Summary

Spänningskänsliga Dye Inspelning från axoner, dendriter och Dendritutskotten av enskilda nervceller i hjärnan skivor

Published: November 29, 2012
doi:

Summary

En bildteknik för övervakning av membran eventuella förändringar med sub-mikrometer rumsliga och sub-millisekund temporal upplösning beskrivs. Tekniken, som bygger på laser-excitation av spänningskänsliga färgämnen, tillåter mätningar av signaler i axoner och axon säkerheter, terminala dendritiska grenar, och enskilda Dendritutskotten.

Abstract

Förstå biofysiska egenskaper och funktionella organisation av enskilda neuroner och hur de behandlar information är grundläggande för att förstå hur hjärnan fungerar. Den primära funktionen hos alla nervcell är att bearbeta elektriska signalerna, vanligen från flera källor. Elektriska egenskaper hos neuronala processer är utomordentligt komplexa, dynamiska, och, i det allmänna fallet, omöjligt att förutsäga i frånvaro av detaljerade mätningar. För att få en sådan mätning en skulle helst vilja kunna övervaka, på flera ställen, under tröskelvärdet händelser när de reser från områden av ursprung på neuronala processer och summate på särskilda platser för att påverka aktionspotentialens initiering. Detta mål har inte uppnåtts i någon neuron på grund av tekniska begränsningar hos mätningar som använder elektroder. För att övervinna denna nackdel, är det mycket önskvärt att komplettera patch-elektroden strategi med avbildningstekniker som medger omfattande parallella recordings från alla delar av en neuron. Här beskriver vi en sådan teknik – optisk inspelning av membran potential transienter med organiska spänningskänsliga färgämnen (V m-avbildning) – kännetecknas av sub-millisekund och sub-mikrometer upplösning. Vår metod är baserad på banbrytande arbete på spänningskänsliga molekylära sönder 2. Många aspekter av den inledande tekniken har kontinuerligt förbättrats under flera decennier 3, 5, 11. Dessutom tidigare arbete dokumenterat två väsentliga egenskaper V m-avbildning. Första fluorescenssignaler är linjärt proportionell mot membranpotentialen över hela fysiologiska intervallet (-100 mV till +100 mV, 10, 14, 16). Det andra har lastning nervceller med den spänningskänsliga färgämne används här (JPW 3028) inte detekterbara farmakologiska effekter. Den inspelade breddning av spetsen under färgen belastning är helt reversibel 4, 7. Dessutom visar experimentella bevis att det är möjligt att erhållaett betydande antal (upp till hundratals) av inspelningar innan några påvisbara fototoxiska effekter 4, 6, 12, 13. För närvarande tar vi fördel av den utmärkta ljusstyrka och stabiliteten hos en laserljuskälla vid nära optimala våglängden för att maximera känsligheten hos V m-avbildningsteknik. Den nuvarande känslighet tillåter flera webbplats optiska inspelningar av V m transienter från alla delar av en neuron, inklusive axoner och säkerheter axon, terminal grenar dendritiska och enskilda taggar dendritiska. Den förvärvade informationen om signal interaktioner kan analyseras kvantitativt såväl som direkt visualiseras i form av en film.

Protocol

1. Utrustning installation Steg 1,1. Imaging inställning Nyckeln till att spela spänningskänsliga färgämnen signaler är lämplig inställning utformning. Vi använder en upprätt mikroskop (BX51WI Olympus eller Zeiss AxioExaminer) utrustad med tre kameror. Installationsprogrammet är konstruerad för att belysa enskilda nervceller i hjärnan skivor genom excitationsljus i epi-fluorescens, breda fält mikroskopi läge med antingen Nikon 60X/1.0 NA eller Zeiss 63X…

Representative Results

Framgångsrik konfokalmikroskopi bör göra det möjligt tydlig identifiering av intakta neuronala processer som är nära ytan av skivan och ligger i ett plan i fokus. Valet av nervceller som är lämpliga för spänning avbildning före spänningskänsliga färg belastning är kritisk. Ett exempel på konfokala bilder av L5 pyramidala neuroner uttrycker EGFP i en kortikal skiva (Crym transgen mus linje) visas i figur 2. Axoner enskilda neuroner syns tydligt. Celler med långa intakta axoner (vita pila…

Discussion

Den här artikeln beskriver en spänning-känslig metod färg inspelning för övervakning elektriska aktiviteten i enskilda nervceller med sub-mikrometer och sub-millisekund Spatiotemporal upplösning. Laserexcitation vid nära optimala våglängden (beträffande signal storlek) förbättrades känsligheten för inspelning med en faktor på ~ 50 jämfört med tidigare metoder. Den nuvarande känslighet möjliggör övervakning elektriska signaler från alla delar av enskilda nervceller, inklusive dendriter, axoner, axo…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi är tacksamma för våra samarbetspartners Knut Holthoff, Arthur Konnerth och Marco Canepari som deltog i den inledande utvecklingen av denna teknik samt Leslie M. Loew för vänligt ge färgämnen. Stöds av NSF bidrag IOS-0817969, NIH bidrag NS068407 och M136043 och Kavli Institute for Neuroscience vid Yale University.

Materials

Name of the component Company Catalogue number Comments (optional)
Setup components
Upright Microscope Olympus Inc. BX51WI With three camera ports
Motorized Movable Stage Siskiyou MXOPi.2
Epi-fluorescence Condenser for Olympus BX51 TILL Photonics 0000-560-11659
Upright Microscope Carl Zeiss, LLC AxioExaminer D1 With three camera ports
Motorized Top Plate Scientifica Limited MMBP
Epi-fluorescence Condenser for Zeiss AxioExaminer TILL Photonics
Data Acquisition Camera RedShirtImaging LLC NeuroCCD-SM High speed, low read noise
CCD for IR-DIC Dage-MTI IR-1000
Spinning-Disc Confocal Scanner Yokogawa CSU-10
High Spatial Resolution CCD on Confocal Scanner PCO AG PixelFly 1392×1024 pixels
DPSS CW Laser (532 Nm) CNI Optoelectronics Tech. Co., Ltd MLL-III-532 400mW Excitation light source
Multi-Mode Fiber Launcher Siskiyou SM-CFT
Light Guide TILL Photonics 0000-515-11524
Shutter Vincent Associates LS6
Vibration Isolation Table Minus k Technology MK26
Specific reagents
Di-2-ANEPEQ (JPW 1114) Life Technologies D-6923 Voltage sensitive dye
Crym-EGFP Mouse Line GENSAT (MMRRC) STOCK Tg(Crym-EGFP)GF82Gsat/Mmcd Sparsely expressing EGFP in Layer 5 cortical neurons

References

  1. Bischofberger, J., Engel, D., Li, L., Geiger, J. R., Jonas, P. Patch-clamp recording from mossy fiber terminals in hippocampal slices. Nature Protocols. 1, 2075-2081 (2006).
  2. Cohen, L. B., Salzberg, B. M. Optical measurement of membrane potential. Ann. Rev. Neurosci. 1, 171-182 (1978).
  3. Cohen, L. B., Canepari, M., Zecevic, D. Historical overview and general methods of membrane potential imaging. Membrane Potential Imaging in the Nervous System. , (2010).
  4. Canepari, M., Djurisic, M., Zecevic, D. Dendritic signals from rat hippocampal CA1 pyramidal neurons during coincident pre- and post-synaptic activity: a combined voltage- and calcium imaging study. J. Physiol. 580, 463-484 (2007).
  5. Canepari, M., Popovic, M., Vogt, K., Holthoff, K., Konnerth, A., Salzberg, B. M., Grinvald, A., Antic, S. D., Zecevic, D., Canepari, M., Zecevic, D. Imaging submillisecond membrane potential changes from individual regions of single axons, dendrites and spines. Membrane Potential Imaging in the Nervous System. , (2010).
  6. Djurisic, M., Antic, S., Chen, W. R., Zecevic, D. Voltage imaging from dendrites of mitral cells: EPSP attenuation and spike trigger zones. J. Neurosci. 24, 6703-6714 (2004).
  7. Holthoff, K., Zecevic, D., Konnerth, A. Rapid time-course of action potentials in spines and remote dendrites of mouse visual cortical neurons. J. Physiol. 588, 1085-1096 (2010).
  8. Kole, M. H. P., Letzkus, J. J., Stuart, G. J. Axon initial segment Kv1 channels control axonal action potential waveform and synaptic efficacy. Neuron. 55, 633-647 (2007).
  9. Kuhn, B., Fromherz, P., Denk, W. High sensitivity of Stark-shift voltage-sensing dyes by one- or two-photon excitation near the red spectral edge. Biophysical J. 87, 631-639 (2004).
  10. Loew, L. M. Design and characterization of electrochromic membrane probes. J. Biochem. Biophys. Method. 6, 243-260 (1982).
  11. Loew, L., Canepari, M., Zecevic, D. Design and use of organic voltage sensitive dyes. Membrane Potential Imaging in the Nervous System. , (2010).
  12. Palmer, L. M., Stuart, G. J. Site of action potential initiation in layer 5 pyramidal neurons. J. Neurosci. 26, 1854-1863 (2006).
  13. Popovic, M. A., Foust, A. J., McCormick, D. A., Zecevic, D. The spatio-temporal characteristics of action potential initiation in layer 5 pyramidal neurons: a voltage imaging study. J. Physiol. 589, 4167-4187 (2011).
  14. Ross, W. N., Salzberg, B. M., Cohen, L. B., Grinvald, A., Davila, H. V., Waggoner, A. S., Wang, C. H. Changes in absorption, fluorescence, dichroism, and birefringence in stained giant axons: optical measurement of membrane potential. J. Membr. Biol. 33, 141-183 (1977).
  15. Shu, Y., Duque, A., Yu, Y., Haider, B., McCormick, D. A. Properties of action potential initiation in neocortical pyramidal cells: evidence from whole cell axon recordings. J Neurophysiol. 97, 746-760 (2007).
  16. Wu, J. -. Y., Cohen, L. B., Mason, W. T. Fast multisite optical measurement of membrane potential. A practical guide to technology for quantitative real-time analysis. , 389-404 (1993).
  17. Yuste, R. . Dendritic Spines. , (2010).
check_url/4261?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Popovic, M., Gao, X., Zecevic, D. Voltage-sensitive Dye Recording from Axons, Dendrites and Dendritic Spines of Individual Neurons in Brain Slices. J. Vis. Exp. (69), e4261, doi:10.3791/4261 (2012).

View Video