Summary

Isolasjon, karakterisering og Comparative Differensiering av Human tannpulpa stamceller hentet fra permanente tenner ved hjelp av to ulike metoder

Published: November 24, 2012
doi:

Summary

Metoden er beskrevet isolering og karakterisering av menneskelig tannpulpa stamceller (hDPSCs) ved hjelp av enten<strong> Enzymatisk dissosiasjon av papirmasse (DPSC-ED)</strong> Eller<strong> Direkte resultat av stamceller fra pulpavevet explants (DPSC-OG). Deretter fulgt av</strong><em> In vitro</em> Sammenlignende differensiering av begge typer hDPSCs inn odontoblaster.

Abstract

<p class="jove_content"> Utvikle visdomstennene er enkle tilgjengelige kilde til stamceller under voksenlivet som kunne oppnås ved rutinemessige kjeveortopedisk behandling. Menneskelige pulp-avledet stamceller (hDPSCs) har høy spredning potensial med multi-avstamning differensiering kapasitet i forhold til den ordinære kilden voksne stamceller<sup> 1-8</sup>, Og derfor kan hDPSCs være gode kandidater for autolog transplantasjon i tissue engineering og regenerativ medisin. Sammen med disse fordeler, innehar mesenchymale stamceller (MSC) funksjoner, slik som immunolodulatory effekt, gjør hDPSCs mer verdifull, selv i tilfelle av allograft transplantasjon<sup> 6,9,10</sup>. Derfor, er det primære trinnet for bruk av denne kilde til stamceller for å velge den beste protokollen for å isolere hDPSCs fra pulpavevet. For å oppnå dette målet, er det avgjørende å undersøke effekten av ulike isolasjon forhold på ulike cellulære atferd, for eksempel deres felles overflate markører og også deres differensiering kapasitet.</p><p class="jove_content"> Derfor, her vi skiller mennesker pulpavevet fra påvirket tredje molar tenner, og deretter brukt både eksisterende protokoller basert på litteratur, for å isolere hDPSCs,<sup> 11-13</sup><em> Dvs.</em> Enzymatisk dissosiasjon av pulpavevet (DPSC-ED) eller utvekst fra vev explants (DPSC-OG). I denne forbindelse, prøvde vi å legge til rette for isolasjon metoder ved hjelp av dental diamant disk. Deretter disse cellene preget i form av stromal-tilknyttede Markers (CD73, CD90, CD105 og CD44), blodkreft / endothelial markører (CD34, CD45 og CD11b), perivaskulær markør, som CD146 og også STRO-1. Etterpå ble disse to protokollene sammenlignet basert på differensiering styrke i odontoblaster både kvantitative polymerase chain reaction (QPCR) og Alizarin Red Farging. QPCR ble brukt for vurdering av uttrykket av mineralisering-relaterte gener (alkalisk fosfatase, ALP, matrix ekstracellulært phosphoglycoprotein, MEPE & dentin sialophosphoprotein, DSPP).<sup> 14</sup</p

Introduction

Stamceller er clonogenic celler som besitter to bemerkelsesverdige funksjoner, kjent som multi-styrke og selvfornyelse 15. Blant alle stamceller med ulike replicative potencies, har dental stamceller som de postnatal stamceller trukket oppmerksomhet de siste årene på grunn av sin tilgjengelighet, plastisitet, og høy proliferativ evne sammenlignet med andre voksne stamceller 16. Karakteristisk, ligner på stamceller, dental pulp stamceller er adherente clonogenic celler som har multippel differensiering kapasitet inn mesenchyme og / eller ikke-mesenchyme linjene, både in vitro og in vivo. 1-8,17,18 DPSCs identifiseres ved deres negative uttrykk for blodkreft antigener (f.eks CD45, CD34, CD14), og positive uttrykk for CD90, CD29, CD73, CD105, CD44 og STRO-1. 19,20

Enkel innhentet potensial med minimum smerte og sykelighet gjør menneskelige DPSCs som verdifullestand kilde MSCS forhold til ordinær kilder, for eksempel benmarg stamceller 21. Generelt har DPSCs blitt isolert ved enten utvekst metode, dvs. migrering av stamceller fra pulpavevet eksplanter (DPSC-OG) 22-24, og / eller ved enzymatisk fordøyelse (DPSC-ED) 4,6,25. Tidligere studier har vist at den isolasjon metoden og dyrkningsbetingelser kan indusere forskjellige populasjoner eller linjene under i vitro passasjer 26,27. I tilfelle av permanente tenner (pDPSCs), avslørte Huang et al at enzymatiske fordøyd pDPSCs har høyere spredning potensiale sammenlignet med de vokst DPSCs. 26 Videre, i tilfelle av melketenner (dDPSCs), ble det vist at STRO-1 & CD34 markører uttrykkes mer i dDPSC-ED sammenlignet med dDPSC-OG. I tillegg, viste dDPSC-ED høyere mineralisering rate i definerte osteo / odonto medium. 27 Derfor, på grunn av den enestående potensialet DPSCs i regenerative medisin, vil flere studier være nødvendig for bedre forståelse av mulige ulike populasjoner som er utledet fra ulike isolasjon metoder.

Her var det forsøk på å innføre enkel måte papirmasse ekstraksjon, ved å bruke en-trinns dental diamant disk å forenkle prosessen med papirmasse utvinning. Dessuten, etter isolering av humane papirmasse-avledede stamceller ved å bruke ED eller OG metoder ble generelle egenskaper og differensiering kapasitet mellom to grupper også undersøkt.

Protocol

1. Forbered Enzyme Solution og spredning Medium (PM) Merke collagenase Type I Løsning: Vei opp kollagenase type I (12 mg / ml) og oppløses i 1 ml PBS og filteret med en 0,2 um sprøytefilter. Deretter plasserer den 15 ml tube og holde det ved -20 ° C inntil nødvendig. Merke dispase Løsning: Vei opp dispase (16 mg / ml) og oppløses i 1 ml PBS og filteret med en 0,2 um sprøytefilter. Deretter plasserer den 15 ml tube og holde den ved 4 ° C inntil nødvendig. <…

Representative Results

DPSCs som ble innhentet ved enzymatisk dissosiasjon (DPSC-ED) er vist her på 10 dag, 15,18 (figur 1). Koloniene iverksatt for å danne på nesten 3 til 5 dager etter isolasjon. Outgrown DPSCs (DPSC-OG) er vist i figur 2 på 5 dag, 10, 13 & 18. Fibroblast-lignende celler begynte å migrere fra pulpavevet i flaska ved parallelle bestilling av nesten 5 dager etter såing. DPSCs på passasjen 3 med begge metoder er vist i figur 3.. Begge typer DPSCs var nesten i sa…

Discussion

Denne protokollen beskriver prosessen med isolering og karakterisering av hDPSCs fra tannpulpa ved hjelp av to metoder, enzymatisk dissosiasjon og direkte resultat av stamceller fra pulpavevet explants. I tillegg, i vitro differensiering av disse cellene til odontoblaster, ble vurdert av kvantitativ Alizarin Red S analysen & QPCR.

Eksisterende protokoller for å isolere pulpavevet fra menneskelig tann hadde blitt brukt ulike instrumenter som tang (bein tang) 9, utryddelsen

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takknemlig erkjenne Dr. Leila Shakeri & Dr. Aref Dournaei for sin kritiske diskos og Mr. Mohammad Reza Khadem Sharif for hans tekniske støtte.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue or Lot. number Comments (optional)
α-MEM GIBCO 11900-073
Collagenase type I Sigma-Aldrich C0130-100MG
Dispase GIBCO 17105-041
Penicillin/streptomycin GIBCO 15140-122
Amphotericin B GIBCO 15290-018
Fetal Bovine serum defined (FBS) HyClone SH30070.03
L-ascorbic acid 2-phosphate Sigma A8960-5G
L-glutamine GIBCO 25030-024
Dexamethasone Sigma D4902
β-Glycerol phosphate disodium salt hydrate, BioUltra Sigma G9422-100G
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich P5655
Osteogenesis Assay Kit Millipore PS01802031
Mouse IgG2b-PE isotype control BD pharmingen 50808088029
FITC mouse IgG2b isotype control BD pharmingen 559532
FITC mouse IgG1 κ isotype BD pharmingen 11471471
FITC/PE mouse anti-human CD34/CD45 BD pharmingen 341071
PE anti-human CD146 BD pharmingen 550315
Monoclonal mouse anti-human CD90/FITC Daka 00034418
PE mouse anti-human CD73 BD pharmingen 550257
Anti-h CD105/Endoglin PE BD pharmingen FAB10971P
PE mouse anti-human CD11b/Mac1 BD pharmingen 5553888
CD44 PE mouse anti human BD pharmingen 555479
Phosphate buffer Solution (PBS) GIBCO 003000
70-μm cell strainer Falcon 352360
0.2 μm syringe filter Millex-GV SLGV033RB
25 cm2 culture flask Sigma-Aldrich Z707481
EQUIPMENT
BD FACSCalibur BD 342975
multiskan microplate spectrophotometer Thermo scientific 51119200
Fleurcense Microscope Olympus
Flowing Software version 2.3.1

References

  1. Volponi, A. A., Pang, Y., Sharpe, P. T. Stem cell-based biological tooth repair and regeneration. Trends Cell Biol. 20, 715-722 (2010).
  2. Nosrat, I. V., Widenfalk, J., Olson, L., Nosrat, C. A. Dental pulp cells produce neurotrophic factors, interact with trigeminal neurons in vitro, and rescue motoneurons after spinal cord injury. Dev. Biol. 238, 120-132 (2001).
  3. Gandia, C., et al. Human dental pulp stem cells improve left ventricular function, induce angiogenesis, and reduce infarct size in rats with acute myocardial infarction. Stem Cells. 26, 638-645 (2008).
  4. Gronthos, S., Mankani, M., Brahim, J., Robey, P. G., Shi, S. Postnatal human dental pulp stem cells (DPSCs) in vitro and in vivo. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A.. 97, 13625-13630 (2000).
  5. Graziano, A., d’Aquino, R., Laino, G., Papaccio, G. Dental pulp stem cells: a promising tool for bone regeneration. Stem Cell Rev. 4, 21-26 (2008).
  6. Kerkis, I., et al. Early transplantation of human immature dental pulp stem cells from baby teeth to golden retriever muscular dystrophy (GRMD) dogs: Local or systemic. J. Transl. Med. 6, 35 (2008).
  7. Onyekwelu, O., Seppala, M., Zoupa, M., Cobourne, M. T. Tooth development: 2. Regenerating teeth in the laboratory. Dent. Update. 34, 20-29 (2007).
  8. Cordeiro, M. M., et al. Dental pulp tissue engineering with stem cells from exfoliated deciduous teeth. J. Endod. 34 (08), 962-969 (2008).
  9. Pierdomenico, L., et al. Multipotent mesenchymal stem cells with immunosuppressive activity can be easily isolated from dental pulp. Transplantation. 80, 836-842 (2005).
  10. de Mendonca Costa, A., et al. Reconstruction of large cranial defects in nonimmunosuppressed experimental design with human dental pulp stem cells. J. Craniofac. Surg. 19, 204-210 (2008).
  11. Tirino, V., et al. Methods for the identification, characterization and banking of human DPSCs: current strategies and perspectives. Stem Cell Rev. 7, 608-615 (2011).
  12. Tirino, V., Paino, F., De Rosa, A., Papaccio, G. Identification, isolation, characterization, and banking of human dental pulp stem cells. Methods Mol. Biol. 879, 443-463 (2012).
  13. Eslaminejad, M. B., Vahabi, S., Shariati, M., Nazarian, H. In vitro Growth and Characterization of Stem Cells from Human Dental Pulp of Deciduous Versus Permanent Teeth. J. Dent. (Tehran). 7, 185-195 (2010).
  14. Wei, X., Ling, J., Wu, L., Liu, L., Xiao, Y. Expression of mineralization markers in dental pulp cells. J. Endod. 33, 703-708 (2007).
  15. Nombela-Arrieta, C., Ritz, J., Silberstein, L. E. The elusive nature and function of mesenchymal stem cells. Nat. Rev. Mol Cell Biol. 12, 126-131 (2011).
  16. Huang, G. T., Gronthos, S., Shi, S. Mesenchymal stem cells derived from dental tissues vs. those from other sources: their biology and role in regenerative medicine. J. Dent. Res. 88, 792-806 (2009).
  17. Graziano, A., et al. Scaffold’s surface geometry significantly affects human stem cell bone tissue engineering. J. Cell Physiol. 214, 166-172 (2008).
  18. d’Aquino, R., et al. Human dental pulp stem cells: from biology to clinical applications. J. Exp. Zool. B. Mol. Dev. Evol. 312, 408-415 (2009).
  19. Mitsiadis, T. A., Feki, A., Papaccio, G., Caton, J. Dental pulp stem cells, niches, and notch signaling in tooth injury. Adv. Dent. Res. 23, 275-279 (2011).
  20. Shi, S., Gronthos, S. Perivascular niche of postnatal mesenchymal stem cells in human bone marrow and dental pulp. J. Bone Miner. Res. 18, 696-704 (2003).
  21. Tomic, S., et al. Immunomodulatory properties of mesenchymal stem cells derived from dental pulp and dental follicle are susceptible to activation by toll-like receptor agonists. Stem Cells Dev. 20, 695-708 (2011).
  22. Tsukamoto, Y., et al. Mineralized nodule formation by cultures of human dental pulp-derived fibroblasts. Arch. Oral Biol. 37, 1045-1055 (1992).
  23. About, I., et al. Human dentin production in vitro. Exp. Cell Res. 258, 33-41 (2000).
  24. Couble, M. L., et al. Odontoblast differentiation of human dental pulp cells in explant cultures. Calcif. Tissue Int. 66, 129-138 (2000).
  25. Onishi, T., Kinoshita, S., Shintani, S., Sobue, S., Ooshima, T. Stimulation of proliferation and differentiation of dog dental pulp cells in serum-free culture medium by insulin-like growth factor. Arch. Oral Biol. 44 (99), 361-371 (1999).
  26. Huang, G. T., Sonoyama, W., Chen, J., Park, S. H. In vitro characterization of human dental pulp cells: various isolation methods and culturing environments. Cell Tissue Res. 324, 225-236 (2006).
  27. Bakopoulou, A., et al. Assessment of the impact of two different isolation methods on the osteo/odontogenic differentiation potential of human dental stem cells derived from deciduous teeth. Calcif. Tissue Int. 88, 130-141 (2011).
  28. Curtis, K. M., et al. EF1alpha and RPL13a represent normalization genes suitable for RT-qPCR analysis of bone marrow derived mesenchymal stem cells. BMC Mol. Biol. 11, 61 (2010).
  29. Suchanek, J., et al. Dental pulp stem cells and their characterization. Biomed. Pap. Med. Fac. Univ. Palacky Olomouc Czech Repub. 153, 31-35 (2009).
  30. d’Aquino, R., et al. Human postnatal dental pulp cells co-differentiate into osteoblasts and endotheliocytes: a pivotal synergy leading to adult bone tissue formation. Cell Death Differ. 14, 1162-1171 (2007).
  31. Atari, M., et al. Isolation of pluripotent stem cells from human third molar dental pulp. Histol. Histopathol. 26, 1057-1070 (2011).
check_url/4372?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Karamzadeh, R., Eslaminejad, M. B., Aflatoonian, R. Isolation, Characterization and Comparative Differentiation of Human Dental Pulp Stem Cells Derived from Permanent Teeth by Using Two Different Methods. J. Vis. Exp. (69), e4372, doi:10.3791/4372 (2012).

View Video