Summary

Forbedret fremgangsmåte for fremstilling av en human cellebasert kontakt Model of the Blood-Brain Barrier

Published: November 12, 2013
doi:

Summary

Etablering av humane modeller av blod-hjerne-barrieren (BBB) ​​kan dra nytte forskning på hjerne tilstander forbundet med BBB svikt. Vi beskriver her en forbedret teknikk for fremstilling av en kontakt BBB-modell, som tillater coculturing av humane astrocytter og hjerne endotelceller på hver sin side av en porøs membran.

Abstract

Den blod-hjerne-barrieren (BBB) ​​omfatter ugjennomtrengelige, men kan tilpasses hjernekapillærer som ligger tett styrer hjernen miljø. Unnlatelse av BBB har vært antydet i etiologien av mange hjernesykdommer, skaper et behov for utvikling av human in vitro BBB modeller for å bistå i klinisk relevant forskning. Blant de tallrike BBB modellene hittil er beskrevet, et statisk (uten strømning), kontakt BBB-modellen, hvor astrocytter og hjerne endotel celler (BECS) er cocultured på hver sin side av en porøs membran, dukket opp som en forenklet, men likevel autentisk system for å simulere BBB med høy gjennomstrømming screening kapasitet. Likevel generering av en slik modell presenterer noen tekniske utfordringer. Her beskriver vi en protokoll for utarbeidelse av en kontakt menneskelig BBB-modellen benytter en ny kombinasjon av primære humane Becs og udødelig menneskelige astrocytter. Vi har nærmere bestemt detalj en nyskapende fremgangsmåte for celle-seeding på omvendte innsatser så vel som spesifiserer innrykkett fargeteknikker og eksemplifisere hvordan vi bruker vår modell for BBB-relatert forskning.

Introduction

BBB er en spesialisert grensesnitt mellom det perifere blodsirkulasjonen og det sentrale nervesystemet, det avgjørende er ansvarlig for vedlikehold av hjernen hemostase. Det består av forskjellige hjerne mikrovaskulære endotelceller (BECS) som er funksjonsmessig påvirket av noen celle-og acellulære komponenter (nedenfor) for å danne en tett og dynamisk gateway inn i hjernen. Under fysiologiske betingelser BBB begrenser passasjen av blodceller, plasma-komponenter og skadelige stoffer, som alle potensielt nevrotoksisk, inn i hjernen. Parallelt BBB selektivt utveksler viktige ioner og næringsstoffer (glukose og aminosyrer med) og metabolske avfallsprodukter mellom hjernen og blodsirkulasjonen til nettopp å opprettholde hjernen miljøet 1,2. I de senere år er det blitt klart at svikt av BBB forekommer i en rekke kroniske hjernesykdommer, for eksempel neurodegenerative og betennelsessykdommer (for eksempel Alzheimers sykdom og multiple sklerose, henholdsvis) 3, så vel som i akutte tilstander som hjerneinfarkt 4..

De unike egenskaper av BBB hjerne endotel celler (BECS) er i stor grad forårsaket av deres cerebral miljø 5, og i særdeleshet ved astrocytter 6,7. Det er en økende forståelse for at andre celletyper, for eksempel pericytes 8, nevroner og microglia 1,3, samt basalmembranen 9, støtte Becs og danner sammen en funksjonell enhet kalt "neurovascular enhet" (NVU) som samtidig par nevronale metabolske krav til sine forsyne kapillærer 10.

Involvering av BBB i patologiske situasjoner ligger under mange forsøk på å utvikle in vitro BBB modeller for å bistå i BBB-relatert forskning 11,12. Disse modellene tar sikte på å etterligne så nært som mulig in vivo BBB egenskaper i henhold til NVU prinsippet. In vitro </em> BBB modeller generelt stole på en monolayer av stram-krysset dannende becs (hovedsakelig fra storfe 13, menneskelig 14, rotte 15, mus 16, og svin 17,18 opprinnelse), dyrket på en porøs membran sammen med støtte astrocytter (utstrakt anmeldt av Deli et al. 2005 11).

Astrocytter kan dyrkes i ikke-kontaktforholdene på undersiden av et vevskultur godt separert fra BECS (dyrket på den øvre overflaten av membranen) av kulturmediet ennå kommuniserer med BECS via løselige faktorer 16. I mer avanserte modeller som bedre ligner den anatomiske strukturen av BBB in vivo, er astrocytter opprettholdes i kontaktforhold og dyrket direkte på den motsatte side av membranen i nær tilknytning til BECS 13,15,17 (fig. 1). Denne konfigurasjonen gjør det mulig fysisk kontakt mellom Becs og astrocytter, etablert når astrocytter prosjektderes prosesser gjennom den porøse membran. Viktigere, for en ekte kontakt for å oppstå porene bør være ≥ 1/iM i diameter, siden astrocytic slutt fot ikke kan passere gjennom mindre pore størrelser (dvs. 0,4 mikrometer) 14,15. Spesielt, er kontakt BBB-systemer demonstrert i noen studier å være bedre enn sine ikke-kontakt kolleger om deres trans-endothelial elektrisk motstand (Teer) og endothelial permeabilitet verdier av ulike sporstoffer 13,17,18. En ytterligere dimensjon av mediastrømmen nylig ble tilsatt i en rekke in vitro-modeller BBB å anvende skjærkrefter til endotelet for nærmere simulering av hjernens blodkar 12,19.

En teknisk hindring for å overvinne ved generering av en kontakt BBB modellen er såing av astrocytter mot tyngdekraften på abluminal overflaten av den porøse membran. Tidligere protokoller 13,20, hvor astrocytter ble bare seeded i en dråpe media på toppen av en iomregnet innsats, tillates kun kort seeding ganger (dvs. 10 min 13 eller 2 hr 20) som ble funnet i våre hender for å være utilstrekkelig for riktig celle vedlegg. Ved hjelp av denne grunnleggende metode, en lengre astrocyte feste periode krever konstant overvåking av innsatsene ved hyppig åpning av inkubator (forårsaker variasjoner i temperatur, pH og fuktighet), og er også utsatt for ujevn celle seeding grunn av lekkasje av mediet gjennom porene, særlig hvis porer større enn 1 pm blir anvendt.

Her beskriver vi en generell protokoll for utarbeidelse av en kontakt BBB modell. Vår prosedyre inkluderer en alternativ metode for celle-seeding på omvendte inserts, som omhandler de nevnte begrensninger. Fremgangsmåten gjør det mulig uforstyrret tilslutning av astrocytter på abluminal membranoverflaten, i en inkubator ekvilibrert, over en lengre tidsperiode. Som et resultat, er en enhetlig såing av astrocytter oppnådd som øker barrierekvalitetenog minimerer basal permeabilitet variasjoner mellom innsatser.

Etter hvert som bruken av humane celler er viktig for human-relevant forskning 21, vi i tillegg viser i denne artikkelen den spesifikke anvendelse av en ny kombinasjon av primære humane BECS og udødeliggjort human astrocytter for opprettelse av en kontakt human BBB-modell med en høy gjennomløpsscreening kapasitet . Siden visning av celler på porøse membraner kan være vanskelige, har vi også detaljfargeteknikker som kan bistå i fastsettelse av samløpet og cellemorfologi på de porøse membraner. Endelig eksemplifisere vi hvordan vår human BBB-modellen kan bli anvendt for å undersøke effekten av tissue-type plasminogen-aktivator (t-PA) – en blodpropp spreng enzym som tjener som eneste behandling for akutt iskemisk hjerneslag – on BBB.

Protocol

En. Cell Culture (3-7 dager før BBB Assembly) 1.1. Primære Human Brain mikrovaskulær endotelceller (Becs) Becs ble kommersielt oppnådd. Cellene ble fremstilt ved dispase dissosiasjon av normal human hjerne cortex vev og gitt frosset på passasjen 3 (<12 populasjons fordoblinger). Grunnen: Coat vev-kultur fartøy med "Attachment Factor" i henhold til produsentens instruksjoner. Cell vedlikehold: Opprett BECS i s…

Representative Results

For å etablere et menneske, kontakt BBB modell vi måtte dyrke SVGs og BECS på porøse membraner med en 3 um pore-størrelse, er vist for å tillate passasje av astrocyte endeføtter for kontakt med endotelceller 14,15,27,28. En skjematisk fremstilling av den komplette kontakt modellen er illustrert i figur 1 (venstre figur). De viktigste tekniske utfordring med en kontakt-systemet er behovet for å frø astrocytter mot tyngdekraften på abluminal overflaten av membranen. Vi har lykkes i de…

Discussion

Medisinsk forskning på hjernesykdommer lider mye translasjonell vanskelighetsgrad. I området av akutt iskemisk hjerneslag, for eksempel, mange legemidler som viste store løftet i dyremodeller mislyktes på klinikken 38,39. Årsakene til disse skuffende resultatene er variert og inkluderer utroskap av de prekliniske testsystemer for det menneskelige slag scenario og overvurdering av resultatene fra dyrestudier 21. En strategi for å bedre prediktiv verdi på prekliniske funn til den kliniske fase…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien ble finansiert av bevilgninger til RLM fra National Health and Medical Research Council of Australia (stipend # 606658).

Materials

Attachment Factor Cell-Systems Corporation 4Z0-210
Brain microvascular endothelial cells (BECs), primary, human Cell-Systems Corporation ACBRI 376
Complete medium Cell-Systems Corporation 4Z0-500 Supplemented with CSC JetFuel
Complete serum-free medium Cell-Systems Corporation SF-4Z0-500 Supplemented with CSC RocketFue
DMEM/F-12 with 15 mM HEPES Life Technologies 11330-032
Endothelial cells growth supplement (from bovine origin) Sigma-Aldrich E2759-15MG
External silicone tubing Watson-Marlow 913.A080.016 Pumpsil brand, 8 mm internal diameter, 1.6 mm wall
Foetal calf serum Lonza 14-501F
Gentamycin sulfate Life Technologies 15750-060
Heparin sodium Pfizer 1,000 U/ml
Hexamethyldisilazane (HMDS) Sigma-Aldrich H4875
Human brain microvascular endothelial cells Cell-Systems Corporation ACBRI 376
Internal silicone tubing Watson-Marlow 913.A032.016 Pumpsil brand, 3.2 mm internal diameter, 1.6 mm wall
L-Glutamine Life Technologies 25030
Mayer’s hematoxylin solution Amber Scientific MH
Minimum essential medium with Earle’s balanced salt solution HyClone Laboratories SH30244.01
Penicillin/Streptomycin Life Technologies 15140
Rat collagen I Trevigen 3440-100-01 Cultrex brand
Tissue culture inserts Corning Life Sciences 3472 Transwell brand, 6.5 mm in diameter, with polyester porous membrane, 3 µm pore-size

References

  1. Hawkins, B. T., Davis, T. P. The blood-brain barrier/neurovascular unit in health and disease. Pharmacol. Rev. 57, 173-185 (2005).
  2. Abbott, N. J., Patabendige, A. A., Dolman, D. E., Yusof, S. R., Begley, D. J. Structure and function of the blood-brain barrier. Neurobiol. Dis. 37, 13-25 (2010).
  3. Zlokovic, B. V. The blood-brain barrier in health and chronic neurodegenerative disorders. Neuron. 57, 178-201 (2008).
  4. Vivien, D., Gauberti, M., Montagne, A., Defer, G., Touze, E. Impact of tissue plasminogen activator on the neurovascular unit: from clinical data to experimental evidence. J. Cereb. Blood Flow Metab. 31, 2119-2134 (2011).
  5. Stewart, P. A., Wiley, M. J. Developing nervous tissue induces formation of blood-brain barrier characteristics in invading endothelial cells: a study using quail–chick transplantation chimeras. Dev. Biol. 84, 183-192 (1981).
  6. Janzer, R. C., Raff, M. C. Astrocytes induce blood-brain barrier properties in endothelial cells. Nature. 325, 253-257 (1987).
  7. Abbott, N. J., Ronnback, L., Hansson, E. Astrocyte-endothelial interactions at the blood-brain barrier. Nat. Rev. Neurosci. 7, 41-53 (2006).
  8. Dalkara, T., Gursoy-Ozdemir, Y., Yemisci, M. Brain microvascular pericytes in health and disease. Acta Neuropathol. 122, 1-9 (2011).
  9. Engelhardt, B., Sorokin, L. The blood-brain and the blood-cerebrospinal fluid barriers: function and dysfunction. Semin. Immunopathol. 31, 497-511 (2009).
  10. Girouard, H., Iadecola, C. Neurovascular coupling in the normal brain and in hypertension, stroke, and Alzheimer disease. J. Appl. Physiol. 100, 328-335 (2006).
  11. Deli, M. A., Abraham, C. S., Kataoka, Y., Niwa, M. Permeability studies on in vitro blood-brain barrier models: physiology, pathology, and pharmacology. Cell. Mol. Neurobiol. 25, 59-127 (2005).
  12. Booth, R., Kim, H. Characterization of a microfluidic in vitro model of the blood-brain barrier (muBBB). Lab Chip. 12, 1784-1792 (2012).
  13. Gaillard, P. J., et al. Establishment and functional characterization of an in vitro model of the blood-brain barrier, comprising a co-culture of brain capillary endothelial cells and astrocytes. Eur. Pharm. Sci. 12, 215-222 (2001).
  14. Hurwitz, A. A., Berman, J. W., Rashbaum, W. K., Lyman, W. D. Human fetal astrocytes induce the expression of blood-brain barrier specific proteins by autologous endothelial cells. Brain Res. 625, 238-243 (1993).
  15. Demeuse, P., et al. Compartmentalized coculture of rat brain endothelial cells and astrocytes: a syngenic model to study the blood-brain barrier. J. Neurosci. Methods. 121, 21-31 (2002).
  16. Coisne, C., et al. Mouse syngenic in vitro blood-brain barrier model: a new tool to examine inflammatory events in cerebral endothelium. Lab. Invest. 85, 734-746 (2005).
  17. Cohen-Kashi Malina, K., Cooper, I., Teichberg, V. I. Closing the gap between the in vivo and in vitro blood-brain barrier tightness. Brain Res. 1284, 12-21 (2009).
  18. Kroll, S., et al. Control of the blood-brain barrier by glucocorticoids and the cells of the neurovascular unit. Ann. N. Y. Acad. Sci. 1165, 228-239 (2009).
  19. Cucullo, L., et al. Immortalized human brain endothelial cells and flow-based vascular modeling: a marriage of convenience for rational neurovascular studies. J. Cereb. Blood Flow Metab. 28, 312-328 (2008).
  20. Li, G., et al. Permeability of endothelial and astrocyte cocultures: in vitro blood-brain barrier models for drug delivery studies. Ann. Biomed. Eng. 38, 2499-2511 (2010).
  21. Antonic, A., Sena, E., Donnan, G., Howells, D. Human In Vitro Models of Ischaemic Stroke: a Test Bed for Translation. Transl. Stroke Res. 3, 306-309 (2012).
  22. Major, E. O., et al. Establishment of a line of human fetal glial cells that supports JC virus multiplication. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 82, 1257-1261 (1985).
  23. Eugenin, E. A., Berman, J. W. Chemokine-dependent mechanisms of leukocyte trafficking across a model of the blood-brain barrier. Methods. 29, 351-361 (2003).
  24. Dehouck, M. P., et al. Drug transfer across the blood-brain barrier: correlation between in vitro and in vivo models. J. Neurochem. 58, 1790-1797 (1992).
  25. Perriere, N., et al. Puromycin-based purification of rat brain capillary endothelial cell cultures. Effect on the expression of blood-brain barrier-specific properties. J. Neurochem. 93, 279-289 (2005).
  26. Niego, B., Samson, A. L., Petersen, K. U., Medcalf, R. L. Thrombin-induced activation of astrocytes in mixed rat hippocampal cultures is inhibited by soluble thrombomodulin. Brain Res. 1381, 38-51 (2011).
  27. Ma, S. H., Lepak, L. A., Hussain, R. J., Shain, W., Shuler, M. L. An endothelial and astrocyte co-culture model of the blood-brain barrier utilizing an ultra-thin, nanofabricated silicon nitride membrane. Lab Chip. 5, 74-85 (2005).
  28. Niego, B., Freeman, R., Puschmann, T. B., Turnley, A. M., Medcalf, R. L. t-PA-specific modulation of a human BBB model involves plasmin-mediated activation of the Rho-kinase pathway in astrocytes. Blood. , (2012).
  29. Deli, M. A., Abraham, C. S., Niwa, M., Falus, A. N,N-diethyl-2-[4-(phenylmethyl)phenoxy]ethanamine increases the permeability of primary mouse cerebral endothelial cell monolayers. Inflamm. Res. 52, 39-40 (2003).
  30. Su, E. J., et al. Activation of PDGF-CC by tissue plasminogen activator impairs blood-brain barrier integrity during ischemic stroke. Nat. Med. 14, 731-737 (2008).
  31. Yepes, M., et al. Tissue-type plasminogen activator induces opening of the blood-brain barrier via the LDL receptor-related protein. J. Clin. Invest. 112, 1533-1540 (2003).
  32. Abu Fanne, R., et al. Blood-brain barrier permeability and tPA-mediated neurotoxicity. Neuropharmacology. 58, 972-980 (1016).
  33. Wang, X., et al. Lipoprotein receptor-mediated induction of matrix metalloproteinase by tissue plasminogen activator. Nat. Med. 9, 1313-1317 (2003).
  34. Wang, X., et al. Mechanisms of hemorrhagic transformation after tissue plasminogen activator reperfusion therapy for ischemic stroke. Stroke. 35, 2726-2730 (2004).
  35. Donnan, G. A., et al. How to make better use of thrombolytic therapy in acute ischemic stroke. Nat. Rev. Neurol. 7, 400-409 (2011).
  36. Acheampong, P., Ford, G. A. Pharmacokinetics of alteplase in the treatment of ischaemic stroke. Expert Opin. Drug Metab. Toxicol. 8, 271-281 (2012).
  37. Derex, L., Nighoghossian, N. Intracerebral haemorrhage after thrombolysis for acute ischaemic stroke: an update. J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry. 79, 1093-1099 (2008).
  38. Garber, K. Stroke treatment–light at the end of the tunnel. Nat. Biotechnol. 25, 838-840 (2007).
  39. Liebeskind, D. S. Reversing Stroke in the 2010s. Stroke. 40, 3156-3158 (2009).
  40. Weksler, B. B., et al. Blood-brain barrier-specific properties of a human adult brain endothelial cell line. FASEB J. 19, 1872-1874 (2005).
  41. Song, L., Pachter, J. S. Culture of murine brain microvascular endothelial cells that maintain expression and cytoskeletal association of tight junction-associated proteins. In Vitro Cell. Dev. Biol. Anim. 39 (2003), 313-320 (2003).
  42. Steiner, O., Coisne, C., Engelhardt, B., Lyck, R. Comparison of immortalized bEnd5 and primary mouse brain microvascular endothelial cells as in vitro blood-brain barrier models for the study of T cell extravasation. J. Cereb. Blood Flow Metab. 31, 315-327 (2011).
check_url/50934?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Niego, B., Medcalf, R. L. Improved Method for the Preparation of a Human Cell-based, Contact Model of the Blood-Brain Barrier. J. Vis. Exp. (81), e50934, doi:10.3791/50934 (2013).

View Video