Summary

체외 합성에 인간의 세포에서 단백질 발현 유도의 mRNA를 수정의

Published: November 13, 2014
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Summary

이 비디오 문서에서는, 우리는 세포에서 단백질 발현의 유도에 대한 수정의 mRNA의 체외 합성을 설명합니다.

Abstract

원하는 세포에서 단백질 합성의 유도 합성 메신저 RNA (mRNA의)를 코딩의 외생 배달 재생 의학, 기본적인 세포 생물학, 질병의 치료, 세포의 재 프로그래밍 분야에서 엄청난 잠재력을 가지고있다. 여기서 우리는 유동 세포 계측법에 의해 유도 된 단백질 발현의 감소 면역 활성화의 가능성과 안정성이 향상, 생산의 mRNA의 품질 관리, 세포의 형질의 mRNA와 검증과 수정의 mRNA의 생성 단계 프로토콜에 의해 단계를 설명합니다. eGFP는 mRNA의 단일 형질 전환 후 3 일까지, 형질 전환 된 HEK293 세포 eGFP는을 생산하고 있습니다. 이 비디오 문서에서, eGFP는 mRNA의 합성을 예로 들어 설명한다. 그러나, 절차는 다른 원하는 mRNA를 생산에 적용될 수있다. mRNA의 변성 합성을 사용하여, 세포를 일시적들이 정상적으로 발현하지 것이다 원하는 단백질을 발현하도록 유도 될 수있다.

Introduction

세포에서, 전령 RNA의 전사 (mRNA의) 원하는 단백질 내로의 mRNA의 번역은 다음 셀의 적절한 기능을 보장한다. 유전 또는 획득 한 유전 질환 단백질의 부족과 장애 합성으로 이어질 심각한 질병을 일으킬 수 있습니다. 따라서, 결함이 없거나 단백질의 생산을 유도하는 새로운 치료 방법은 세포 내로의 mRNA 합성의 개질 외인성 전달, 목적 단백질을 코딩이다. 이에 따라, 세포가 정상적으로 생성되지 않거나 자연적으로 필요하지 않을 기능 단백질을 합성하는 트리거됩니다. 이 방법을 사용하여, 유전 질환의 mRNA의 도입에 의해 보정 될 수없는 결함이 있거나 단백질을 코딩. mRNA의 치료는 또한 종양 세포 또는 병원체에 의해 발현 된 단백질 항원을 접종 synthetize하기 위해 사용될 수있다. 이에, 숙주 면역 시스템은 효과적으로 종양 세포를 제거하거나 infe을 방지하기 위해 활성화 될 수있다ctions 2,3. 또한, 최근에는 mRNA를 성공적으로 유도 된 다 능성 줄기 세포 (iPSCs)를 생성하기 위해 사용되었다. 이러한 목적을 위해, 섬유 아세포 리 프로그래밍의 발현이 4-6 인자 유도 및 재생 의학에 막대한 잠재력 iPSCs으로 변환하는 mRNA를 함께 형질 감염시켰다.

이전에, 종래의 mRNA의 사용은 낮은 안정성과 강한 면역 원성 연관되었다. 따라서, 기존의 mRNA의 임상 적용은 제한되었다. 그러나 Kariko과 동료의 mRNA 분자 내에 5 메틸 시티와 pseudouridine로 시티 딘과 딘의 교체는 생물학적 유체 안정의 mRNA 분자를 렌더링 극적으로 지금 수정의 mRNA의 임상 적용을 허용 면역 활성화 7-10 감소.

합성으로 생산 된 수정의 mRNA를 사용하여, 원하는 유전자 성적표는 일시적으로 생체 (11)에 전달 될 ​​수또는 시험관 내에서 단백질 발현을 유도한다. 도입의 mRNA는 세포 번역 기계에 의해 생리 학적 조건에서 변환됩니다. 인해 바이러스 유전자 치료 벡터에 비해 숙주 세포 게놈 내로 통합의 부족으로, 종양의 위험도 12,13 방지된다. 따라서, 수정 합성의 mRNA를 사용하여 치료 이후에보다 좋은 임상 승인을 얻을 것이다.

여기에, 우리는 수정 된 mRNA를 생산 (그림 1)의 mRNA와 세포와 형질 전환 된 세포에서 단백질 발현의 평가, 형질 전환에 대한 자세한 프로토콜을 설명합니다.

Protocol

필수 DNA 시퀀스를 코딩 포함하는 플라스미드 1. 확대 술 (CDS) 사전 따뜻한 실온으로 변환 키트에 포함되어 SOC 배지, 37 ° C, 100 ㎍ / ml의 암피실린을 함유하는 LB 아가 플레이트. 42 ° C의 물을 욕조를 평형. 화학적 구성 요소 E. 중 하나 유리 병을 해동 얼음에 대장균. 화학적 성분의 E. 바이알 내로 CDS 함유 플라스미드 1-5 μL (100 ng의 10 페이지)를 첨가 대장?…

Representative Results

eGFP는의 CDS를 포함하여 pcDNA 3.3 플라스미드를 사용하여, 수정 된 eGFP는 mRNA를 합성 (도 1)를 구축했다. PCR에 의한 삽입 증폭 및 폴리 T-미행 한 후, 약 1,100 bp의 길이의 명확한 밴드 (그림 2)을 검출한다. mRNA의 (그림 3)의 수율은 IVT 시간을 증강 증가. IVT 후, 약 1100 bp의 길이의 명확한 mRNA의 밴드가 생성 될 eGFP는 mRNA의 길이 (도 4)에 대응하는 검출되었다…

Discussion

mRNA의 치료는 재생 의학, 질병 및 예방 접종의 치료 분야에서 엄청난 잠재력을 가지고있다. 이 비디오는, 세포에서 단백질 발현의 유도를위한 안정화 된 변형의 mRNA의 생성을 보여준다. 이 프로토콜을 이용하여, 다른 원하는 mRNA를 생성 할 수있다. 변형 된 mRNA를 시험 관내 합성은 표적 단백질의 발현을 유도하는 것이 바람직 mRNA를 함께 세포의 형질 감염을 허용한다. 외생 전달 mRNA를 완전히 …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 프로젝트는 바덴 – 뷔 르템 베르크, 독일에 유럽 사회 기금에 의해 투자되었다.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Cell culture
DMEM, high glucose PAA E15-009
FBS Life Technologies 10500
Penicillin/Streptomycin  PAA P11-010 100x
L-glutamine  PAA M11-004 200 mM
DPBS without calcium and magnesium  PAA E15-002
0.04% Trypsin / 0.03% EDTA  Promocell C-41020
TNS Promocell C-41120 Trypsin Neutralizing Solution, 0.05% trypsin inhibitor in 0.1% BSA
HEK-293 cells ATCC CRL-1573
Consumables
Tissue culture plates, 12-well  Corning 3512
Cell culture flask (75 cm2 Corning 430641
DNase-and RNase-free 1.5 ml sterile microcentrifuge tubes  Eppendorf 0030 121.589 Safe-Lock, Biopur
15 ml conical tubes  greiner bio-one 188271
PCR clean and sterile epT.I.P.S. dualfilter pipette tips  Eppendorf 10 µl: 022491202,    100 µl: 022491237, 1000 µl: 022491253
Cryovial greiner bio-one 122279-128 Cryo.s 
14 ml polypropylene round bottom tube for bacterial culture  BD Falcon 352059
Plasmid amplification and purification
pcDNA 3.3_eGFP Plasmid  Addgene 26822
One Shot Top10 chemically component Escherichia coli  Invitrogen C4040-10
Sterile water (Ampuwa) Fresenius Kabi 1636071
LB medium (Luria/Miller)  Carl Roth X968.1 Dissolve 25 g l-1 in sterile water.
LB agar (Luria/Miller)  Carl Roth X969.1 Dissolve 40 g l-1 in sterile water.
Ampicillin Ready Made Solution Sigma Aldrich A5354 100 mg/ml 
Glycerol Sigma Aldrich G2025
QIAprep Spin Miniprep Kit  Qiagen 27104
mRNA production
HotStar HiFidelity Polymerase Kit  Qiagen 202602
QIAquick PCR Purification Kit  Qiagen 28106
MEGAscript T7 Kit  Life Technologies AM1334
5-Methylcytidine-5´-triphosphate  Trilink N1014 5-Methyl-CTP
Pseudouridine-5´-triphosphate  Trilink N1019 Pseudo-UTP
3´-O-Me-m7G(5´)ppp(5`)G RNA cap structure analog  New England Biolabs S1411L
RiboLock RNase Inhibitor Thermo Scientific EO0381 40 U/µl 
TURBO DNase Life Technologies AM1334 2 U/µl (from MEGAscript T7 Kit)
Antarctic phosphatase  New England Biolabs MO289S
RNeasy mini kit  Qiagen 74104
RNaseZap solution  Life Technologies AM9780
Transfection
Lipofectamine 2000 Transfection Reagent  Invitrogen 11668-019 Cationic lipid transfection reagent
Opti-MEM I Reduced Serum Media  Invitrogen 11058-021 Improved Minimal Essential Medium (MEM) with  reduced Fetal Bovine Serum (FBS) supplementation 
Gel electrophoresis
Agarose Sigma-Aldrich A9539
Gelred Nucleic Acid Gel Stain Biotium 41003 10,000x in water 
peqGOLD Range Mix DNA-Ladder  Peqlab 25-2210
0.5-10 kb RNA Ladder  Invitrogen 15623-200
1x TBE buffer
Flow cytometry analyses
CellFIX (1x) BD Biosciences 340181 10x concentrate 
Primer for insert amplification and         poly (T) tail PCR
Forward Primer (HPLC-grade) 10 µM Ella Biotech 5´-TTGGACCCTCGTACAGAAGCTAATACG-3´
Reverse Primer (HPLC-grade) 10 µM Ella Biotech 5´- T120-CTTCCTACTCAGGCTTTATTCAAAGACCA-3´
Equipment
Cell incubator Binder CO2 (5%) and O2 (20%) 
CASY cell counter  Schärfe System
Sterile workbench  BDK Luft-und Reinraumtecknik GmbH
Bacterial incubator  Incutec
Water bath
ScanDrop spectrophotometer  Analytic Jena
PCR thermocycler  Eppendorf
Microcentrifuge Eppendorf
Vortex peqlab
Thermomixer Eppendorf
Gel apparatus for electrophoresis  Bio-Rad
Gel documentation system  Bio-Rad
FACScan System  BD Biosciences
Fluorescence microscope  Nikon
Phase-contrast microscope  Zeiss

References

  1. Bangel-Ruland, N., et al. CFTR-mRNA delivery: a novel alternative for cystic fibrosis "gene therapy". The journal of gene medicine. , (2013).
  2. Benteyn, D., et al. Design of an Optimized Wilms" Tumor 1 (WT1) mRNA Construct for Enhanced WT1 Expression and Improved Immunogenicity In Vitro and In Vivo. Molecular therapy Nucleic acids. 2, 134 (2013).
  3. Petsch, B., et al. Protective efficacy of in vitro synthesized, specific mRNA vaccines against influenza A virus infection. Nature. 30, 1210-1216 (2012).
  4. Mandal, P. K., Rossi, D. J. Reprogramming human fibroblasts to pluripotency using modified mRNA. Nature protocols. 8, 568-582 (2013).
  5. Warren, L., et al. Highly efficient reprogramming to pluripotency and directed differentiation of human cells with synthetic modified mRNA. Cell stem cell. 7, 618-630 (2010).
  6. Yakubov, E., Rechavi, G., Rozenblatt, S., Givol, D. Reprogramming of human fibroblasts to pluripotent stem cells using mRNA of four transcription factors. Biochemical and biophysical research communications. 394, 189-193 (2010).
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  8. Kariko, K., Buckstein, M., Ni, H., Weissman, D. Suppression of RNA recognition by Toll-like receptors: the impact of nucleoside modification and the evolutionary origin of RNA. Immunity. 23, 165-175 (2005).
  9. Kariko, K., et al. Incorporation of pseudouridine into mRNA yields superior nonimmunogenic vector with increased translational capacity and biological stability. Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy. 16, 1833-1840 (2008).
  10. Kariko, K., Weissman, D. Naturally occurring nucleoside modifications suppress the immunostimulatory activity of RNA: implication for therapeutic RNA development. Current opinion in drug discovery & development. 10, 523-532 (2007).
  11. Kormann, M. S., et al. Expression of therapeutic proteins after delivery of chemically modified mRNA in mice. Nature biotechnology. 29, 154-157 (2011).
  12. Hacein-Bey-Abina, S., et al. Insertional oncogenesis in 4 patients after retrovirus-mediated gene therapy of SCID-X1. The Journal of clinical investigation. 118, 3132-3142 (2008).
  13. Hacein-Bey-Abina, S., et al. Efficacy of gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. The New England journal of medicine. 363, 355-364 (2010).
  14. Avci-Adali, M., et al. Optimized conditions for successful transfection of human endothelial cells with in vitro synthesized and modified mRNA for induction of protein expression. Journal of biological engineering. 8, 8 (2014).
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Cite This Article
Avci-Adali, M., Behring, A., Steinle, H., Keller, T., Krajeweski, S., Schlensak, C., Wendel, H. P. In Vitro Synthesis of Modified mRNA for Induction of Protein Expression in Human Cells. J. Vis. Exp. (93), e51943, doi:10.3791/51943 (2014).

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