Here we present a simple, rapid method for characterizing the intrinsic adhesive properties of putative cell adhesion molecules. The secreted, epitope-tagged ectodomain of a cell adhesion molecule is captured from the culture medium on small, uniform functionalized beads. These beads can then be used immediately in simple bead aggregation assays.
Cel-cel adhesie is fundamenteel voor meercellig leven en wordt gemedieerd door een divers scala aan eiwitten van het celoppervlak. Echter, de bindingsinteracties voor veel van deze eiwitten slecht begrepen. Hier presenteren we een eenvoudige, snelle methode voor het karakteriseren van de klevende eigenschappen van vermeende homofiele celadhesiemoleculen. Gekweekte HEK293 cellen getransfecteerd met DNA dat codeert voor een uitgescheiden, epitoop-gelabelde ectodomein van een celoppervlakte-eiwit. Met gefunctionaliseerde kralen specifiek voor het epitoop tag, wordt de oplosbare, uitgescheiden fusie-eiwit gevangen uit het kweekmedium. De beklede korrels kunnen vervolgens direct in kraal aggregatie assays of fluorescente kralen sortering assays om te testen op homofiele adhesie. Desgewenst kan mutagenese dan worden gebruikt om de specifieke aminozuren of domeinen die voor hechting helderen. Deze test vereist slechts kleine hoeveelheden van tot expressie gebracht eiwit, niet vereist de productie van stabiele cellijnen en kan worden ACCOmplished in 4 dagen.
Adhesie van cellen is essentieel voor de ontwikkeling en integriteit van meercellige organismen en wordt gemedieerd door een diverse reeks van celoppervlakmoleculen. Veel van deze adhesiemoleculen zijn geïdentificeerd en gekarakteriseerd, hoewel velen nog worden ontdekt. Verschillende methoden worden gebruikt om de eigenschappen van celadhesie moleculen (CAMs), inclusief celsortering assays, cel aggregatie assays 1-8 en biofysische werkwijzen zoals atomic force microscopie en oppervlaktekracht spectroscopie 9-12 onderzoeken.
De complexiteit zelfs vereenvoudigde in vitro systemen die cellijnen bemoeilijkt de kleefeigenschappen van een vermeende CAM bepalen. Typisch wordt een molecuul als een CAM indien induceert cel aggregatie bij getransfecteerd in een niet hechtende cellijn. Het is echter duidelijk dat dit niet direct bewijs kleefmiddel activiteit. Bijvoorbeeld, het celoppervlak levering of stabiliteit van een vergemakkelijkingCAM leidt ook tot verhoogde celaggregatie 1,13. Bovendien kan een echte CAM niet aan celaggregatie mediëren als de cellijn mist andere co-factoren nodig zijn voor celoppervlak levering of stabilisatie.
Om deze complicerende factoren te vermijden, meer direct testen kunnen worden gebruikt die zijn gebaseerd op het idee dat bindingsinteracties dient een intrinsieke biochemische eigenschap van het extracellulaire domein. Terwijl korrels aanvankelijk gebruikt Ng-CAM 2 karakteriseren, zijn deze assays uitgebreid om-cadherine-gemedieerde adhesie 12,14,15 onderzoeken. Met fusie van de C-cadherine ectodomein-Fc-fusies, de Gumbiner lab bleek dat meerdere cadherine herhalingen bijdragen tot 14 homofiele interacties. Met vergelijkbare kraal aggregatie assays, E-cadherine en N-cadherine hechting zijn ook gekarakteriseerd 12,15, evenals een aantal protocadherines 1,15-18 en Dscam isovormen van Drosophila <em> 19. Hier beschrijven we een betrekkelijk eenvoudige en snelle test voor het karakteriseren van de kleefstof activiteit van uitgescheiden, epitoop-gemerkte ectodomeinen van vermoedelijke homophilic CAMs (figuur 1). We hebben deze assay gebruikt hoofdzakelijk, leden van de cadherine-superfamilie karakteriseren.
Celhechting een essentieel kenmerk van meercellig leven en wordt gemedieerd door een brede reeks celoppervlak eiwitten. Hiervan worden de gedetailleerde kleefeigenschappen begrepen slechts een relatief klein deel. Hier hebben we een eenvoudige, snelle protocol beschreven voor het onderzoeken van de homofiele hechtmiddel aantal uitgescheiden ectodomeinen gefuseerd aan een geschikte epitoop tag. Deze benadering heeft een aantal belangrijke voordelen. Eerst worden stabiele cellijnen niet nodig 14,20, voldoende h…
The authors have nothing to disclose.
This work was supported by an NSF/ARRA award (IOS 0920357) and an award from the NIH (5R21MH098463).
Name of Material/ Equipment | Catalog Number | Company |
pFc-N1 plasmid | To be submitted | Addgene |
HEK293 cells | CRL-1573 | American Type Culture Collection |
DMEM | 10-013-CV | Mediatech – Corning |
Fetal Bovine Serum (FBS) | F2442 | Sigma |
100X Pen-Strep (10,000 U/ml) | 15140-122 | Life Technologies |
0.05% Trypsin-EDTA | 25300054 | Life Technologies |
Lipofectamine 2000 | 11668030 | Life Technologies |
Dynabeads – Protein G | 10003D | Life Technologies |
Bovine Serum Albumin | A3294 | Sigma |
Depression slides | 71878-06 | Electron Microscopy Sciences |
Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Unit with Ultracel-10 membrane | UFC901024 | Millipore |
0.45mm syringe filter | 83.1826 | Sarstedt |
Dynamag-2 Magnet | 12321D | Life Technologies |
Fiji (ImageJ) Image Analysis Software | http://fiji.sc/Fiji | |
Table of Buffers/Solutions | ||
Growth Media | DMEM + 10% FBS + Pen-Strep | Filter sterilize and store at 4°C. |
Growth Media – FBS | DMEM + Pen-Strep | Filter sterilize and store at 4°C. |
Binding Buffer | 50 mM Tris, pH 7.4, 100 mM NaCl, 10 mM KCl, 0.2% BSA | Vortex until dissolved, keep on ice. |