Summary

स्थिर आइसोटोप लेबल के लिए reductive Dimethylation का प्रयोग मात्रात्मक प्रोटिओमिक्स

Published: July 01, 2014
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Summary

Reductive dimethylation (Redi लेबलिंग) द्वारा पेप्टाइड्स के स्थिर आइसोटोप लेबलिंग सटीक मास स्पेक्ट्रोमेट्री आधारित मात्रात्मक प्रोटिओमिक्स के लिए एक तेजी से, सस्ती रणनीति है. यहाँ हम लगभग किसी भी नमूना प्रकार से लागू किया जा सकता है कि Redi दृष्टिकोण का उपयोग प्रोटीन मिश्रण से तैयार करने और विश्लेषण के लिए एक मजबूत विधि प्रदर्शित करता है.

Abstract

Reductive dimethylation (Redi लेबलिंग) द्वारा पेप्टाइड्स के स्थिर आइसोटोप लेबलिंग सही मास स्पेक्ट्रोमेट्री का उपयोग नमूनों के बीच प्रोटीन अभिव्यक्ति मतभेद यों की एक विधि है. Redi लेबलिंग प्रत्येक मुक्त amine को दो मिथाइल समूह जोड़ने के लिए नियमित रूप से (प्रकाश) या formaldehyde और सोडियम cyanoborohydride के deuterated (भारी) रूपों का उपयोग किया जाता है. यहाँ हम Redi लेबलिंग और जटिल प्रोटीन मिश्रण की मात्रात्मक तुलना के लिए एक मजबूत प्रोटोकॉल प्रदर्शित करता है. तुलना के लिए प्रोटीन के नमूने प्रकाश या भारी मिथाइल टैग, मिश्रित, और LC-MS/MS द्वारा सह विश्लेषण किया या तो ले जाने के लिए लेबल पेप्टाइड्स, में से पच जाता है. सापेक्ष प्रोटीन abundances पूर्ण एमएस स्पेक्ट्रा से निकाले घटक पेप्टाइड भारी और प्रकाश लेबल संस्करणों की आयन वर्णलेख शिखर क्षेत्रों की तुलना द्वारा मात्रा निर्धारित कर रहे हैं. यहाँ वर्णित विधि नमूना उलट चरण ठोस चरण निष्कर्षण द्वारा तैयारी, पेप्टाइड्स पर स्तंभ Redi लेबलिंग, बुनियादी पीएच राजस्व द्वारा पेप्टाइड fractionation शामिलersed चरण (BPRP) क्रोमैटोग्राफी, और StageTip पेप्टाइड शुद्धि. हम स्थिर आइसोटोप शामिल करने के लिए अन्य तरीकों के संबंध में Redi लेबलिंग के फायदे और सीमाओं पर चर्चा की. हम नमूने के लगभग किसी भी प्रकार में प्रोटीन abundances तुलना करने के लिए एक तेज, सस्ता, और सही तरीके के रूप में Redi लेबलिंग का उपयोग उपन्यास अनुप्रयोगों पर प्रकाश डाला.

Introduction

जटिल नमूने के बीच कई प्रोटीन की एकाग्रता अंतर को मापने प्रोटिओमिक्स में एक केंद्रीय चुनौती है. तेजी से, यह अलग समस्थानिक टैग के साथ प्रत्येक नमूने में प्रोटीन लेबलिंग नमूने के संयोजन, और एकाग्रता मतभेद यों मास स्पेक्ट्रोमेट्री का उपयोग करके किया जा रहा है. कई तरीकों प्रोटीन और पेप्टाइड्स के स्थिर समस्थानिक लेबलिंग के लिए मौजूद हैं. ICAT 3, iTRAQ 4, और कमी dimethylation 5 प्रोटीन निष्कर्षण और पाचन के बाद स्थिर आइसोटोप टैग जोड़ने जबकि 15 एन लेबलिंग 1 और SILAC 2, विवो में पाचन समस्थानिक लेबल परिचय. इन तरीकों के अलावा, reductive dimethylation (Redi लेबलिंग) नमूने के लगभग किसी भी प्रकार में प्रोटीन एकाग्रता मतभेद यों के लिए एक सस्ता, प्रतिलिपि प्रस्तुत करने योग्य पद्धति के रूप में लोकप्रिय हो रहा है.

Redi लेबलिंग तो कम हो जाता है, जो एक Schiff आधार, के लिए फार्म formaldehyde के साथ प्रतिक्रिया पेप्टाइड्स शामिलcyanoborohydride द्वारा. यह प्रतिक्रिया एन टर्मिनी और लाइसिन पक्ष श्रृंखला और monomethylates एन टर्मिनल prolines पर मुक्त एमिनो समूहों dimethylates. यहाँ वर्णित प्रोटोकॉल deuterated formaldehyde और cyanoborohydride (चित्रा 1) का उपयोग कर एक "भारी" लेबल के साथ अपने प्राकृतिक समस्थानिक वितरण और नमूना 2 में हाइड्रोजन परमाणुओं के साथ अभिकर्मकों का उपयोग कर एक "प्रकाश" लेबल के साथ नमूना 1 में पेप्टाइड्स methylates. प्रकाश और एक मास स्पेक्ट्रोमीटर का उपयोग दो रूपों के बीच भेद करने के लिए कार्यरत है जो भारी रूपों में 6.0377 दा के एक बड़े पैमाने पर अंतर में एक पेप्टाइड परिणामों पर प्रत्येक dimethylated एमिनो समूह. विशेष रूप से, रिश्तेदार पेप्टाइड abundances प्रकाश की MS1 निकाले आयन वर्णलेख क्षेत्रों का अनुपात (MS1 चोटी क्षेत्र अनुपात) और प्रत्येक पेप्टाइड आयन जोड़ी के लिए भारी संस्करण के रूप में मात्रा निर्धारित कर रहे हैं. एक प्रोटीन के रिश्तेदार बहुतायत प्रोटीन में सभी पेप्टाइड्स के बीच मंझला MS1 चोटी क्षेत्र अनुपात के रूप में गणना की है. इस रिपोर्ट में, हम आचरण के लिए एक मजबूत प्रोटोकॉल का वर्णनउलट चरण पेप्टाइड ठोस चरण निष्कर्षण, पर स्तंभ Redi लेबलिंग, पेप्टाइड fractionation बुनियादी पीएच द्वारा चरण (BPRP) क्रोमैटोग्राफी उलट, और StageTips का उपयोग पेप्टाइड मिश्रण की शुद्धि (चित्रा 2) भी शामिल है कि LC-MS/MS द्वारा Redi लेबलिंग प्रयोगों आईएनजी . हम मात्रात्मक प्रोटिओमिक्स के लिए Redi लेबलिंग का उपयोग करने के फायदे और सीमाओं पर चर्चा की.

Protocol

नोट: इस विधि में पहले 12 में वर्णित किया गया. 1. प्रोटीन अलगाव अधिमानतः ऐसे फ्रेंच प्रेस, मनका पिटाई, या sonication के रूप में भौतिक तरीकों से, lysing कोशिकाओं द्वारा सेलुलर प्रोटीन की 1 मिलीग?…

Representative Results

हम Saccharomyces cerevisiae का उपयोग सटीकता, शुद्धता, और Redi लेबलिंग के reproducibility मूल्यांकन किया और क्लोस्ट्रीडियम पूरे सेल lysates phytofermentans. हम पहले सी का एक मिश्रण की Redi लेबलिंग दक्षता मात्रा निर्धारित सेलूलोज (भारी…

Discussion

उच्च सस्ती लेबलिंग अभिकर्मकों (अभिकर्मकों नमूना प्रति कम से कम $ 1 लागत), तेजी से प्रतिक्रिया की दर (~ 10 मिनट), पक्ष उत्पादों का अभाव,: ​​कई जगहों मात्रात्मक प्रोटिओमिक्स के लिए एक आकर्षक विधि reductive dimethylation (Redi ले?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank SP Gygi and GM Church for help and guidance. This work was supported by a CNRS chaire d’excellence to ACT.

Materials

trichloroacetic acid Sigma-Aldrich T9159 protein precipitation
acetone Sigma-Aldrich 650501 protein precipitation
Sodium dodecyl sulfate Sigma-Aldrich 71736 denature, reduce protein
sodium hydroxide Sigma-Aldrich S8045 denature, reduce protein
DL-Dithiothreitol Sigma-Aldrich 43816 denature, reduce, alkylate protein
protease Inhibitor Complete Mini Cocktail Roche 4693124001 denature, reduce protein
iodoacetamide Sigma-Aldrich I6125 alkylate protein
HEPES Sigma-Aldrich H7523 resuspend, extract, label protein
calcium chloride Sigma-Aldrich C5670 resuspend protein
Lysyl Endoprotease Wako Chemicals 129-02541 protein digestion
sequencing grade trypsin Promega V5111 protein digestion
acetic acid Sigma-Aldrich 320099 protein digestion
trifluoroacetic acid Sigma-Aldrich 299537 Reversed-phase peptide extraction
tC18 Sep-Pak C18 cartridges Waters WAT054960 Reversed-phase peptide extraction
extraction manifold Waters WAT200609 Reversed-phase peptide extraction
acetonitrile Sigma-Aldrich 14261 various
formaldehyde Sigma-Aldrich 252549 “light” peptide labeling
cyanoborohydride Sigma-Aldrich 71435 “light” peptide labeling
deuterated formaldehyde Sigma-Aldrich 492620 “heavy” peptide labeling
sodium cyanoborodeuteride CDN isotopes D-1797 “heavy” peptide labeling
MES Sigma-Aldrich M3671 peptide labeling
C18-HPLC column (4.6 x 250 mm, 5 µm particle size) Agilent 770450-902 basic pH reversed-phase chromatography
formic acid Sigma-Aldrich 399388 various
C18 Empore Disks 3M 14-386-3  STAGE tips
methanol Sigma-Aldrich 494437 STAGE tips

References

  1. Washburn, M. P., Ulaszek, R., Deciu, C., Schieltz, D. M., Yates III, J. R. Analysis of quantitative proteomic data generated via multidimensional protein identification technology. Analytical chemistry. 74 (7), 1650-1657 (2002).
  2. Ong, S. -. E., Blagoev, B., et al. Stable isotope labeling by amino acids in cell culture, SILAC, as a simple and accurate approach to expression proteomics. Molecular & cellular proteomics: MCP. 1 (5), 376-386 (2002).
  3. Gygi, S. P., Rist, B., Gerber, S. A., Turecek, F., Gelb, M. H., Aebersold, R. Quantitative analysis of complex protein mixtures using isotope-coded affinity tags. Nature biotechnology. 17 (10), 994-999 (1999).
  4. Ross, P. L., et al. Multiplexed protein quantitation in Saccharomyces cerevisiae using amine-reactive isobaric tagging reagents. Molecular & cellular proteomics: MCP. 3 (12), 1154-1169 (2004).
  5. Hsu, J. -. L., Huang, S. -. Y., Chow, N. -. H., Chen, S. -. H. Stable-isotope dimethyl labeling for quantitative proteomics. Analytical Chemistry. 75 (24), 6843-6852 (2003).
  6. Chick, J. M., Haynes, P. A., Molloy, M. P., Bjellqvist, B., Baker, M. S., Len, A. C. L. Characterization of the rat liver membrane proteome using peptide immobilized pH gradient isoelectric focusing. Journal of Proteome Research. 7 (3), 1036-1045 (2008).
  7. Rappsilber, J., Ishihama, Y., Mann, M. Stop and go extraction tips for matrix-assisted laser desorption/ionization, nanoelectrospray, and LC/MS sample pretreatment in proteomics. Analytical chemistry. 75 (3), 663-670 (2003).
  8. Eng, J. K., McCormack, A. L., Yates III, J. R. An approach to correlate tandem mass spectral data of peptides with amino acid sequences in a protein database. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 5 (11), 976-989 (1994).
  9. Elias, J. E., Gygi, S. P. Target-decoy search strategy for increased confidence in large-scale protein identifications by mass spectrometry. Nature methods. 4 (3), 207-214 (2007).
  10. Bakalarski, C. E., et al. The impact of peptide abundance and dynamic range on stable-isotope-based quantitative proteomic analyses. Journal of Proteome Research. 7 (11), 4756-4765 (2008).
  11. Wilson-Grady, J. T., Haas, W., Gygi, S. P. Quantitative comparison of the fasted and re-fed mouse liver phosphoproteomes using lower pH reductive dimethylation. Methods (San Diego, Calif.). , (2013).
  12. Tolonen, A. C., Haas, W., Chilaka, A. C., Aach, J., Gygi, S. P., Church, G. M. Proteome-wide systems analysis of a cellulosic biofuel-producing microbe. Molecular Systems Biology. 7, 461 (2011).
  13. Tolonen, A. C., Chilaka, A. C., Church, G. M. Targeted gene inactivation in Clostridium phytofermentans shows that cellulose degradation requires the family 9 hydrolase Cphy3367. Molecular Microbiology. 74 (6), 1300-1313 (2009).
  14. Munoz, J., et al. The quantitative proteomes of human-induced pluripotent stem cells and embryonic stem cells. Molecular systems biology. 7, 550 (2011).
  15. Kovanich, D., Cappadona, S., Raijmakers, R., Mohammed, S., Scholten, A., Heck, A. J. R. Applications of stable isotope dimethyl labeling in quantitative proteomics. Analytical and bioanalytical chemistry. 404 (4), 991-1009 (2012).
  16. McAlister, G. C., et al. Increasing the multiplexing capacity of TMTs using reporter ion isotopologues with isobaric masses. Analytical chemistry. 84 (17), 7469-7478 (2012).
  17. Boersema, P. J., Aye, T. T., Van Veen, T. A. B., Heck, A. J. R., Mohammed, S. Triplex protein quantification based on stable isotope labeling by peptide dimethylation applied to cell and tissue lysates. Proteomics. 8 (22), 4624-4632 (2008).
  18. Wu, Y., et al. Five-plex isotope dimethyl labeling for quantitative proteomics. Chemical communications (Cambridge, England). , (2014).
  19. Boersema, P. J., Raijmakers, R., Lemeer, S., Mohammed, S., Heck, A. J. R. Multiplex peptide stable isotope dimethyl labeling for quantitative proteomics. Nature Protocols. 4 (4), 484-494 (2009).
  20. She, Y. -. M., Rosu-Myles, M., Walrond, L., Cyr, T. D. Quantification of protein isoforms in mesenchymal stem cells by reductive dimethylation of lysines in intact proteins. Proteomics. 12 (3), 369-379 (2012).
  21. Chen, S. -. H., Chen, C. -. R., Chen, S. -. H., Li, D. -. T., Hsu, J. -. L. Improved N(α)-acetylated Peptide Enrichment Following Dimethyl Labeling and SCX. Journal of proteome research. 12 (7), 3277-3287 (2013).
  22. Sun, Z., et al. Capture and Dimethyl Labeling of Glycopeptides on Hydrazide Beads for Quantitative Glycoproteomics Analysis. Analytical Chemistry. 84 (20), 8452-8456 (2012).

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Cite This Article
Tolonen, A. C., Haas, W. Quantitative Proteomics Using Reductive Dimethylation for Stable Isotope Labeling. J. Vis. Exp. (89), e51416, doi:10.3791/51416 (2014).

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