Tårekirtlen (LG) er en forgrening organ, der frembringer de vandige komponenter af tårer nødvendige for at bevare vision og øjensundhedstilstand. Her beskriver vi murine LG dissektion og ex vivo kultur teknikker til at dechifrere signalveje, der er involveret i LG udvikling.
Tårekirtlen (LG) udskiller vandige tårer nødvendige for at bevare strukturen og funktionen af hornhinden, en gennemsigtig væv afgørende for syn. I den menneskelige en enkelt LG bor i kredsløb over den laterale ende af hvert øje levere tårer øjenoverfladen gennem 3-5 kanaler. Musen har tre par store okulære kirtler, den mest undersøgte af som er exorbital tårekirtlen (LG) beliggende forreste og ventral til øret. I lighed med andre kirtel organer, LG udvikler gennem processen med epitelial forgrening morfogenese hvor en enkelt epitelial knop i en kondenseret mesenchyme gennemgår flere runder af opløbet og kanal formation for at danne et indviklet sammenhængende net af sekretorisk acini og kanaler. Denne omfattende fremgangsmåde er blevet godt dokumenteret i mange andre epitelorganer såsom bugspytkirtel og spytkirtel. Imidlertid har LG været langt mindre udforskede og de mekanismer, der styrer morphogenese er dårligt understod. Vi formoder, at denne underrepræsentation som en model-system er en konsekvens af de vanskeligheder, der er forbundet med at finde, dissekere og dyrkning af LG. Således her beskriver vi dissektion teknikker til høst embryonale og postnatale LG og metoder til ex vivo dyrkning af vævet.
Tårekirtlen (LG) er ansvarlig for vandig tåresekretion kritisk for synsskarphed og sundhed, vedligeholdelse og beskyttelse af cellerne i den okulære overflade. LG dysfunktion resulterer i en af de mest almindelige og svækkende øjensygdomme: vandig mangelfuld Dry Eye Disease, som er karakteriseret ved øjenirritation, lysfølsomhed og nedsat syn 1. I den menneskelige LG bor i kredsløb over den laterale ende af øjet, hvor 3-5 udskillelsesvej kanaler deposit tårer onto øjenoverfladen. Musen har tre par store okulære kirtler, det mest studerede som er tårekirtlen (LG) beliggende forreste og ventral for øret (exorbital) med tårer rejser til øjet via en enkelt udskillelseskanal. I lighed med andre kirtel organer, LG udvikler gennem processen med epitelial forgrening morfogenese hvor en enkelt epitelial knop i en kondenseret mesenchyme gennemgår flere runder af opløbet og kanal dannelse til form et indviklet forbundne net af sekretorisk acini og kanaler (figur 1) 2. Under udviklingen epitelet bliver vaskulariseret samt kraftigt innerveret af parasympatiske nerver i pterygopalatine ganglion og i mindre grad af sympatiske nerver fra superior cervikal ganglion 3. Interaktioner mellem hver af disse celletyper dvs. neuronale, epitelceller, endotelceller og mesenchymale celler, er afgørende for funktion og vedligeholdelse af voksent væv. Men de underliggende molekylære mekanismer samordning LG udvikling og regeneration samt hvordan inter-celletype kommunikation guider disse processer stadig uklar.
Fremkomsten af embryonale ex vivo dyrkningsteknikker har muliggjort identifikation af udviklingsmæssige og regenerative veje i flere branching organer 4. Dyrkning ex vivo giver forskeren mulighed for at manipulere organet (migniske, genetisk eller kemisk) under definerede betingelser samt at karakterisere udvikling organ og celle-celle-vekselvirkninger i realtid. Den exorbital LG af musen er meget modtagelig for denne teknik og de seneste undersøgelser har defineret signalsystemer, der regulerer dets udvikling 2,5. Men på trods af behovet for at forstå molekylære signaler understøtter LG udvikling og fornyelse, det i øjeblikket stadig dublerede, sandsynligvis på grund af de tekniske vanskeligheder med at isolere orgel. I dette papir, beskriver vi, hvordan du isolerer og udfører ex vivo kultur embryonale murine LG til at definere udviklingsmæssige programmer.
Alsidigheden til kultur og manipulere LG ex vivo giver betydelige fordele for at studere dens udvikling. Dette omfatter den hastighed, hvor forskeren er i stand til at teste hypoteser og de mange perturbationer, som kan udføres for at vurdere, hvor epitel, neuronal, endotel- og mesencyhmal celler interagerer til dannelse af organet. Der er imidlertid en række forbehold, når man bruger denne model. Først, i kraft af sin isolation kirtel er ikke længere forbundet med den perifere kar eller nervesystemet, hvi…
The authors have nothing to disclose.
Forfatterne vil gerne anerkende finansiering fra UCSF Ressourcefordeling Program.
Name | Catalog #. | Company | Comments/Description |
DMEM/F12 without HEPES | SH3027101 | Thermo Scientific | |
Penicillin-Streptomycin | P0781 | Sigma-Aldrich | |
Albumin solution from bovine serum | A9576 | Sigma-Aldrich | |
Paraformaldehyde 16% Solution | 15710 | Electron Microscopy Sciences | Diluted to 4% in 1X PBS |
Phosphate Buffered Saline 10X | BP665-1 | Fisher Scientific | |
Phosphate Buffered Saline 1X | Prepared from 10X stock | ||
holo-Transferrin bovine | T1283 | Sigma-Aldrich | 25 mg/ml stock solution in water. Freeze single-use aliquots at -20C. Add to DMEM/F12 media to a final concentration of 50 ug/mL. |
L- Ascorbic acid (Vitamin C) | A4544 | Sigma-Aldrich | 25 mg/ml stock solution in water. Freeze single-use aliquots at -20C. Add to DMEM/F12 media to a final concentration of 50 ug/mL. |
BioLite 100mm Tissue Culture Treated Dishes | 130182 | Thermo Scientific | Non-tissue culture-treated plates can also be used. |
Stereo Microscope with substage iluminator | Stemi 2000 | Carl Zeiss | Any stereo dissecting microscope can be used that has a transmitted light base. |
Substage Illuminator Base for Stereo Microscope | TLB 4000 | Diagnostics Instruments, Inc. | |
Falcon 35mm Tissue Culture Treated Dishes | 353001 | Corning | Non-tissue culture-treated plates can also be used. |
50mm uncoated glass bottom dishes | P50G-1.5-14-F | MatTek Corporation | |
Widefield fluorescence microscope | Axio Observer Z1 | Carl Zeiss | Any fluorescence microscope (upright, inverted or stereo dissecting microscope) can be used to monitor GFP expression at low magnification with an attached digital camera. |
Confocal Microscope | TCS SP5 | Leica Microsystems | Confocal microscopy is necessary to see detailed cell structures. Any confocal microscope can be used. |
Ideal for harvesting glands from embryos | |||
SWISS Micro-Fine Forceps, #5 (11.2cm) | 17-305X | Integra LifeSciences Corporation | Fine tips are required for removing mesenchyme from epithelium. Tungsten needles can also be used. |
Dumont Standard Tip Forceps, #5 (11cm) | 91150-20 | Fine Science Tools (USA), Inc. | Ideal for harvesting glands from embryos |
Reusable Plastic Surgical Knife Handles, style no. 3. | 4-30 | Integra LifeSciences Corporation | |
Stainless Steel Sterile Surgical Blades, no. 10 | 4-310 | Integra LifeSciences Corporation | |
RNAqueous-Micro Total RNA Isolation Kit | AM1931 | Life Technologies | |
Cultrex 3D Culture Matrix Laminin I | 3446-005-01 | Trevigen | 6 mg/ml stock diluted 1:1 with DMEM/F12 |
Timed-pregnant Crl:CD1(ICR) mice | Charles River Labs | Embryos are harvested on day 14 (with day of plug discovery designated as day 0). | |
Nucleopore Track-Etched Hydrophilic Membranes, 0.1 um pre size, 13mm | 110405 | Whatman | |
Timed-pregnant Pax6-Cre,GFP mice | Tg(Pax-Cre, GFP)1Pgr | The Jackson Laboratory | Optional mice for learning how to locate the LG. |