Summary

Isolering og Differentiering af Stromale vaskulære celler til Beige / Brite Cells

Published: March 28, 2013
doi:

Summary

Primært hvide præadipocytter isoleret fra hvide fedtvæv hos mus kan opdeles i beige / Brite celler. Præsenteret her er en pålidelig trådløs model system til at undersøge den molekylære regulering af "bruning" af hvidt fedt.

Abstract

Brune adipocyter har evnen til at afkoble den respiratoriske kæde i mitochondrierne og sprede kemiske energi som varme. Udvikling af UCP1-positive brune adipocyter i hvide fedtvæv (såkaldte beige eller Brite celler) er stærkt induceres af en lang række miljømæssige signaler, såsom kronisk kulde eller PPARy-agonister derfor denne celletype har potentiale som et terapeutisk mål for fedme behandling. Selv om de fleste immortaliserede adipocyt linier ikke kan gentage processen med "brunfarvning" af hvidt fedt i kultur, primære adipocytter isoleret fra stromal vaskulær fraktion i subkutant white adipose tissue (WAT) tilvejebringe et pålideligt cellulært system til at undersøge den molekylære kontrol af beige / Brite celleudvikling . Her beskriver vi en protokol for effektiv isolering af primære præadipocytter og til fremkaldelse af differentiering til beige / Brite celler i kultur. Den bruning effekt kan vurderes ved ekspression af brunt fedt-selektiv mærkeERS såsom UCP1.

Introduction

Fedme er dramatisk stigende på verdensplan, og er nu betragtes som en af de mest alvorlige bekymringer for folkesundheden 1. Denne tilstand er forbundet med en misbalance i energiindtag i forhold til udgifterne og resulterer i overskydende energi lagres som lipid i hvidt adipøst væv (WAT). Forstørret WAT er forbundet med øget masse og vægt, mens brunt fedtvæv har evnen til at sprede overskydende energi til at producere varme. Derfor BAT kan fungere som beskyttelse mod både kulde og fedme 2,3. Dette opnås ved afkobling af elektrontransport i mitokondrierne ved frakobling protein 1 (UCP1). Dette protein betragtes som kendetegnende for nonshivering termogenese i BAT 3. Flere undersøgelser i de senere år har vist, at voksne mennesker har funktionel BAT 4-8 og dermed kan manipulation af BAT i mennesker være en potentiel terapeutisk intervention i kampen mod fedme og dens sygdomme.

jove_content "> Aktuel viden indikerer, at to typer af brune adipocyter findes hos gnavere," klassisk "eller" præ-eksisterende "brunt fedt udvikles under prænatal fase og danner dedikerede brune adipose depoter i interscapular regionen og andre perifere væv På den anden side. En "inducerbar" form af brunt fedt (såkaldte brite eller beige celler) udvikles under postnatale fase og vises indflettet i hvide fedtvæv. De to typer af brune adipocyter er også adskilt af forskellige udviklingsstadier oprindelse. Mens den allerede eksisterende brune adipocyter skyldes myoblastsic-lignende Myf5 forstadier, de inducerbare Brite / beige celler indflettet i WAT opstå fra en ikke-Myf5 linjen 9,10. Derudover er regulatoriske veje af denne celletype kan være forskellig fra den Myf5-afledte brown adipocytter 11. Udviklingen af beige celler (dvs. "brunfarvning" af hvidt fedt) kan aktiveres som reaktion på kronisk kulde ogβ3-adrenoceptor-agonister eller PPARy-agonister hos voksne 12-14. De beige / Brite celler sandsynligvis er en lovende terapeutisk mål for manipulation af samlede energibalance og kan potentielt blive en del af fedme behandling, og derfor er det vigtigt at forstå præcise molekylære mekanismer og signaleringsveje, hvorved miljømæssige signaler styrer udviklingen af ​​beige celler.

For at forstå den molekylære kontrol af brunfarvning af hvidt fedt, er in vitro-eksperimenter bedst egnet som differentieringen af præadipocytter foregår temmelig asynkront, og det er vanskeligt at detektere af cellerne in situ 15. Selv om undersøgelser af adipocyt udvikling således er hidtil blevet udført primært på cellelinier, såsom 3T3-L1, 3T3-F442A eller HIB1, disse cellelinjer synes at mangle den molekylære signatur af beige celler. På den anden side, er primære adipocytter isoleret fra subkutan WAT mest sandsynligt, at gentage de forarbejds i brunfarvning af hvidt fedt i en celle selvstændig måde. Her giver vi en protokol for effektiv isolering af det stromale-kar fraktion fra fedtvæv og til at fremkalde den brunfarvning af hvide fedt som reaktion på PPARy-agonister. Rosiglitazon er blevet vist at være et særligt effektivt mediator af brunfarvning i disse celler. Som tidligere antydet 16, kan denne cellulære system anvendes til at tjene et pålideligt cellulært system til at studere udviklingen af beige / Brite celler.

Protocol

1. Forbered Fordøjelse Medium Gøre 5 ml per 5 mus pr væv (ca. 1 ml / 1 g fedtvæv). Afvejes i fordøjelsesenzymer: – Collaginase D: 1,5 u / ml (1108874103, 1 g, Roche, 70.334.223) – Dispase II: 2,4 u / ml (04942078001, 0.980 mg / Lyø, Roche, 11.466.200) Tilføj 25 ml PBS og bland godt for at opløse Tilføj CaCl2 lige før fordøjelse af vævet ved en slutkoncentration på 10 mM 2. Dissekere fedtvæv…

Representative Results

Bruning af primære adipocytter kan tilgås ved at måle mRNA-ekspression af UCP1 og andre brunt fedt-specifikke eller selektive gener ved qRT-PCR. Vist i figur 1 er genekspression data i ingvinale WAT-afledte primære adipocyter. Cellerne blev induceret til at differentiere i nærværelse af to forskellige doser af rosiglitazon ved 50 nM og 500 nM. En undergruppe af celler blev behandlet med forskolin ved 10 uM for 4 timer før høst. Dette vil inducere cyklisk-AMP (cAMP) i cellerne og aktiver…

Discussion

Her præsenterer vi et pålideligt cellulært system til at studere udviklingen af ​​beige / Brite celler i primære dyrkede adipocytter i mus. Sammenlignet med adskillige tilgængelige udødeliggjorte cellelinier, dette system vil sandsynligvis give bedre relevans for brunfarvning af hvidt fedt in vivo.

Selv om studiet af disse primære adipocytter giver nogle fordele, der også findes visse begrænsninger og bekymringer, der er vigtige at overveje. Dels dette system er meget a…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Haruya Ohno, Kosaku Shinoda, Louis Sharp, Emi Tomoda, og Lauren Ruiz for diskussion, teknisk hjælp og redaktionel bistand på manuskriptet. Dette arbejde blev støttet af tilskud fra NIH (DK087853) fra Program for Breakthrough Biomedical Research og fra Asubio Pharm Inc. til SKULA blev støttet af en aktie ph.d.-stipendier fra Københavns Universitet og EU FP7 projekt Diabat (HEALTH-F2 -2.011-278.373) til Lise Madsen og Karsten Kristiansen. Vi anerkender også den DERC center tilskud (NIH P30 DK063720).

Materials

Reagent
Collaginase D Roche 11088874103
Dispase II Roche 04942078001
CaCl2
DMEM medium Fisher 10017-CV With 2,5 g/l glucose & L-glutamine without sodium pyruvate
Insulin
T3 (3,3′,5-Triiodo-L-thyronine) Sigma T-2877
Indomethacin Sigma I-7378
Dexamethasone Sigma D-1756
IBMX Sigma I-5879
Rosiglitazone Sigma R-2408
Equipment
Collagen coated dishes BD 354450 10 cm plates
70 μm filter BD Falcon 352350 Cell strainer,70 μm nylon 1/ea

References

  1. Barness, L. A., Opitz, J. M., Gilbert-Barness, E. Obesity: genetic, molecular, and environmental aspects. American Journal of Medical Genetics. Part A. 143A, 3016-3034 (2007).
  2. Rothwell, N. J., Stock, M. J. Combined effects of cafeteria and tube-feeding on energy balance in the rat. The Proceedings of the Nutrition Society. 38, 5A (1979).
  3. Cannon, B., Nedergaard, J. Brown adipose tissue: function and physiological significance. Physiological Reviews. 84, 277-359 (2004).
  4. Cypess, A. M., et al. Identification and importance of brown adipose tissue in adult humans. The New England Journal of Medicine. 360, 1509-1517 (2009).
  5. van Marken Lichtenbelt, W. D., et al. Cold-activated brown adipose tissue in healthy men. The New England Journal of Medicine. 360, 1500-1508 (2009).
  6. Virtanen, K. A., et al. Functional brown adipose tissue in healthy adults. The New England Journal of Medicine. 360, 1518-1525 (2009).
  7. Zingaretti, M. C., et al. The presence of UCP1 demonstrates that metabolically active adipose tissue in the neck of adult humans truly represents brown adipose tissue. FASEB Journal: Official Publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology. 23, 3113-3120 (2009).
  8. Saito, M., et al. High incidence of metabolically active brown adipose tissue in healthy adult humans: effects of cold exposure and adiposity. Diabetes. 58, 1526-1531 (2009).
  9. Seale, P., et al. PRDM16 controls a brown fat/skeletal muscle switch. Nature. 454, 961-967 (2008).
  10. Petrovic, N., et al. Chronic peroxisome proliferator-activated receptor gamma (PPARgamma) activation of epididymally derived white adipocyte cultures reveals a population of thermogenically competent, UCP1-containing adipocytes molecularly distinct from classic brown adipocytes. The Journal of Biological Chemistry. 285, 7153-7164 (2010).
  11. Coulter, A. A., Bearden, C. M., Liu, X., Koza, R. A., Kozak, L. P. Dietary fat interacts with QTLs controlling induction of Pgc-1 alpha and Ucp1 during conversion of white to brown fat. Physiological Genomics. 14, 139-147 (2003).
  12. Klingenspor, M. Cold-induced recruitment of brown adipose tissue thermogenesis. Experimental Physiology. 88, 141-148 (2003).
  13. Cinti, S. The adipose organ. Prostaglandins, leukotrienes, and essential fatty acids. 73, 9-15 (1016).
  14. Ghorbani, M., Himms-Hagen, J. Appearance of brown adipocytes in white adipose tissue during CL 316,243-induced reversal of obesity and diabetes in Zucker fa/fa rats. International Journal of Obesity and Related Metabolic Disorders: Journal of the International Association for the Study of Obesity. 21, 465-475 (1997).
  15. Hansen, J. B., Kristiansen, K. Regulatory circuits controlling white versus brown adipocyte differentiation. The Biochemical Journal. 398, 153-168 (2006).
  16. Ohno, H., Shinoda, K., Spiegelman, B. M., Kajimura, S. PPARy agonists induce a white-to-brown fat conversion through stabilization of PRDM16 protein. Cell metabolism. 15, 395-404 (2012).
  17. Lee, Y. H., Petkova, A. P., Mottillo, E. P., Granneman, J. G. In vivo identification of bipotential adipocyte progenitors recruited by beta3-adrenoceptor activation and high-fat feeding. Cell Metabolism. 15, 480-491 (2012).
  18. Cinti, S. Transdifferentiation properties of adipocytes in the adipose organ. American Journal of Physiology. Endocrinology and Metabolism. 297, E977-E986 (2009).
  19. Barbatelli, G., et al. The emergence of cold-induced brown adipocytes in mouse white fat depots is determined predominantly by white to brown adipocyte transdifferentiation. American Journal of Physiology. Endocrinology and Metabolism. 298, E1244-E1253 (2010).
  20. Petrovic, N., et al. Chronic peroxisome proliferator-activated receptor gamma (PPARgamma) activation of epididymally derived white adipocyte cultures reveals a population of thermogenically competent, UCP1-containing adipocytes molecularly distinct from classic brown adipocytes. The Journal of Biological Chemistry. 285, 7153-7164 (2009).
  21. Rong, J. X., et al. Adipose mitochondrial biogenesis is suppressed in db/db and high-fat diet-fed mice and improved by rosiglitazone. Diabetes. 56, 1751-1760 (2007).
  22. Wilson-Fritch, L., et al. Mitochondrial remodeling in adipose tissue associated with obesity and treatment with rosiglitazone. The Journal of Clinical Investigation. 114, 1281-1289 (2004).
  23. Sell, H., et al. Peroxisome proliferator-activated receptor gamma agonism increases the capacity for sympathetically mediated thermogenesis in lean and ob/ob mice. Endocrinology. 145, 3925-3934 (2004).
  24. Fukui, Y., Masui, S., Osada, S., Umesono, K., Motojima, K. A new thiazolidinedione, NC-2100, which is a weak PPAR-gamma activator, exhibits potent antidiabetic effects and induces uncoupling protein 1 in white adipose tissue of KKAy obese mice. Diabetes. 49, 759-767 (2000).
  25. Vernochet, C., et al. C/EBPalpha and the corepressors CtBP1 and CtBP2 regulate repression of select visceral white adipose genes during induction of the brown phenotype in white adipocytes by peroxisome proliferator-activated receptor gamma agonists. Molecular and Cellular Biology. 29, 4714-4728 (2009).
  26. Tai, T. A., et al. Activation of the nuclear receptor peroxisome proliferator-activated receptor gamma promotes brown adipocyte differentiation. The Journal of Biological Chemistry. 271, 29909-29914 (1996).
  27. Sugii, S., et al. PPARgamma activation in adipocytes is sufficient for systemic insulin sensitization. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106, 22504-22509 (2009).
check_url/50191?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Liisberg Aune, U., Ruiz, L., Kajimura, S. Isolation and Differentiation of Stromal Vascular Cells to Beige/Brite Cells. J. Vis. Exp. (73), e50191, doi:10.3791/50191 (2013).

View Video