Summary

In Vitro Syntese av Modified mRNA for Induksjon av Protein Expression i humane celler

Published: November 13, 2014
doi:

Summary

I dette video artikkelen beskriver vi in vitro syntese av mRNA modifisert for induksjon av protein ekspresjon i celler.

Abstract

Den eksogene levering av koding syntetisk messenger-RNA (mRNA) for induksjon av proteinsyntese i ønskede celler har et enormt potensial innen regenerativ medisin, grunnleggende cellebiologi, behandling av sykdommer, og omprogrammering av celler. Her beskriver vi en trinnvis protokoll for generering av modifiserte mRNA med redusert immunaktivering potensial og økt stabilitet, kvalitetskontroll av mRNA som produseres, transfeksjon av celler med mRNA og verifikasjon av det induserte proteinet ekspresjon ved strømningscytometri. Opp til 3 dager etter en enkelt transfeksjon med EGFP mRNA, de transfekterte HEK293 cellene produserer EGFP. I dette video artikkelen, er syntesen av EGFP-mRNA beskrevet som et eksempel. Imidlertid kan fremgangsmåten anvendes for fremstilling av andre ønskede mRNA. Ved hjelp av den syntetiske modifiserte mRNA, kan cellene bli indusert til forbigående å uttrykke de ønskede proteiner, som de normalt ikke ville uttrykke.

Introduction

I celler, transkripsjonen av messenger-RNA (mRNA) og den følgende translasjon av mRNA til ønskede proteiner sikrer riktig funksjon av celler. Arvelig eller ervervet genetiske lidelser kan føre til mangelfull og dysfunksjonell syntese av proteiner og forårsake alvorlige sykdommer. Således er en ny terapeutisk tilnærming for å indusere produksjonen av manglende eller defekte det eksogene proteiner levering av syntetisk modifisert mRNA i celler, som koder for det ønskede protein. Dermed blir cellene utløst å syntetisere funksjonelle proteiner, som de normalt ikke kan produsere eller ville naturligvis ikke trenger. Ved bruk av denne tilnærmingen, kan genetiske sykdommer korrigeres ved innføring av mRNA som koder for den defekte eller manglende protein 1. MRNA-terapi kan også bli brukt for vaksinasjon for å syntetisere proteinantigener, som uttrykkes av patogener eller tumorceller. Derved kan vertens immunsystem aktiveres til effektivt å eliminere tumorceller eller forhindre infections 2,3. Videre er det i de senere år, mRNA ble med hell anvendt for å generere induserte pluripotente stamceller (iPSCs). For dette formål, ble fibroblaster transfektert med mRNA for å indusere ekspresjon av reprogrammerings faktorer til 4-6 og for å omdanne dem i iPSCs med et enormt potensiale i regenerativ medisin.

Tidligere var bruk av konvensjonelle mRNA forbundet med lav stabilitet og sterk immunogenisitet. Dermed ble kliniske anvendelser av konvensjonelle mRNA begrenset. Imidlertid, utskifting av cytidin og uridin med 5-metylcytidin og pseudouridine innenfor mRNA molekylet ved Kariko og kolleger gjengitt stabile mRNA molekyler i biologiske væsker og dramatisk redusert immunaktivering 7-10, som nå tillater den kliniske anvendbarhet av modifiserte mRNA.

Ved hjelp av syntetisk produsert modifiserte mRNA, kan ønskede gentranskriptene bli midlertidig levert in vivo 11eller in vitro til å indusere proteinekspresjon. Den innførte mRNA oversettes under fysiologiske betingelser oversettelsen av det cellulære maskineri. På grunn av mangel på integrasjon i vertscellegenomet i forhold til viral genterapi vektorer, er risikoen for onkogenese hindres 12,13. Dermed vil terapi bruker modifiserte syntetiske mRNA bli bedre klinisk aksept i fremtiden.

Her beskriver vi en detaljert protokoll for produksjon av modifisert mRNA (figur 1), transfeksjon av celler med mRNA og evaluering av protein ekspresjon i transfekterte celler.

Protocol

1. Økning av plasmider som inneholder Nødvendig Coding DNA-sekvenser (CDS) Pre-varm SOC medium, som er inkludert i transformasjons kit, til romtemperatur og LB-agarplater inneholdende 100 ug / ml ampicillin til 37 ° C. Ekvilibrere vannbad til 42 ° C. Tine ett hetteglass med kjemisk komponent E. coli på is. Legg 1-5 mL av plasmid (10 pg til 100 ng) som inneholder CDS inn i hetteglasset med kjemisk komponent E. coli og bland forsiktig. Ikke bland cellene ved pipetterin…

Representative Results

Ved hjelp av en pcDNA 3.3 plasmid inneholdende de CDS av EGFP, ble syntesen av modifiserte EGFP mRNA opprettet (figur 1). Etter at innsatsen amplifikasjon ved hjelp av PCR og poly T-tailing, er et klart bånd med en lengde på omtrent 1100 bp detektert (Figur 2). Økning av IVT tid utvidet utbyttet av mRNA (figur 3). Etter IVT, ble en klar mRNA bånd med en lengde på omtrent 1100 bp detekteres, noe som tilsvarer lengden av EGFP mRNA som skal fremstilles (figur …

Discussion

MRNA-terapi har et stort potensial i feltet av regenerativ medisin, behandling av sykdommer og vaksinasjon. I denne video, viser vi fremstilling av et stabilisert, modifisert mRNA for induksjon av protein ekspresjon i celler. Ved hjelp av denne protokollen, kan andre ønskede mRNA bli generert. In vitro syntese av mRNA modifisert tillater transfeksjon av celler med de ønskede mRNA for å indusere ekspresjon av målproteiner. Derved blir det ønskede protein uttrykt forbigående under fysiologiske betingelser t…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette prosjektet ble finansiert av European Social Funds i Baden-Württemberg, Tyskland.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Cell culture
DMEM, high glucose PAA E15-009
FBS Life Technologies 10500
Penicillin/Streptomycin  PAA P11-010 100x
L-glutamine  PAA M11-004 200 mM
DPBS without calcium and magnesium  PAA E15-002
0.04% Trypsin / 0.03% EDTA  Promocell C-41020
TNS Promocell C-41120 Trypsin Neutralizing Solution, 0.05% trypsin inhibitor in 0.1% BSA
HEK-293 cells ATCC CRL-1573
Consumables
Tissue culture plates, 12-well  Corning 3512
Cell culture flask (75 cm2 Corning 430641
DNase-and RNase-free 1.5 ml sterile microcentrifuge tubes  Eppendorf 0030 121.589 Safe-Lock, Biopur
15 ml conical tubes  greiner bio-one 188271
PCR clean and sterile epT.I.P.S. dualfilter pipette tips  Eppendorf 10 µl: 022491202,    100 µl: 022491237, 1000 µl: 022491253
Cryovial greiner bio-one 122279-128 Cryo.s 
14 ml polypropylene round bottom tube for bacterial culture  BD Falcon 352059
Plasmid amplification and purification
pcDNA 3.3_eGFP Plasmid  Addgene 26822
One Shot Top10 chemically component Escherichia coli  Invitrogen C4040-10
Sterile water (Ampuwa) Fresenius Kabi 1636071
LB medium (Luria/Miller)  Carl Roth X968.1 Dissolve 25 g l-1 in sterile water.
LB agar (Luria/Miller)  Carl Roth X969.1 Dissolve 40 g l-1 in sterile water.
Ampicillin Ready Made Solution Sigma Aldrich A5354 100 mg/ml 
Glycerol Sigma Aldrich G2025
QIAprep Spin Miniprep Kit  Qiagen 27104
mRNA production
HotStar HiFidelity Polymerase Kit  Qiagen 202602
QIAquick PCR Purification Kit  Qiagen 28106
MEGAscript T7 Kit  Life Technologies AM1334
5-Methylcytidine-5´-triphosphate  Trilink N1014 5-Methyl-CTP
Pseudouridine-5´-triphosphate  Trilink N1019 Pseudo-UTP
3´-O-Me-m7G(5´)ppp(5`)G RNA cap structure analog  New England Biolabs S1411L
RiboLock RNase Inhibitor Thermo Scientific EO0381 40 U/µl 
TURBO DNase Life Technologies AM1334 2 U/µl (from MEGAscript T7 Kit)
Antarctic phosphatase  New England Biolabs MO289S
RNeasy mini kit  Qiagen 74104
RNaseZap solution  Life Technologies AM9780
Transfection
Lipofectamine 2000 Transfection Reagent  Invitrogen 11668-019 Cationic lipid transfection reagent
Opti-MEM I Reduced Serum Media  Invitrogen 11058-021 Improved Minimal Essential Medium (MEM) with  reduced Fetal Bovine Serum (FBS) supplementation 
Gel electrophoresis
Agarose Sigma-Aldrich A9539
Gelred Nucleic Acid Gel Stain Biotium 41003 10,000x in water 
peqGOLD Range Mix DNA-Ladder  Peqlab 25-2210
0.5-10 kb RNA Ladder  Invitrogen 15623-200
1x TBE buffer
Flow cytometry analyses
CellFIX (1x) BD Biosciences 340181 10x concentrate 
Primer for insert amplification and         poly (T) tail PCR
Forward Primer (HPLC-grade) 10 µM Ella Biotech 5´-TTGGACCCTCGTACAGAAGCTAATACG-3´
Reverse Primer (HPLC-grade) 10 µM Ella Biotech 5´- T120-CTTCCTACTCAGGCTTTATTCAAAGACCA-3´
Equipment
Cell incubator Binder CO2 (5%) and O2 (20%) 
CASY cell counter  Schärfe System
Sterile workbench  BDK Luft-und Reinraumtecknik GmbH
Bacterial incubator  Incutec
Water bath
ScanDrop spectrophotometer  Analytic Jena
PCR thermocycler  Eppendorf
Microcentrifuge Eppendorf
Vortex peqlab
Thermomixer Eppendorf
Gel apparatus for electrophoresis  Bio-Rad
Gel documentation system  Bio-Rad
FACScan System  BD Biosciences
Fluorescence microscope  Nikon
Phase-contrast microscope  Zeiss

References

  1. Bangel-Ruland, N., et al. CFTR-mRNA delivery: a novel alternative for cystic fibrosis "gene therapy". The journal of gene medicine. , (2013).
  2. Benteyn, D., et al. Design of an Optimized Wilms" Tumor 1 (WT1) mRNA Construct for Enhanced WT1 Expression and Improved Immunogenicity In Vitro and In Vivo. Molecular therapy Nucleic acids. 2, 134 (2013).
  3. Petsch, B., et al. Protective efficacy of in vitro synthesized, specific mRNA vaccines against influenza A virus infection. Nature. 30, 1210-1216 (2012).
  4. Mandal, P. K., Rossi, D. J. Reprogramming human fibroblasts to pluripotency using modified mRNA. Nature protocols. 8, 568-582 (2013).
  5. Warren, L., et al. Highly efficient reprogramming to pluripotency and directed differentiation of human cells with synthetic modified mRNA. Cell stem cell. 7, 618-630 (2010).
  6. Yakubov, E., Rechavi, G., Rozenblatt, S., Givol, D. Reprogramming of human fibroblasts to pluripotent stem cells using mRNA of four transcription factors. Biochemical and biophysical research communications. 394, 189-193 (2010).
  7. Anderson, B. R., et al. Incorporation of pseudouridine into mRNA enhances translation by diminishing PKR activation. Nucleic acids research. 38, 5884-5892 (2010).
  8. Kariko, K., Buckstein, M., Ni, H., Weissman, D. Suppression of RNA recognition by Toll-like receptors: the impact of nucleoside modification and the evolutionary origin of RNA. Immunity. 23, 165-175 (2005).
  9. Kariko, K., et al. Incorporation of pseudouridine into mRNA yields superior nonimmunogenic vector with increased translational capacity and biological stability. Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy. 16, 1833-1840 (2008).
  10. Kariko, K., Weissman, D. Naturally occurring nucleoside modifications suppress the immunostimulatory activity of RNA: implication for therapeutic RNA development. Current opinion in drug discovery & development. 10, 523-532 (2007).
  11. Kormann, M. S., et al. Expression of therapeutic proteins after delivery of chemically modified mRNA in mice. Nature biotechnology. 29, 154-157 (2011).
  12. Hacein-Bey-Abina, S., et al. Insertional oncogenesis in 4 patients after retrovirus-mediated gene therapy of SCID-X1. The Journal of clinical investigation. 118, 3132-3142 (2008).
  13. Hacein-Bey-Abina, S., et al. Efficacy of gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. The New England journal of medicine. 363, 355-364 (2010).
  14. Avci-Adali, M., et al. Optimized conditions for successful transfection of human endothelial cells with in vitro synthesized and modified mRNA for induction of protein expression. Journal of biological engineering. 8, 8 (2014).

Play Video

Cite This Article
Avci-Adali, M., Behring, A., Steinle, H., Keller, T., Krajeweski, S., Schlensak, C., Wendel, H. P. In Vitro Synthesis of Modified mRNA for Induction of Protein Expression in Human Cells. J. Vis. Exp. (93), e51943, doi:10.3791/51943 (2014).

View Video