arbeid på spenningssensitive molekylære prober 2. Mange aspekter av den opprinnelige teknologien har blitt kontinuerlig forbedret over flere tiår 3, 5, 11. I tillegg, tidligere arbeidserfaring dokumentert to essensielle egenskapene V m-bildebehandling. Først, fluorescens-signaler er lineært proporsjonal til membranpotensialet over hele fysiologiske området (-100 mV til +100 mV, 10, 14, 16). Det andre, lasting nerveceller med spenning-sensitive fargestoff som brukes her (JPW 3028) ikke har påviselige farmakologiske effekter. Den innspilte utvidelse av piggen under fargestoff lasting er fullstendig reversibel 4, 7. I tillegg viser eksperimentelle bevis for at det er mulig å fremskaffeet betydelig antall (opptil flere hundre) av opptak før påvisbare fototoksiske effekter 4, 6, 12, 13. I dag, tar vi fordel av det utmerkede lysstyrke og stabiliteten av et laser lyskilde på nær optimal bølgelengde for å maksimere følsomheten av V m-avbildningsteknikk. Den nåværende følsomhet tillater flere reiser optiske opptak av V m transienter fra alle deler av et nevron, inkludert axoner og axon collaterals, terminal dendrittiske grener, og individuelle dendrittiske spines. Relevant informasjon om signal interaksjoner kan analyseres kvantitativt samt direkte visualisert i form av en film.

Protocol

1. Utstyr Setup Trinn 1.1. Imaging oppsett Nøkkelen til opptak spenningsstyrte dye signaler er riktig oppsett design. Vi bruker en oppreist mikroskop (BX51WI Olympus eller Zeiss AxioExaminer) utstyrt med tre kameraer. Oppsettet er utviklet for belysning individuelle nerveceller i hjernen skiver av eksitasjon lys i epi-fluorescens, wide-felt mikroskopi modus ved hjelp av enten Nikon 60X/1.0 NA eller Zeiss 63X/1.0 NA vann dipping mål. Våre mikroskoper er boltet til e…

Representative Results

Vellykket konfokalmikroskopi bør tillate klar identifikasjon av intakte neuronale prosesser som er nær overflaten av stykket og plassert i ett plan av fokus. Valget av nerveceller som er aktuelle for spenning imaging før spenningssensitive fargestoff lasting er kritisk. Et eksempel på confocal bilder av L5 pyramidale nevroner uttrykker EGFP i kortikale stykke (Crym transgen mus linje) er vist i figur 2. Axons av individuelle nevroner er klart synlig. Celler med lange intakte axoner (hvite piler) i e…

Discussion

Denne artikkelen beskriver en spenning-sensitive dye opptak metode for å overvåke elektriske aktiviteten enkelte nerveceller med sub-mikrometer og sub-millisekund Spatiotemporal oppløsning. Laser eksitasjon ved nær-optimal bølgelengde (angående signal størrelse) forbedret følsomhet opptaket med en faktor på ~ 50 over tidligere tilnærminger. Den nåværende følsomhet gjør overvåking elektriske signaler fra alle deler av individuelle nevroner, inkludert dendritter, aksoner, axon collaterals og axon terminaler…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er takknemlige for våre samarbeidspartnere Knut Holthoff, Arthur Konnerth og Marco Canepari som deltok i den første utviklingen av denne teknikken samt Leslie M. Loew for vennlig gi fargestoffer. Støttet av NSF stipend IOS-0817969, NIH tilskudd NS068407 og M136043 og ved Kavli Institute for Neuroscience ved Yale University.

Materials

Name of the component Company Catalogue number Comments (optional)
Setup components
Upright Microscope Olympus Inc. BX51WI With three camera ports
Motorized Movable Stage Siskiyou MXOPi.2
Epi-fluorescence Condenser for Olympus BX51 TILL Photonics 0000-560-11659
Upright Microscope Carl Zeiss, LLC AxioExaminer D1 With three camera ports
Motorized Top Plate Scientifica Limited MMBP
Epi-fluorescence Condenser for Zeiss AxioExaminer TILL Photonics
Data Acquisition Camera RedShirtImaging LLC NeuroCCD-SM High speed, low read noise
CCD for IR-DIC Dage-MTI IR-1000
Spinning-Disc Confocal Scanner Yokogawa CSU-10
High Spatial Resolution CCD on Confocal Scanner PCO AG PixelFly 1392×1024 pixels
DPSS CW Laser (532 Nm) CNI Optoelectronics Tech. Co., Ltd MLL-III-532 400mW Excitation light source
Multi-Mode Fiber Launcher Siskiyou SM-CFT
Light Guide TILL Photonics 0000-515-11524
Shutter Vincent Associates LS6
Vibration Isolation Table Minus k Technology MK26
Specific reagents
Di-2-ANEPEQ (JPW 1114) Life Technologies D-6923 Voltage sensitive dye
Crym-EGFP Mouse Line GENSAT (MMRRC) STOCK Tg(Crym-EGFP)GF82Gsat/Mmcd Sparsely expressing EGFP in Layer 5 cortical neurons

References

  1. Bischofberger, J., Engel, D., Li, L., Geiger, J. R., Jonas, P. Patch-clamp recording from mossy fiber terminals in hippocampal slices. Nature Protocols. 1, 2075-2081 (2006).
  2. Cohen, L. B., Salzberg, B. M. Optical measurement of membrane potential. Ann. Rev. Neurosci. 1, 171-182 (1978).
  3. Cohen, L. B., Canepari, M., Zecevic, D. Historical overview and general methods of membrane potential imaging. Membrane Potential Imaging in the Nervous System. , (2010).
  4. Canepari, M., Djurisic, M., Zecevic, D. Dendritic signals from rat hippocampal CA1 pyramidal neurons during coincident pre- and post-synaptic activity: a combined voltage- and calcium imaging study. J. Physiol. 580, 463-484 (2007).
  5. Canepari, M., Popovic, M., Vogt, K., Holthoff, K., Konnerth, A., Salzberg, B. M., Grinvald, A., Antic, S. D., Zecevic, D., Canepari, M., Zecevic, D. Imaging submillisecond membrane potential changes from individual regions of single axons, dendrites and spines. Membrane Potential Imaging in the Nervous System. , (2010).
  6. Djurisic, M., Antic, S., Chen, W. R., Zecevic, D. Voltage imaging from dendrites of mitral cells: EPSP attenuation and spike trigger zones. J. Neurosci. 24, 6703-6714 (2004).
  7. Holthoff, K., Zecevic, D., Konnerth, A. Rapid time-course of action potentials in spines and remote dendrites of mouse visual cortical neurons. J. Physiol. 588, 1085-1096 (2010).
  8. Kole, M. H. P., Letzkus, J. J., Stuart, G. J. Axon initial segment Kv1 channels control axonal action potential waveform and synaptic efficacy. Neuron. 55, 633-647 (2007).
  9. Kuhn, B., Fromherz, P., Denk, W. High sensitivity of Stark-shift voltage-sensing dyes by one- or two-photon excitation near the red spectral edge. Biophysical J. 87, 631-639 (2004).
  10. Loew, L. M. Design and characterization of electrochromic membrane probes. J. Biochem. Biophys. Method. 6, 243-260 (1982).
  11. Loew, L., Canepari, M., Zecevic, D. Design and use of organic voltage sensitive dyes. Membrane Potential Imaging in the Nervous System. , (2010).
  12. Palmer, L. M., Stuart, G. J. Site of action potential initiation in layer 5 pyramidal neurons. J. Neurosci. 26, 1854-1863 (2006).
  13. Popovic, M. A., Foust, A. J., McCormick, D. A., Zecevic, D. The spatio-temporal characteristics of action potential initiation in layer 5 pyramidal neurons: a voltage imaging study. J. Physiol. 589, 4167-4187 (2011).
  14. Ross, W. N., Salzberg, B. M., Cohen, L. B., Grinvald, A., Davila, H. V., Waggoner, A. S., Wang, C. H. Changes in absorption, fluorescence, dichroism, and birefringence in stained giant axons: optical measurement of membrane potential. J. Membr. Biol. 33, 141-183 (1977).
  15. Shu, Y., Duque, A., Yu, Y., Haider, B., McCormick, D. A. Properties of action potential initiation in neocortical pyramidal cells: evidence from whole cell axon recordings. J Neurophysiol. 97, 746-760 (2007).
  16. Wu, J. -. Y., Cohen, L. B., Mason, W. T. Fast multisite optical measurement of membrane potential. A practical guide to technology for quantitative real-time analysis. , 389-404 (1993).
  17. Yuste, R. . Dendritic Spines. , (2010).
check_url/4261?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Popovic, M., Gao, X., Zecevic, D. Voltage-sensitive Dye Recording from Axons, Dendrites and Dendritic Spines of Individual Neurons in Brain Slices. J. Vis. Exp. (69), e4261, doi:10.3791/4261 (2012).

View Video