Summary

Marquage rétrograde des cellules ganglionnaires de la rétine à l'âge adulte de poisson zèbre avec des colorants fluorescents

Published: May 03, 2014
doi:

Summary

We introduce an efficient method to retrograde label retinal ganglion cells (RGCs) in adult zebrafish.

Abstract

Cellules rétrogrades en matière d'étiquetage de la rétine ganglionnaires (CGR) peuvent isoler CGR soma de mourir sites, il est devenu l'étalon-or pour compter CGR dans la survie CGR et des expériences de régénération. De nombreuses études ont été réalisées chez les animaux mammifères à la recherche survie CGR après une blessure du nerf optique. Cependant, marquage rétrograde de RGC chez le poisson zèbre adulte n'a pas encore été signalé, bien que certaines méthodes peuvent compter le nombre de cellules en couches de cellules ganglionnaires de la rétine (RGCL). Compte tenu de la petite taille du crâne de poisson zèbre adulte et le risque élevé de décès après le forage sur le crâne, nous ouvrons le crâne à l'aide de gravure à l'acide et sceller le trou avec un lien de photopolymérisation, ce qui pourrait améliorer de manière significative le taux de survie. Après avoir absorbé les colorants pendant 5 jours, presque tous les CGR sont étiquetés. Comme cette méthode n'a pas besoin de sectionner le nerf optique, il est irremplaçable dans la recherche de la survie CGR après écrasement du nerf optique chez le poisson zèbre adulte. Ici, nous introduisonsce procédé étape par étape et de fournir des résultats représentatifs.

Introduction

Comme le poisson zèbre adulte a une forte capacité à régénérer les axones après une blessure du nerf optique 1, une méthode appropriée de compter l'ensemble CGR est essentiel d'évaluer la survie et la régénération CGR 2. Basé sur les méthodes de CGR en matière d'étiquetage rétrogrades dans les mammifères et les poissons rouges 3 – 5, nous avons construit la méthode d'étiqueter CGR du tectum chez le poisson zèbre adulte. Pour le poisson zèbre adulte, deux problèmes techniques critiques doivent être notées: le crâne de poisson zèbre adulte est très faible 6; ils vivent dans un environnement d'eau. Ici, nous traitons le crâne avec gravure qui minimise les risques associés au forage 5. Ensuite, nous fermons le trou avec liaison photopolymérisation qui améliore la survie des animaux après la chirurgie.

Auparavant, plusieurs autres techniques ont été adoptées à compter le nombre CGR de façon indirecte. Coloration HE dans les sections de la rétine étiquettes tous les types de cellules dans le RGCL 7. marquage de l'anticorps dans l'ensemble retina, comme îlot-1, peut aussi marquer les cellules amacrines 8. Bien que l'étiquette rétrograde du nerf optique peut souche étiqueter tous les CGR de la rétine, il ne peut être adopté dans le modèle de l'écrasement car elle cause un préjudice supplémentaire pour le nerf optique. Profitant de l'étiquette rétrograde du tectum, nous avons déniché survie CGR et la régénération du nerf optique dans l'écrasement. Les résultats montrent que presque tous les CGR survécu et plus de 90% des CGR régénérés au tectum lors de la première semaine dans le modèle d'écrasement 9.

Dans le but d'étiqueter correctement les CGR, Dil pâte a été choisi après comparaison avec plusieurs autres colorants commerciaux 10. Tout d'abord, il est spécialement conçu pour le marquage in vivo de tissus. D'autre part, il s'agit d'un colorant lipophile qui ne peut pas se diffuser dans l'eau. En outre, cette fluorescence peut persister pendant une longue période qui en fait un excellent candidat pour la recherche de la survie CGR.

Protocol

1. Construire l'Appareil de chirurgie REMARQUE: Pour assurer le poisson reste en vie pendant et après l'opération, goutte à goutte anesthésie solution éthyle méthanesulfonate 3 benzoate (MS-222, ou Tricaine) à une demi-concentration (0,015%) avec une vitesse de 1 goutte / sec par la bouche du poisson en utilisant un système de goutte à goutte homebuilt représenté sur la figure 1. Faire une boîte comme indiqué sur la figure 1A …

Representative Results

Comme les figures 4B-D spectacle, le nombre de cellules DiI + est de deux tiers des DAPI + cellules RGCL. Dans une rétine normale, une image de montage de l'ensemble de la rétine (figure 4E) montre que DiI + CGR sont répartis sur toute la rétine, mais dans une rétine régénérée (figure 4F), comme CGR dans la zone centrale n'ont pas régénéré à leur cible à la première semaine, ils ne pouvaient pas être étiquetés….

Discussion

Marquage rétrograde de RGC est important de rechercher la survie CGR chez les animaux mammifères, mais il n'a pas été utilisée dans le poisson-zèbre. Les méthodes alternatives, coloration HE 7 et la coloration des anticorps 8, ne sont pas des normes de référence pour compter le nombre CGR, et les lignées transgéniques avec tous les CGR marquées n'a pas encore été construit 12, 13. Dans cette vidéo, nous introduisons une méthode de rétrograder CGR d'étiquette…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This is supported by 973 MOST grant (Grant No. 2011CB504402, 2012CB947602), National Natural Science Foundation of China (Grant No. 91132724, U1332136) and the ‘Hundred Talents Project’ of Chinese Academy of Science. The protocol was approved by the Committee on the Ethics of Animal Experiments of the USTC (Permit Number: USTCACUC1103013).

Materials

MS222 Sigma Aldrich E10521 USA
DiI Invitrogen N22880 USA
lightcuring bond Heraeus Kulzer  Durafill bond Germany
Gluma Etch Heraeus Kulzer  Gluma Etch 35 Gel Germany
Blue LED Shenruo Medical Equipment Co. Power Blue Light Curing Unit China

References

  1. Wyatt, C., et al. Analysis of the astray/robo2 zebrafish mutant reveals that degenerating tracts do not provide strong guidance cues for regenerating optic axons. J Neurosci. 30, 13838-13849 (2010).
  2. Grieshaber, P., Lagreze, W. A., Noack, C., Boehringer, D., Biermann, J. Staining of fluorogold-prelabeled retinal ganglion cells with calcein-AM: A new method for assessing cell vitality. J Neurosci Methods. 192, 233-239 (2010).
  3. Schwalb, J. M., et al. Two factors secreted by the goldfish optic nerve induce retinal ganglion cells to regenerate axons in culture. J Neurosci. 15, 5514-5525 (1995).
  4. Watanabe, M., Inukai, N., Fukuda, Y. Survival of retinal ganglion cells after transection of the optic nerve in adult cats: a quantitative study within two weeks. Vis Neurosci. 18, 137-145 (2001).
  5. Chiu, K., Lau, W. M., Yeung, S. C., Chang, R. C., So, K. F. Retrograde labeling of retinal ganglion cells by application of fluoro-gold on the surface of superior colliculus. J Vis Exp. , (2008).
  6. Bakken, T. E., Stevens, C. F. Visual system scaling in teleost fish. J Comp Neurol. 520, 142-153 (2012).
  7. Zhou, L. X., Wang, Z. R. Changes in number and distribution of retinal ganglion cells after optic nerve crush in zebrafish. Shi Yan Sheng Wu Xue Bao. 35, 159-162 (2002).
  8. Sherpa, T., et al. Ganglion cell regeneration following whole-retina destruction in zebrafish. Dev Neurobiol. 68, 166-181 (2008).
  9. Zou, S., Tian, C., Ge, S., Hu, B. Neurogenesis of retinal ganglion cells is not essential to visual functional recovery after optic nerve injury in adult zebrafish. PLoS One. 8, (2013).
  10. Choi, D., Li, D., Raisman, G. Fluorescent retrograde neuronal tracers that label the rat facial nucleus: a comparison of Fast Blue, Fluoro-ruby, Fluoro-emerald, Fluoro-Gold and DiI. J Neurosci Methods. 117, 167-172 (2002).
  11. Zou, S. Q., et al. Using the optokinetic response to study visual function of zebrafish. J Vis Exp. , (2010).
  12. Tokuoka, H., Yoshida, T., Matsuda, N., Mishina, M. Regulation by glycogen synthase kinase-3beta of the arborization field and maturation of retinotectal projection in zebrafish. J Neurosci. 22, 10324-10332 (2002).
  13. Xiao, T., Roeser, T., Staub, W., Baier, H. A GFP-based genetic screen reveals mutations that disrupt the architecture of the zebrafish retinotectal projection. Development. 132, 2955-2967 (2005).
  14. Li, L., Dowling, J. E. Disruption of the olfactoretinal centrifugal pathway may relate to the visual system defect in night blindness b mutant zebrafish. Journal of Neuroscience. 20, 1883-1892 (2000).
  15. Kassing, V., Engelmann, J., Kurtz, R. Monitoring of Single-Cell Responses in the Optic Tectum of Adult Zebrafish with Dextran-Coupled Calcium Dyes Delivered via Local Electroporation. PLoS One. 8, (2013).
check_url/50987?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zou, S., Tian, C., Du, S., Hu, B. Retrograde Labeling of Retinal Ganglion Cells in Adult Zebrafish with Fluorescent Dyes. J. Vis. Exp. (87), e50987, doi:10.3791/50987 (2014).

View Video