Summary

Verbeterde werkwijze voor de bereiding van een Human-Cell gebaseerde, Contact Model van de bloed-hersenbarrière

Published: November 12, 2013
doi:

Summary

Oprichting van menselijke modellen van de bloed-hersenbarrière (BBB) ​​kan profiteren onderzoek naar hersenen voorwaarden in verband met BBB mislukking. We beschrijven hier een verbeterde techniek voor de bereiding van een contact BBB model dat coculturing menselijke astrocyten en brein endotheelcellen maakt aan de tegenovergestelde zijden van een poreus membraan.

Abstract

De bloed-hersenbarrière (BBB) ​​bestaat uit ondoordringbare maar aanpasbare hersenen haarvaten die streng te controleren, de hersenen milieu. Niet de BBB is geïmpliceerd in de etiologie van vele hersenen pathologieën, noopt tot de ontwikkeling van humane in vitro modellen BBB helpt bij klinisch relevante onderzoek. Onder de talrijke BBB modellen dusver beschreven, een statische (zonder stroom), contact BBB model, waarbij astrocyten en de hersenen endotheelcellen (BEC) worden gekweekt samen aan weerszijden van een poreus membraan, ontwikkeld tot een vereenvoudigde, doch authentieke systeem het simuleren BBB met high throughput screening capaciteit. Toch is de generatie van dergelijk model geeft weinig technische uitdagingen. Hier beschrijven we een protocol voor de bereiding van een contact menselijk BBB model gebruik te maken van een nieuwe combinatie van primaire menselijke Becs en onsterfelijke, menselijke astrocyten. Concreet, we detail een innovatieve methode voor cel-zaaien op omgekeerde inserts evenals specificeren insertiet kleurtechnieken en illustreren hoe we ons model voor BBB-gerelateerd onderzoek.

Introduction

De BBB is een gespecialiseerde interface tussen de perifere bloedsomloop en het centrale zenuwstelsel, cruciaal verantwoordelijk voor het onderhoud van hersenen hemostase. Het bestaat uit verschillende hersenen microvasculaire endotheelcellen (BEC) die functioneel worden beïnvloed door enkele cellulaire en acellulaire componenten (hieronder) om een ​​strakke en dynamische gateway in de hersenen vormen. Onder fysiologische omstandigheden de BBB beperkt de doorgang van bloedcellen, plasma componenten en schadelijke stoffen, alle potentieel neurotoxische, in de hersenen. Tegelijkertijd heeft de BBB wisselt selectief sleutel ionen en voedingsstoffen (glucose en aminozuren) en metabolische afvalproducten tussen de hersenen en de circulatie naar de hersenen milieu 1,2 nauwkeurig te behouden. De laatste jaren is het steeds duidelijk dat de mislukking van BBB voorkomt in een verscheidenheid van chronische hersen aandoeningen zoals neurodegeneratieve en inflammatoire ziekten (Alzheimer en multiple sclerose, respectievelijk) 3, en bij acute aandoeningen zoals ischemische beroerte 4.

De unieke eigenschappen BBB hersenen endotheelcellen (BEC) worden grotendeels veroorzaakt door de omgeving cerebrale 5, en met name door astrocyten 6,7. Er is een groeiend besef dat andere celtypen, zoals pericyten 8, neuronen en microglia 1,3, en de basale membraan 9, ondersteunt BEC en samen een functionele eenheid zogenaamde "neurovasculaire eenheid" (NVU) die tegelijkertijd koppels neuronale metabole eisen aan hen leveren, haarvaten 10.

De betrokkenheid van de BBB in pathologische situaties ten grondslag talrijke pogingen om de ontwikkeling van in vitro BBB-modellen ten behoeve van BBB-gerelateerd onderzoek 11,12. Deze modellen doel zo dicht mogelijk na te bootsen in vivo BBB kenmerken volgens het beginsel NVU. In vitro </em> BBB-modellen over het algemeen rekenen op een monolaag van-tight-junction vormen Becs (vooral van runderen 13, menselijk 14, 15 rat, muis 16, en varkens 17,18 afkomst), gekweekt op een poreus membraan alsmede ondersteunend astrocyten (uitgebreid beoordeeld door Deli et al.. 2005 11).

Astrocyten kunnen worden gekweekt in contactloze omstandigheden op de bodem van een weefselkweek goed gescheiden van BEC (gekweekt op het bovenoppervlak van het membraan) van het kweekmedium Nog communiceren met BEC via oplosbare factoren 16. In meer geavanceerde modellen die beter te lijken de anatomische structuur van de BBB in vivo worden astrocyten in contact gehouden omstandigheden gekweekt en direct aan de andere zijde van het membraan dicht bij BEC 13,15,17 (figuur 1). Deze configuratie maakt het mogelijk fysiek contact tussen Becs en astrocyten, opgericht als astrocyten projecthun processen door het poreuze membraan. Belangrijk, voor een echt contact te komen de poriën dient ≥ 1 urn in diameter, omdat astrocytaire end-voeten niet kan passeren kleinere poriën (dwz 0,4 micrometer) 14,15. Met name worden contact BBB systemen aangetoond in sommige studies superieur aan hun contactloze tegenhangers over hun trans endotheliale elektrische weerstand (TEER) en endotheliale permeabiliteit van verschillende tracers 13,17,18 te zijn. Een extra dimensie van doorstroming werd onlangs toegevoegd in een aantal in vitro BBB modellen afschuifkrachten toepassing op het endotheel nauwere simulatie van de hersenen vasculatuur 12,19.

Een technische hindernis te overwinnen bij het genereren van een contact BBB model is het zaaien van astrocyten tegen de zwaartekracht op het abluminale oppervlak van het poreuze membraan. Eerdere protocollen 13,20, waar astrocyten eenvoudigweg werden gezaaid in een druppel media bovenop een inomgezet insert, alleen toegestaan ​​korte zaaien tijden (dwz 10 min 13 of 2 uur 20), die werden gevonden in onze handen onvoldoende voor een goede hechting van cellen te zijn. Uitgaande van deze eerste methode, een langer astrocyten bevestiging vereist constante monitoring van de inserts door frequent openen van de incubator (waardoor schommelingen in temperatuur, pH en vocht) en is ook gevoelig voor ongelijkmatige zaaien van cellen door lekkage van media door de poriën, met name indien poriën groter dan 1 micrometer in dienst zijn.

We beschrijven hier een algemeen protocol voor de bereiding van een contact BBB-model. Onze werkwijze omvat een alternatieve werkwijze voor cel-enten op omgekeerde inserts, welke de bovenvermelde beperkingen richt. De werkwijze maakt ongestoorde hechting van astrocyten op het abluminale membraanoppervlak, per evenwicht incubator voor langere tijd. Hierdoor wordt een gelijkmatige zaaien van astrocyten bereikt die barrière kwaliteit toeneemten minimaliseert basale doorlaatbaarheid verschillen tussen de inserts.

Aangezien het gebruik van menselijke cellen is belangrijk voor het menselijk-relevant onderzoek 21, we bovendien aantonen in dit artikel het specifieke gebruik van een nieuwe combinatie van primaire menselijke Becs en onsterfelijke, menselijke astrocyten voor de oprichting van een contact menselijk BBB-model met een high throughput screening capaciteit . Sinds het bekijken van cellen op poreuze membranen kan moeilijk zijn, we ook detail kleuring technieken die kunnen helpen bij het bepalen van samenloop en cel morfologie op de poreuze membranen. Tenslotte hebben we een voorbeeld hoe onze menselijke BBB model kan worden gebruikt om het effect van weefsel-type plasminogeen activator (t-PA) onderzoeken – een stolsel busting enzym dat als enige behandelingsoptie voor acute ischemische beroerte – de BBB.

Protocol

1. Cell Culture (3-7 dagen voor BBB Vergadering) 1.1. Primaire Human Brain microvasculaire endotheelcellen (Becs) Becs werden commercieel verkregen. De cellen werden door Dispase dissociatie van normale menselijke hersenen cortex weefsel en ontvangen van doorgang 3 (<12 populatie verdubbelingen) bevroren. Substratum: Jas weefselkweek schepen met "Attachment Factor" volgens de instructies van de fabrikant. Onderhoudscel:…

Representative Results

Om menselijk contact BBB model moesten we SVGs en BEC op poreuze membranen cultiveren met een 3 micrometer poriegrootte, aangetoond passage van astrocyten end-voeten mogelijk voor contact met endotheelcellen 14,15,27,28 stellen. Een schematische weergave van de volledige contactmodel wordt geïllustreerd in figuur 1 (linker afbeelding). De belangrijkste technische uitdaging van een contactsysteem is de noodzaak om astrocyten zaad tegen de zwaartekracht op het abluminale oppervlak van het memb…

Discussion

Medisch onderzoek naar hersenen pathologieën lijdt veel translationeel moeite. Op het gebied van acute ischemische beroerte, bijvoorbeeld veel geneesmiddelen die grote belofte in diermodellen bleek niet in de kliniek 38,39. De redenen voor deze teleurstellende resultaten zijn divers en omvatten ontrouw van de preklinische testsystemen om de menselijke beroerte scenario en overwaardering van de resultaten verkregen uit dierproeven 21. Een strategie om de voorspellende waarde van preklinische bevind…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Deze studie werd gefinancierd door subsidies toegekend aan RLM van de National Health and Medical Research Council of Australia (subsidie ​​# 606658).

Materials

Attachment Factor Cell-Systems Corporation 4Z0-210
Brain microvascular endothelial cells (BECs), primary, human Cell-Systems Corporation ACBRI 376
Complete medium Cell-Systems Corporation 4Z0-500 Supplemented with CSC JetFuel
Complete serum-free medium Cell-Systems Corporation SF-4Z0-500 Supplemented with CSC RocketFue
DMEM/F-12 with 15 mM HEPES Life Technologies 11330-032
Endothelial cells growth supplement (from bovine origin) Sigma-Aldrich E2759-15MG
External silicone tubing Watson-Marlow 913.A080.016 Pumpsil brand, 8 mm internal diameter, 1.6 mm wall
Foetal calf serum Lonza 14-501F
Gentamycin sulfate Life Technologies 15750-060
Heparin sodium Pfizer 1,000 U/ml
Hexamethyldisilazane (HMDS) Sigma-Aldrich H4875
Human brain microvascular endothelial cells Cell-Systems Corporation ACBRI 376
Internal silicone tubing Watson-Marlow 913.A032.016 Pumpsil brand, 3.2 mm internal diameter, 1.6 mm wall
L-Glutamine Life Technologies 25030
Mayer’s hematoxylin solution Amber Scientific MH
Minimum essential medium with Earle’s balanced salt solution HyClone Laboratories SH30244.01
Penicillin/Streptomycin Life Technologies 15140
Rat collagen I Trevigen 3440-100-01 Cultrex brand
Tissue culture inserts Corning Life Sciences 3472 Transwell brand, 6.5 mm in diameter, with polyester porous membrane, 3 µm pore-size

References

  1. Hawkins, B. T., Davis, T. P. The blood-brain barrier/neurovascular unit in health and disease. Pharmacol. Rev. 57, 173-185 (2005).
  2. Abbott, N. J., Patabendige, A. A., Dolman, D. E., Yusof, S. R., Begley, D. J. Structure and function of the blood-brain barrier. Neurobiol. Dis. 37, 13-25 (2010).
  3. Zlokovic, B. V. The blood-brain barrier in health and chronic neurodegenerative disorders. Neuron. 57, 178-201 (2008).
  4. Vivien, D., Gauberti, M., Montagne, A., Defer, G., Touze, E. Impact of tissue plasminogen activator on the neurovascular unit: from clinical data to experimental evidence. J. Cereb. Blood Flow Metab. 31, 2119-2134 (2011).
  5. Stewart, P. A., Wiley, M. J. Developing nervous tissue induces formation of blood-brain barrier characteristics in invading endothelial cells: a study using quail–chick transplantation chimeras. Dev. Biol. 84, 183-192 (1981).
  6. Janzer, R. C., Raff, M. C. Astrocytes induce blood-brain barrier properties in endothelial cells. Nature. 325, 253-257 (1987).
  7. Abbott, N. J., Ronnback, L., Hansson, E. Astrocyte-endothelial interactions at the blood-brain barrier. Nat. Rev. Neurosci. 7, 41-53 (2006).
  8. Dalkara, T., Gursoy-Ozdemir, Y., Yemisci, M. Brain microvascular pericytes in health and disease. Acta Neuropathol. 122, 1-9 (2011).
  9. Engelhardt, B., Sorokin, L. The blood-brain and the blood-cerebrospinal fluid barriers: function and dysfunction. Semin. Immunopathol. 31, 497-511 (2009).
  10. Girouard, H., Iadecola, C. Neurovascular coupling in the normal brain and in hypertension, stroke, and Alzheimer disease. J. Appl. Physiol. 100, 328-335 (2006).
  11. Deli, M. A., Abraham, C. S., Kataoka, Y., Niwa, M. Permeability studies on in vitro blood-brain barrier models: physiology, pathology, and pharmacology. Cell. Mol. Neurobiol. 25, 59-127 (2005).
  12. Booth, R., Kim, H. Characterization of a microfluidic in vitro model of the blood-brain barrier (muBBB). Lab Chip. 12, 1784-1792 (2012).
  13. Gaillard, P. J., et al. Establishment and functional characterization of an in vitro model of the blood-brain barrier, comprising a co-culture of brain capillary endothelial cells and astrocytes. Eur. Pharm. Sci. 12, 215-222 (2001).
  14. Hurwitz, A. A., Berman, J. W., Rashbaum, W. K., Lyman, W. D. Human fetal astrocytes induce the expression of blood-brain barrier specific proteins by autologous endothelial cells. Brain Res. 625, 238-243 (1993).
  15. Demeuse, P., et al. Compartmentalized coculture of rat brain endothelial cells and astrocytes: a syngenic model to study the blood-brain barrier. J. Neurosci. Methods. 121, 21-31 (2002).
  16. Coisne, C., et al. Mouse syngenic in vitro blood-brain barrier model: a new tool to examine inflammatory events in cerebral endothelium. Lab. Invest. 85, 734-746 (2005).
  17. Cohen-Kashi Malina, K., Cooper, I., Teichberg, V. I. Closing the gap between the in vivo and in vitro blood-brain barrier tightness. Brain Res. 1284, 12-21 (2009).
  18. Kroll, S., et al. Control of the blood-brain barrier by glucocorticoids and the cells of the neurovascular unit. Ann. N. Y. Acad. Sci. 1165, 228-239 (2009).
  19. Cucullo, L., et al. Immortalized human brain endothelial cells and flow-based vascular modeling: a marriage of convenience for rational neurovascular studies. J. Cereb. Blood Flow Metab. 28, 312-328 (2008).
  20. Li, G., et al. Permeability of endothelial and astrocyte cocultures: in vitro blood-brain barrier models for drug delivery studies. Ann. Biomed. Eng. 38, 2499-2511 (2010).
  21. Antonic, A., Sena, E., Donnan, G., Howells, D. Human In Vitro Models of Ischaemic Stroke: a Test Bed for Translation. Transl. Stroke Res. 3, 306-309 (2012).
  22. Major, E. O., et al. Establishment of a line of human fetal glial cells that supports JC virus multiplication. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 82, 1257-1261 (1985).
  23. Eugenin, E. A., Berman, J. W. Chemokine-dependent mechanisms of leukocyte trafficking across a model of the blood-brain barrier. Methods. 29, 351-361 (2003).
  24. Dehouck, M. P., et al. Drug transfer across the blood-brain barrier: correlation between in vitro and in vivo models. J. Neurochem. 58, 1790-1797 (1992).
  25. Perriere, N., et al. Puromycin-based purification of rat brain capillary endothelial cell cultures. Effect on the expression of blood-brain barrier-specific properties. J. Neurochem. 93, 279-289 (2005).
  26. Niego, B., Samson, A. L., Petersen, K. U., Medcalf, R. L. Thrombin-induced activation of astrocytes in mixed rat hippocampal cultures is inhibited by soluble thrombomodulin. Brain Res. 1381, 38-51 (2011).
  27. Ma, S. H., Lepak, L. A., Hussain, R. J., Shain, W., Shuler, M. L. An endothelial and astrocyte co-culture model of the blood-brain barrier utilizing an ultra-thin, nanofabricated silicon nitride membrane. Lab Chip. 5, 74-85 (2005).
  28. Niego, B., Freeman, R., Puschmann, T. B., Turnley, A. M., Medcalf, R. L. t-PA-specific modulation of a human BBB model involves plasmin-mediated activation of the Rho-kinase pathway in astrocytes. Blood. , (2012).
  29. Deli, M. A., Abraham, C. S., Niwa, M., Falus, A. N,N-diethyl-2-[4-(phenylmethyl)phenoxy]ethanamine increases the permeability of primary mouse cerebral endothelial cell monolayers. Inflamm. Res. 52, 39-40 (2003).
  30. Su, E. J., et al. Activation of PDGF-CC by tissue plasminogen activator impairs blood-brain barrier integrity during ischemic stroke. Nat. Med. 14, 731-737 (2008).
  31. Yepes, M., et al. Tissue-type plasminogen activator induces opening of the blood-brain barrier via the LDL receptor-related protein. J. Clin. Invest. 112, 1533-1540 (2003).
  32. Abu Fanne, R., et al. Blood-brain barrier permeability and tPA-mediated neurotoxicity. Neuropharmacology. 58, 972-980 (1016).
  33. Wang, X., et al. Lipoprotein receptor-mediated induction of matrix metalloproteinase by tissue plasminogen activator. Nat. Med. 9, 1313-1317 (2003).
  34. Wang, X., et al. Mechanisms of hemorrhagic transformation after tissue plasminogen activator reperfusion therapy for ischemic stroke. Stroke. 35, 2726-2730 (2004).
  35. Donnan, G. A., et al. How to make better use of thrombolytic therapy in acute ischemic stroke. Nat. Rev. Neurol. 7, 400-409 (2011).
  36. Acheampong, P., Ford, G. A. Pharmacokinetics of alteplase in the treatment of ischaemic stroke. Expert Opin. Drug Metab. Toxicol. 8, 271-281 (2012).
  37. Derex, L., Nighoghossian, N. Intracerebral haemorrhage after thrombolysis for acute ischaemic stroke: an update. J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry. 79, 1093-1099 (2008).
  38. Garber, K. Stroke treatment–light at the end of the tunnel. Nat. Biotechnol. 25, 838-840 (2007).
  39. Liebeskind, D. S. Reversing Stroke in the 2010s. Stroke. 40, 3156-3158 (2009).
  40. Weksler, B. B., et al. Blood-brain barrier-specific properties of a human adult brain endothelial cell line. FASEB J. 19, 1872-1874 (2005).
  41. Song, L., Pachter, J. S. Culture of murine brain microvascular endothelial cells that maintain expression and cytoskeletal association of tight junction-associated proteins. In Vitro Cell. Dev. Biol. Anim. 39 (2003), 313-320 (2003).
  42. Steiner, O., Coisne, C., Engelhardt, B., Lyck, R. Comparison of immortalized bEnd5 and primary mouse brain microvascular endothelial cells as in vitro blood-brain barrier models for the study of T cell extravasation. J. Cereb. Blood Flow Metab. 31, 315-327 (2011).
check_url/50934?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Niego, B., Medcalf, R. L. Improved Method for the Preparation of a Human Cell-based, Contact Model of the Blood-Brain Barrier. J. Vis. Exp. (81), e50934, doi:10.3791/50934 (2013).

View Video