Summary

Förbättrad metod för framställning av en human cellbaserad, Kontakta modell av blod-hjärnbarriären

Published: November 12, 2013
doi:

Summary

Inrättande av mänskliga modeller av blod-hjärnbarriären (BBB) ​​kan gynna forskning om hjärnans villkor förknippade med BBB misslyckande. Vi beskriver här en förbättrad teknik för framställning av ett kontakt BBB-modell, som tillåter samodling av humana astrocyter och hjärna endotelceller på motsatta sidor av ett poröst membran.

Abstract

Blod-hjärnbarriären (BBB) ​​innefattar ogenomträngliga men anpassnings hjärnkapillärerna som är tätt styr hjärnans miljö. Fel på BBB har antytts i etiologin för många hjärn sjukdomar, skapar ett behov av utveckling av human in vitro BBB: modeller för att hjälpa till kliniskt relevant forskning. Bland de talrika BBB: modeller som hittills beskrivits, en statisk (utan flöde), kontaktar BBB-modellen, där astrocyter och hjärna endotelceller (BEC) är samodlades på motsatta sidor av ett poröst membran, framträdde som ett förenklat ännu giltiga system för att simulera BBB med hög throughput screening kapacitet. Trots den generation av modellen innebär några tekniska utmaningar. Här beskriver vi ett protokoll för framställningen av en kontakt humant BBB-modell med användning av en ny kombination av primära humana BEC och immortaliserade humana astrocyter. Specifikt vi detalj en innovativ metod för cellsådd på inverterade insatser samt ange INSERt färgningsteknik och exemplifiera hur vi använder vår modell för BBB-relaterad forskning.

Introduction

Den BBB är en specialiserad gränssnitt mellan den perifera blodcirkulationen och det centrala nervsystemet, ytterst ansvarig för underhåll av hjärn hemostas. Den innefattar distinkt hjärn mikrovaskulära endotelceller (BEC), vilka funktionellt är påverkade av några cellulära och acellulära komponenter (nedan) för att bilda en tät och dynamisk gateway in i hjärnan. Under fysiologiska förhållanden BBB begränsar passagen av blodceller, plasmakomponenter och skadliga ämnen, som alla potentiellt neurotoxiska, in i hjärnan. Samtidigt byter den BBB selektivt viktiga joner och näringsämnen (glukos och aminosyror) och metaboliska avfallsprodukter mellan hjärnan och cirkulationen att exakt hålla hjärnan miljön 1,2. På senare år har det blivit uppenbart att fel på BBB förekommer i en rad olika kroniska hjärn sjukdomar såsom neurodegenerativa eller inflammationsrelaterade sjukdomar (t.ex. Alzheimers sjukdom och multiple skleros, respektive) 3, samt vid akuta tillstånd som ischemisk stroke 4.

De unika BBB: egenskaperna för hjärnans endotelceller (BEC) till stor del framkallas av sin hjärn miljö 5, och i synnerhet av astrocyter 6,7. Det finns en växande insikt om att andra celltyper, såsom pericyter 8, neuroner och mikroglia 1,3 samt basalmembranet 9, stötta BEC och tillsammans bildar en funktionell enhet benämnd "neurovaskulära apparat" (NVU) som samtidigt par neuronala metaboliska krav till sina levererar kapillärer 10.

Medverkan av BBB i patologiska situationer ligger bakom många försök att utveckla in vitro BBB: modeller för att hjälpa till BBB-relaterad forskning 11,12. Dessa modeller syftar till att härma så nära som möjligt in vivo BBB: egenskaper enligt NVU princip. In vitro </em> BBB: modeller bygger i allmänhet på ett monolager av tät-junction bildande BEC (främst från nötkreatur 13, människa 14, råtta 15, mus 16, och svin 17,18 ursprung), odlade på ett poröst membran tillsammans med stödjande astrocyter (utför granskats av Deli et al. 2005 11).

Astrocyter kan odlas i icke-kontaktförhållanden på botten av en vävnadsodlingsbrunn, skild från BEC (som odlats på den övre ytan av membranet) av odlingsmediet ännu kommunicerar med BEC via lösliga faktorer 16. I mer avancerade modeller som bättre liknar den anatomiska strukturen av BBB in vivo, är astrocyter bibehålls i kontaktbetingelser och odlades direkt på den motsatta sidan av membranet i nära anslutning till BEC 13,15,17 (figur 1). Denna konfiguration gör att fysisk kontakt mellan BEC och astrocyter, upprättas när astrocyter projektsina processer genom det porösa membranet. Viktigt är att för en sann kontakt inträffa porerna bör ≥ 1 um i diameter, eftersom astrocytiska slut fötter inte kan passera genom mindre porstorlekar (dvs. 0,4 ^ m) 14,15. Noterbart är kontakt BBB: system visats i några studier att vara överlägsna sina beröringsfria motsvarigheter om deras trans endothelial elektriskt motstånd (TEER) och endothelial permeabilitetsvärden av olika spårämnen 13,17,18. En ytterligare dimension av medieflödet har nyligen lagts i ett antal in vitro-BBB: modeller för att tillämpa skjuvkrafter till endotelet för närmare simulering av hjärnans vaskulatur 12,19.

Ett tekniskt hinder att övervinna när alstring av en kontakt BBB modell är odling av astrocyter mot tyngdkraften på den abluminala ytan av det porösa membranet. Tidigare protokoll 13,20, där astrocyter helt enkelt seedade i en droppe media ovanpå en iomvandlas insats, tillåts endast korta sådd tider (dvs. 10 min 13 eller 2 tim 20) som fanns i våra händer för att vara otillräckligt för korrekt cellbindning. Med hjälp av denna grundläggande metod, kräver en längre astrocyternas fästperiod konstant övervakning av insatserna genom frekvent öppning av inkubatorn (orsakar variationer i temperatur, pH och fuktighet) och är också benägna att ojämn cell sådd på grund av läckage av media genom porerna, särskilt om porer större än 1 mikrometer används.

Här beskriver vi ett allmänt protokoll för framställning av ett kontakt BBB modell. Vår procedur innehåller en alternativ metod för cellsådd på inverterade insatser, som rör de ovan nämnda begränsningar. Förfarandet medger ostörd vidhäftning av astrocyter på abluminala membranytan, i en jämviktad inkubator under en utsträckt tidsperiod. Som ett resultat, är en likformig ympning av astrocyter kommas vilket ökar barriärkvalitetoch minimerar basala permeabilitet variationer mellan skären.

Eftersom användningen av mänskliga celler är viktigt för mänsklig-relevant forskning 21, vi dessutom visa i denna artikel den specifika användningen av en ny kombination av primära humana BEC och förevigat mänskliga astrocyter för inrättandet av en kontakt mänsklig BBB-modell med en hög throughput screening kapacitet . Eftersom visning av celler på porösa membran kan vara svårt, vi också detalj färgningsteknik som kan bistå i fastställandet av sammanflöde och cellmorfologi på porösa membran. Slutligen, vi exemplifiera hur vår mänskliga BBB-modellen kan användas för att undersöka effekten av vävnad plasminogenaktivator (t-PA) – en koagulering busting enzym som fungerar som ett enda behandlingsalternativ för akut ischemisk stroke – på BBB.

Protocol

1. Cell Culture (3-7 dagar före till BBB Assembly) 1,1. Primära Human Brain mikrovaskulära endotelceller (BEC) BEC var kommersiellt erhållas. Cellerna producerade av dispas dissociation av normala mänskliga hjärnan cortex vävnad och förutsatt frysta vid passage 3 (<12 populationsfördubblingar). Substratum: Coat vävnadsodlingskärl med "Attachment Factor" enligt tillverkarens instruktioner. Cell underhåll:</em…

Representative Results

För att skapa en människa, kontakta BBB-modell som vi var tvungna att odla SVGs och BEC på porösa membran med en 3 ìm porstorlek, visat att medge passage av astrocyternas slut fötter för kontakt med endotelceller 14,15,27,28. En schematisk representation av den kompletta kontakt modellen illustreras i Figur 1 (vänster bild). Den största tekniska utmaningen presenteras av ett kontaktsystem är behovet av att seeda astrocyter mot tyngdkraften på abluminala membranets yta. Vi har lycka…

Discussion

Medicinsk forskning om hjärnans sjukdomar lider mycket translationell svårigheter. Inom området akut ischemisk stroke, till exempel många läkemedel som visade mycket lovande i djurmodeller misslyckades på kliniken 38,39. Orsakerna till dessa nedslående resultat är varierande och innefattar otrohet av de prekliniska testsystem till den mänskliga stroke scenariot och överskattning av resultat från djurstudier 21. En strategi för att förbättra det prediktiva värdet av prekliniska result…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna studie har finansierats av bidrag som beviljats ​​till RLM från det nationella hälso-och medicinska forskningsrådet i Australien (bidrag # 606.658).

Materials

Attachment Factor Cell-Systems Corporation 4Z0-210
Brain microvascular endothelial cells (BECs), primary, human Cell-Systems Corporation ACBRI 376
Complete medium Cell-Systems Corporation 4Z0-500 Supplemented with CSC JetFuel
Complete serum-free medium Cell-Systems Corporation SF-4Z0-500 Supplemented with CSC RocketFue
DMEM/F-12 with 15 mM HEPES Life Technologies 11330-032
Endothelial cells growth supplement (from bovine origin) Sigma-Aldrich E2759-15MG
External silicone tubing Watson-Marlow 913.A080.016 Pumpsil brand, 8 mm internal diameter, 1.6 mm wall
Foetal calf serum Lonza 14-501F
Gentamycin sulfate Life Technologies 15750-060
Heparin sodium Pfizer 1,000 U/ml
Hexamethyldisilazane (HMDS) Sigma-Aldrich H4875
Human brain microvascular endothelial cells Cell-Systems Corporation ACBRI 376
Internal silicone tubing Watson-Marlow 913.A032.016 Pumpsil brand, 3.2 mm internal diameter, 1.6 mm wall
L-Glutamine Life Technologies 25030
Mayer’s hematoxylin solution Amber Scientific MH
Minimum essential medium with Earle’s balanced salt solution HyClone Laboratories SH30244.01
Penicillin/Streptomycin Life Technologies 15140
Rat collagen I Trevigen 3440-100-01 Cultrex brand
Tissue culture inserts Corning Life Sciences 3472 Transwell brand, 6.5 mm in diameter, with polyester porous membrane, 3 µm pore-size

References

  1. Hawkins, B. T., Davis, T. P. The blood-brain barrier/neurovascular unit in health and disease. Pharmacol. Rev. 57, 173-185 (2005).
  2. Abbott, N. J., Patabendige, A. A., Dolman, D. E., Yusof, S. R., Begley, D. J. Structure and function of the blood-brain barrier. Neurobiol. Dis. 37, 13-25 (2010).
  3. Zlokovic, B. V. The blood-brain barrier in health and chronic neurodegenerative disorders. Neuron. 57, 178-201 (2008).
  4. Vivien, D., Gauberti, M., Montagne, A., Defer, G., Touze, E. Impact of tissue plasminogen activator on the neurovascular unit: from clinical data to experimental evidence. J. Cereb. Blood Flow Metab. 31, 2119-2134 (2011).
  5. Stewart, P. A., Wiley, M. J. Developing nervous tissue induces formation of blood-brain barrier characteristics in invading endothelial cells: a study using quail–chick transplantation chimeras. Dev. Biol. 84, 183-192 (1981).
  6. Janzer, R. C., Raff, M. C. Astrocytes induce blood-brain barrier properties in endothelial cells. Nature. 325, 253-257 (1987).
  7. Abbott, N. J., Ronnback, L., Hansson, E. Astrocyte-endothelial interactions at the blood-brain barrier. Nat. Rev. Neurosci. 7, 41-53 (2006).
  8. Dalkara, T., Gursoy-Ozdemir, Y., Yemisci, M. Brain microvascular pericytes in health and disease. Acta Neuropathol. 122, 1-9 (2011).
  9. Engelhardt, B., Sorokin, L. The blood-brain and the blood-cerebrospinal fluid barriers: function and dysfunction. Semin. Immunopathol. 31, 497-511 (2009).
  10. Girouard, H., Iadecola, C. Neurovascular coupling in the normal brain and in hypertension, stroke, and Alzheimer disease. J. Appl. Physiol. 100, 328-335 (2006).
  11. Deli, M. A., Abraham, C. S., Kataoka, Y., Niwa, M. Permeability studies on in vitro blood-brain barrier models: physiology, pathology, and pharmacology. Cell. Mol. Neurobiol. 25, 59-127 (2005).
  12. Booth, R., Kim, H. Characterization of a microfluidic in vitro model of the blood-brain barrier (muBBB). Lab Chip. 12, 1784-1792 (2012).
  13. Gaillard, P. J., et al. Establishment and functional characterization of an in vitro model of the blood-brain barrier, comprising a co-culture of brain capillary endothelial cells and astrocytes. Eur. Pharm. Sci. 12, 215-222 (2001).
  14. Hurwitz, A. A., Berman, J. W., Rashbaum, W. K., Lyman, W. D. Human fetal astrocytes induce the expression of blood-brain barrier specific proteins by autologous endothelial cells. Brain Res. 625, 238-243 (1993).
  15. Demeuse, P., et al. Compartmentalized coculture of rat brain endothelial cells and astrocytes: a syngenic model to study the blood-brain barrier. J. Neurosci. Methods. 121, 21-31 (2002).
  16. Coisne, C., et al. Mouse syngenic in vitro blood-brain barrier model: a new tool to examine inflammatory events in cerebral endothelium. Lab. Invest. 85, 734-746 (2005).
  17. Cohen-Kashi Malina, K., Cooper, I., Teichberg, V. I. Closing the gap between the in vivo and in vitro blood-brain barrier tightness. Brain Res. 1284, 12-21 (2009).
  18. Kroll, S., et al. Control of the blood-brain barrier by glucocorticoids and the cells of the neurovascular unit. Ann. N. Y. Acad. Sci. 1165, 228-239 (2009).
  19. Cucullo, L., et al. Immortalized human brain endothelial cells and flow-based vascular modeling: a marriage of convenience for rational neurovascular studies. J. Cereb. Blood Flow Metab. 28, 312-328 (2008).
  20. Li, G., et al. Permeability of endothelial and astrocyte cocultures: in vitro blood-brain barrier models for drug delivery studies. Ann. Biomed. Eng. 38, 2499-2511 (2010).
  21. Antonic, A., Sena, E., Donnan, G., Howells, D. Human In Vitro Models of Ischaemic Stroke: a Test Bed for Translation. Transl. Stroke Res. 3, 306-309 (2012).
  22. Major, E. O., et al. Establishment of a line of human fetal glial cells that supports JC virus multiplication. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 82, 1257-1261 (1985).
  23. Eugenin, E. A., Berman, J. W. Chemokine-dependent mechanisms of leukocyte trafficking across a model of the blood-brain barrier. Methods. 29, 351-361 (2003).
  24. Dehouck, M. P., et al. Drug transfer across the blood-brain barrier: correlation between in vitro and in vivo models. J. Neurochem. 58, 1790-1797 (1992).
  25. Perriere, N., et al. Puromycin-based purification of rat brain capillary endothelial cell cultures. Effect on the expression of blood-brain barrier-specific properties. J. Neurochem. 93, 279-289 (2005).
  26. Niego, B., Samson, A. L., Petersen, K. U., Medcalf, R. L. Thrombin-induced activation of astrocytes in mixed rat hippocampal cultures is inhibited by soluble thrombomodulin. Brain Res. 1381, 38-51 (2011).
  27. Ma, S. H., Lepak, L. A., Hussain, R. J., Shain, W., Shuler, M. L. An endothelial and astrocyte co-culture model of the blood-brain barrier utilizing an ultra-thin, nanofabricated silicon nitride membrane. Lab Chip. 5, 74-85 (2005).
  28. Niego, B., Freeman, R., Puschmann, T. B., Turnley, A. M., Medcalf, R. L. t-PA-specific modulation of a human BBB model involves plasmin-mediated activation of the Rho-kinase pathway in astrocytes. Blood. , (2012).
  29. Deli, M. A., Abraham, C. S., Niwa, M., Falus, A. N,N-diethyl-2-[4-(phenylmethyl)phenoxy]ethanamine increases the permeability of primary mouse cerebral endothelial cell monolayers. Inflamm. Res. 52, 39-40 (2003).
  30. Su, E. J., et al. Activation of PDGF-CC by tissue plasminogen activator impairs blood-brain barrier integrity during ischemic stroke. Nat. Med. 14, 731-737 (2008).
  31. Yepes, M., et al. Tissue-type plasminogen activator induces opening of the blood-brain barrier via the LDL receptor-related protein. J. Clin. Invest. 112, 1533-1540 (2003).
  32. Abu Fanne, R., et al. Blood-brain barrier permeability and tPA-mediated neurotoxicity. Neuropharmacology. 58, 972-980 (1016).
  33. Wang, X., et al. Lipoprotein receptor-mediated induction of matrix metalloproteinase by tissue plasminogen activator. Nat. Med. 9, 1313-1317 (2003).
  34. Wang, X., et al. Mechanisms of hemorrhagic transformation after tissue plasminogen activator reperfusion therapy for ischemic stroke. Stroke. 35, 2726-2730 (2004).
  35. Donnan, G. A., et al. How to make better use of thrombolytic therapy in acute ischemic stroke. Nat. Rev. Neurol. 7, 400-409 (2011).
  36. Acheampong, P., Ford, G. A. Pharmacokinetics of alteplase in the treatment of ischaemic stroke. Expert Opin. Drug Metab. Toxicol. 8, 271-281 (2012).
  37. Derex, L., Nighoghossian, N. Intracerebral haemorrhage after thrombolysis for acute ischaemic stroke: an update. J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry. 79, 1093-1099 (2008).
  38. Garber, K. Stroke treatment–light at the end of the tunnel. Nat. Biotechnol. 25, 838-840 (2007).
  39. Liebeskind, D. S. Reversing Stroke in the 2010s. Stroke. 40, 3156-3158 (2009).
  40. Weksler, B. B., et al. Blood-brain barrier-specific properties of a human adult brain endothelial cell line. FASEB J. 19, 1872-1874 (2005).
  41. Song, L., Pachter, J. S. Culture of murine brain microvascular endothelial cells that maintain expression and cytoskeletal association of tight junction-associated proteins. In Vitro Cell. Dev. Biol. Anim. 39 (2003), 313-320 (2003).
  42. Steiner, O., Coisne, C., Engelhardt, B., Lyck, R. Comparison of immortalized bEnd5 and primary mouse brain microvascular endothelial cells as in vitro blood-brain barrier models for the study of T cell extravasation. J. Cereb. Blood Flow Metab. 31, 315-327 (2011).
check_url/50934?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Niego, B., Medcalf, R. L. Improved Method for the Preparation of a Human Cell-based, Contact Model of the Blood-Brain Barrier. J. Vis. Exp. (81), e50934, doi:10.3791/50934 (2013).

View Video