Summary

इंजीनियरिंग आतंच आधारित ऊतक myofibroblasts और प्रतिबन्ध के अनुप्रयोग से constructs और सेल और कोलेजन (पुनर्निर्गम) संगठन प्रेरित करने के लिए तनाव

Published: October 28, 2013
doi:

Summary

इस मॉडल प्रणाली एक nondestructive ढंग से अंतर्जात कोलेजन (फिर) संगठन वास्तविक समय अध्ययन करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है कि एक myofibroblast आबादी आतंच जेल से शुरू होता है. मॉडल प्रणाली यह अलग सेल स्रोतों, मध्यम additives के साथ इस्तेमाल किया जा सकता है, के रूप में बहुत ट्यून करने योग्य है, और विशिष्ट जरूरतों को आसानी से अनुकूलित किया जा सकता है.

Abstract

कोलेजन सामग्री और श्लेषजनउत्पादी ऊतकों के विकास में संगठन स्थानीय ऊतक उपभेदों और ऊतकों की कमी से प्रभावित हो सकते हैं. टिश्यू इंजीनियरों पूर्वनिर्धारित कोलेजन आर्किटेक्चर के साथ ऊतकों बनाने के लिए इन सिद्धांतों का उपयोग करना है. अंतिम ऊतक वास्तुकला को नियंत्रित करने के कोलाजेन remodeling के सटीक अंतर्निहित प्रक्रियाओं की एक पूरी समझ है, तथापि, कमी है. विशेष रूप से, छोटे ऊतक यांत्रिक लोड की स्थिति में बदलाव के जवाब में कोलेजन फाइबर की (फिर) अभिविन्यास के बारे में जाना जाता है. हम आगे कोलेजन स्पष्ट करने के लिए, biaxially विवश myofibroblast वरीयता प्राप्त आतंच निर्माणों से मिलकर, इन विट्रो मॉडल प्रणाली में विकसित मैं के जवाब में (फिर) ओरिएंटेशन) अक्षीय स्थिर लोड की स्थिति और द्वितीय के लिए द्विअक्षीय लौटना) biaxially-विवश की चक्रीय अक्षीय लोडिंग Flexcell FX4000T लोडिंग उपकरण के उपयोग के साथ, दिशा लदान में बदलाव के पहले और बाद में निर्माणों. समय चूक confocal इमेजिंग vi करने के लिए प्रयोग किया जाता हैएक nondestructive ढंग से कोलेजन (फिर) ओरिएंटेशन sualize.

निर्माणों में सेल और कोलेजन संगठन वास्तविक समय में देखे जा सकते हैं, और एक आंतरिक संदर्भ प्रणाली हमें समय व्यतीत विश्लेषण के लिए कोशिकाओं और कोलेजन संरचनाओं स्थानांतरित करने के लिए अनुमति देता है. मॉडल प्रणाली के विभिन्न पहलुओं सेल स्रोत या स्वस्थ और रोगग्रस्त कोशिकाओं के उपयोग की तरह, समायोजित किया जा सकता है. Additives उदाहरण एम एम पी जोड़ने या इंटेग्रिन रोकने के लिए से, आगे तंत्र अंतर्निहित कोलेजन remodeling के स्पष्ट करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है. निर्माण की आकृति और आकार को आसानी से सेल और कोलेजन (फिर) संगठन का अध्ययन करने के लिए एक उच्च tunable मॉडल प्रणाली में जिसके परिणामस्वरूप, विशिष्ट आवश्यकताओं के लिए अनुकूलित किया जा सकता है.

Introduction

हृदय के ऊतकों एक प्रमुख लोड असर समारोह है. बाह्य मैट्रिक्स में कोलेजन फाइबर का विशेष सामग्री और संगठन में लोड असर गुणों में योगदान और समग्र ऊतक शक्ति 1 हावी है. ऊतक इंजीनियरिंग में निर्माण के यांत्रिक कंडीशनिंग प्रयोग किया जाता है – आम तौर पर (चक्रीय) दबाव regimens के मिलकर – ऊतक संगठन और यांत्रिक गुणों 2,3 बढ़ाने के लिए. पूर्वनिर्धारित कोलेजन वास्तुकला के साथ ऊतकों बनाने के लिए जटिल ऊतक geometries में तनाव प्रेरित कोलेजन संगठन की पूरी समझ अभी तक हासिल नहीं किया गया है. यह विकासशील ऊतकों में कोलेजन remodeling के अपने सीमित ज्ञान की वजह से है. मौजूदा मॉडल मुख्य रूप से स्थिर तनाव 4-6 के उपयोग के साथ कोलेजन remodeling के अंतिम शुद्ध परिणाम के बारे में जानकारी दे. यहाँ हम प्रभाव में, 3 डी में, एक वास्तविक समय फैशन में कोलेजन (फिर) संगठन के अध्ययन की अनुमति देता है कि एक उच्च tunable मॉडल प्रणाली प्रदानस्थिर या चक्रीय तनाव की. ऊतक निर्माणों के निर्माण में सभी कोलेजन अंतर्जात है यह सुनिश्चित करना कि आतंच आधारित हैं. निर्माणों में सेल और कोलेजन संगठन कल्पना की है, और एक आंतरिक संदर्भ प्रणाली हमें समय व्यतीत विश्लेषण के लिए कोशिकाओं और कोलेजन संरचनाओं स्थानांतरित करने के लिए अनुमति देता है. इन कोशिकाओं के आधार पर अपने बढ़ाया अतिरिक्त सेलुलर मैट्रिक्स उत्पादन और इंजीनियर हृदय के ऊतकों में 7 मैट्रिक्स और हमारे स्थापित उपयोग फिर से तैयार करने की क्षमता के लिए जाना जाता है के बाद से इस प्रोटोकॉल में हम, मानव रग Saphena कोशिकाओं (HVSCs) के लिए मॉडल प्रणाली के उपयोग का वर्णन करेंगे डी जोंगे एट अल. 8 के काम पर

Protocol

1. मानव रग Saphena कोशिकाओं की संस्कृति Schnell एट अल द्वारा प्रोटोकॉल के अनुसार माध्यमिक उपयोग सामग्री के लिए दिशा निर्देशों के अनुसार एक दाता से अधिग्रहीत रग saphena मैग्ना,,. 9 से कोशिकाओं को अलग और त?…

Representative Results

इस मॉडल प्रणाली संवर्धन myofibroblast वरीयता प्राप्त आतंच जैल के लिए अनुमति देता है. चित्रा 1 ए स्थिर द्विअक्षीय बाधाओं के तहत पहली सुसंस्कृत एक ऊतक से पता चलता है. ऊतक बाधाओं अक्षीय स्थिर बाधाओं बनाने के…

Discussion

सेल आबादी आतंच निर्माणों की वर्णित मॉडल प्रणाली सेल और कोलेजन के अध्ययन के लिए काफी क्षमता है (फिर) संगठन (डी जोंगे एट अल. 15), ऊतक इंजीनियरिंग प्रयोजनों के लिए प्रयोग की जाने वाली उदा. प्रारंभि?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस अध्ययन जैव चिकित्सा सामग्री (BMM) संस्थान के अनुसंधान कार्यक्रम में प्रदर्शन किया गया था. BMM आर्थिक मामलों, कृषि और अभिनव के डच मंत्रालय द्वारा cofunded है. Nederlandse Hartstichting की वित्तीय योगदान कृतज्ञता से स्वीकार किया है.

Materials

Name Company Catalog number Comments
Culture plastic Greiner Includes culture flasks and pipettes
Advanced DMEM Gibco 12491
Fetal bovine serum Greiner 758075
Penicillin/streptomycin Gibco 10378016
GlutaMax Gibco 35050-079
Elastomer and curing agent Dow Corning Corporation 3097358-1004 Silastic MDX 4-4210#
Velcro Regular store You can buy this at a regular store, only use the soft side
Bioflex culture plates Flexcell Int BF-3001U Untreated
L-Ascorbic Acid 2-phosphatase Sigma A8960
ε-Amino Caproic Acid Sigma-Aldrich D7754
Bovine thrombin Sigma T4648
Bovine fibrinogen Sigma F8630
0.45 syringe filter Whatmann (Schleicher and Scheul) 10462100
Polystyrene microspheres Invitrogen F-8829 Blue fluorescent, 10 μm diameter
Flexcell FX-4000T Flexcell Int Includes rectangular loading posts
Cell Tracker Orange Invitrogen Molecular Probes C2927
CNA35-OG488 Cordially provided by the Laboratory for Macromolecular and Organic Chemistry, Department of Biomedical Engineering, Eindhoven University of Technology
Confocal laser scanning microscope Carl Zeiss LSM 510 Meta laser scanning microscope and Two-Photon-LSM mode
Amphotericin Gibco 15290-018 Needed for cell isolation

References

  1. Beamish, J. A., He, P., Kottke-Marchant, K., Marchant, R. E. Molecular regulation of contractile smooth muscle cell phenotype: implications for vascular tissue engineering. Tissue Eng. Part B Rev. 16, 467-491 (2010).
  2. Isenberg, B. C., Tranquillo, R. T. Long-term cyclic distention enhances the mechanical properties of collagen-based media-equivalents. Ann. Biomed. Eng. 31, 937-949 (2003).
  3. Nichol, J. W., Khan, A. R., Birbach, M., Gaynor, J. W., Gooch, K. J. Hemodynamics and axial strain additively increase matrix remodeling and MMP-9, but not MMP-2, expression in arteries engineered by directed remodeling. Tissue Eng. Part A. 15, 1281-1290 (2009).
  4. Sander, E. A., Stylianopoulos, T., Tranquillo, R. T., Barocas, V. H. Image-based multiscale modeling predicts tissue-level and network-level fiber reorganization in stretched cell-compacted collagen gels. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 17675-17680 (2009).
  5. Hu, J. J., Humphrey, J. D., Yeh, A. T. Characterization of engineered tissue development under biaxial stretch using nonlinear optical microscopy. Tissue Eng. Part A. 15, 1553-1564 (2009).
  6. Lee, E. J., Holmes, J. W., Costa, K. D. Remodeling of engineered tissue anisotropy in response to altered loading conditions. Ann. Biomed. Eng. 36, 1322-1334 (2008).
  7. Mol, A., et al. Fibrin as a cell carrier in cardiovascular tissue engineering applications. Biomaterials. 26, 3113-3121 (2005).
  8. de Jonge, N., Kanters, F. M., Baaijens, F. P., Bouten, C. V. Strain-induced Collagen Organization at the Micro-level in Fibrin-based Engineered Tissue Constructs. Ann. Biomed. Eng. 41 (4), 763-774 (2012).
  9. Schnell, A. M., et al. Optimal cell source for cardiovascular tissue engineering: venous vs. aortic human myofibroblasts. Thorac. Cardiovasc. Surg. 49, 221-225 (2001).
  10. Mol, A., et al. Autologous human tissue-engineered heart valves: prospects for systemic application. Circulation. , I152-I158 (2006).
  11. Ahmann, K. A., Weinbaum, J. S., Johnson, S. L., Tranquillo, R. T. Fibrin degradation enhances vascular smooth muscle cell proliferation and matrix deposition in fibrin-based tissue constructs fabricated in vitro. Tissue Eng. Part A. 16, 3261-3270 (2010).
  12. John, J., Quinlan, A. T., Silvestri, C., Billiar, K. Boundary stiffness regulates fibroblast behavior in collagen gels. Ann. Biomed. Eng. 38, 658-673 (2010).
  13. Rubbens, M. P., et al. Intermittent straining accelerates the development of tissue properties in engineered heart valve tissue. Tissue Eng. Part A. 15, 999-1008 (2009).
  14. Chen, W. L., et al. Multiphoton imaging and quantitative analysis of collagen production by chondrogenic human mesenchymal stem cells cultured in chitosan scaffold. Tissue Eng. Part C Methods. 16, 913-920 (2010).
  15. de Jonge, N., Kanters, F. M., Baaijens, F. P., Bouten, C. V. Strain-induced Collagen Organization at the Micro-level in Fibrin-based Engineered Tissue Constructs. Ann. Biomed. Eng. 41, 763-774 (2013).
  16. Merryman, W. D., et al. Correlation between heart valve interstitial cell stiffness and transvalvular pressure: implications for collagen synthesis. Am. J. Physiol. 290, (2006).
  17. Ingber, D. E. From cellular mechanotransduction to biologically inspired engineering: 2009 Pritzker Award Lecture, BMES Annual Meeting October 10, 2009. Ann. Biomed. Eng. 38, 1148-1161 (2009).
  18. Sander, E. A., Barocas, V. H., Tranquillo, R. T. Initial fiber alignment pattern alters extracellular matrix synthesis in fibroblast-populated fibrin gel cruciforms and correlates with predicted tension. Ann. Biomed. Eng. 39, 714-729 (2010).
  19. van der Schaft, D. W., et al. Engineering Skeletal Muscle Tissues from Murine Myoblast Progenitor Cells and Application of Electrical Stimulation. J. Vis. Exp. (73), e4267 (2013).
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de Jonge, N., Baaijens, F. P. T., Bouten, C. V. C. Engineering Fibrin-based Tissue Constructs from Myofibroblasts and Application of Constraints and Strain to Induce Cell and Collagen Reorganization. J. Vis. Exp. (80), e51009, doi:10.3791/51009 (2013).

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