Summary

Eksperimentelle og billedteknikker for behandlingen fibrinkoagel Structures i Normal og sygdomstilstande

Published: April 01, 2015
doi:

Summary

In this manuscript, experimental techniques, including blood preparation, confocal microscopy, and lysis rate analysis, to examine the morphological differences between normal and abnormal clot structures due to diseased states are presented.

Abstract

Fibrin is an extracellular matrix protein that is responsible for maintaining the structural integrity of blood clots. Much research has been done on fibrin in the past years to include the investigation of synthesis, structure-function, and lysis of clots. However, there is still much unknown about the morphological and structural features of clots that ensue from patients with disease. In this research study, experimental techniques are presented that allow for the examination of morphological differences of abnormal clot structures due to diseased states such as diabetes and sickle cell anemia. Our study focuses on the preparation and evaluation of fibrin clots in order to assess morphological differences using various experimental assays and confocal microscopy. In addition, a method is also described that allows for continuous, real-time calculation of lysis rates in fibrin clots. The techniques described herein are important for researchers and clinicians seeking to elucidate comorbid thrombotic pathologies such as myocardial infarctions, ischemic heart disease, and strokes in patients with diabetes or sickle cell disease.

Introduction

Skade på et blodkar er endothelbeklædning repareres gennem den hæmostatiske respons, eller dannelse af en blodprop. Når blodet trænger ind den ekstracellulære matrix aktiverer vævsfaktorer blodplader i blodet, som letter indledningen af ​​koagulationskaskaden. Nøglen mekaniske del af denne helingsproces er fibrinmatrixen sammensat af fibrin fibre, der er meget elastisk og kan opretholde store kræfter 1-4. Mange forskere har undersøgt dannelsen struktur og funktion af fibrin i udstrakt grad i de seneste årtier 5-13.

Patienter med sygdomme, såsom diabetes mellitus og seglcelle har en øget risiko for at udvikle thrombotiske komplikationer såsom myokardieinfarkter, iskæmisk hjertesygdom og slagtilfælde 14-19. Over 2 millioner mennesker er nyligt diagnosticeret med diabetes mellitus hvert år i USA. Der er to typer af diabetes: Type I, hvorkrop ikke producerer tilstrækkelige mængder af insulin, og type II, hvor kroppen bliver resistent over for insulin. Blandt diabetespatienter, hjerte-kar-sygdom (CVD) er årsag til 80% af sygelighed og dødelighed forbundet med sygdommen 20,21.

Seglcelle sygdom (SCD) er en genetisk blodsygdom, der påvirker mere end 100.000 mennesker i USA 22. SCD er et punkt-mutation sygdom, der forårsager røde blodlegemer at blive halvmåne-formet, hvilket gør det vanskeligt for celler at passere gennem blod vaskulatur 23. Begge disse sygdomstilstande øge chancerne for at udvikle aterotrombotiske betingelser i kroppen. En af grundene til dette er et resultat af ændret fibrin struktur og funktion i sygdomstilstande 14,24-26.

I både diabetes og seglcelleanæmi, er der hyperkoagulation og hypofibrinolysis aktivitet, der inducerer aterotrombose og hjerte-kar-sygdom (CVD) sammenlignet med raske patienter 17,27,28. Det er kendt, at hypofibrinolysis fremmer åreforkalkning progression og skaber tilbagevendende iskæmiske hændelser hos patienter med tidlig koronararteriesygdom 29. I den nuværende manuskript, undersøgte vi rollen af ​​fibrin fysiske egenskaber i denne indstilling. Fibrinkoagel strukturer i ikke-syge patienter er sammensat af tynde fibre, større porer, og generelt mindre tætte 14,24. Den øgede porøsitet og mindre tætte fibrinklumper i raske patienter har vist sig at lette fibrinolyse 16. I hyperthrombotic tilstande, såsom diabetisk og seglcelleanæmi, er der en stigning i fibrinogen produktion, forårsager fibrinogenkoncentration at stige fra normale niveauer på 2,5 mg / ml i raske patienter 30-33. Fibrinkoagulater dannet i diabetiske patienter har vist sig at være mindre porøse, mere stiv, har flere forgreningspunkter, og tættere i forhold til sunde, ikke-diaBetic patienter 14,24,33-35. Den ændrede fibrin struktur er et resultat af glycosyleringsassays mekanismer, der forekommer i de involverede i koageldannelse proteiner. Ikke-enzymatisk (irreversibel) glykering opstår, når glukose molekyler binder til lysinrester på fibrinogen molekyle, som hæmmer menneskelige faktor Xllla (FXIIIa) fra korrekt cross-linking glutamin og lysinrester 33,36,37.

Den strukturelle analyse af fibrin-net er blevet undersøgt i udstrakt grad for nylig. Især har forskere udnyttet elektronmikroskopi og 3D rekonstruktion af fibrin-net 38, undersøgte hvordan både intravaskulære (endotelceller) celler og ekstravaskulære (fibroblaster og glatte muskelceller) celler påvirker fibrin struktur 39, anvendt viskoelastiske og spektral analyse til at analysere fibrin strukturer 40, og udviklede korrelationer mellem fibrin struktur og mekaniske egenskaber ved hjælp af eksperimentelle og beregningsmæssige metoder 41 </sup>. Fokus for den aktuelle undersøgelse var at formulere blodprop strukturer under simulerede diabetiker og seglcelle trombose forhold og anvende konfokal mikroskopi til undersøgelse af struktur og funktion af blodpropper i sygdomstilstande. Fibrinkoagulater blev dannet fra human fibrinogen, humant thrombin, og FXIIIa. De blodpropper blev lyseret ved hjælp af plasmin. For at simulere diabetiske betingelser blev forøget koncentration af fibrinogen inkuberet i glucoseopløsning til at inducere in vitro fibrinogen glycosylering. For at simulere Seglcellesygdom størkning betingelser ledsagedes øgede fibrinogenkoncentrationer blandet med seglcelle hæmatokrit indsamlet fra patienter som udført tidligere af vores gruppe 42. Disse metoder blev anvendt til at undersøge struktur og funktioner, der er involveret i fibrinklumpdannelse og fibrinolyse under sygdomstilstande samt de mekanismer, der inducerer CVD. Baseret på aktuelle oplysninger om disse sygdomme, de glycerede fibrinkoagel strukturer var tættere med færre and mindre porer. De fibrinkoagulater med røde blodlegemer fra seglcellepatienter (RBC) var også tættere og vises aggregering af de røde blodlegemer og agglomereret fibrin klynger. Dette er et veletableret fænomen der er blevet bestemt tidligere 43. Det blev også en hypotese, at den fibrinolyse sats ville være betydeligt lavere i glycerede fibrinklumper med og uden nedsat plasmin sammenlignet med raske, normale fibrin. Resultaterne viste, at af glykosyleret fibrinklumper, var signifikant forskellige lysis prisresultaterne kun observeret under betingelser med reduceret plasmin koncentration. Denne eksperimentelle teknik med at bruge konfokal mikroskopi giver betydelige fordele i forhold til andre billeddiagnostiske metoder, fordi cellerne og proteiner forbliver i deres oprindelige tilstand, som gør det muligt registrering af real-time video af koagulation aktivitet. Denne metode til syntetisk inducerende størkning er også billigere og mere tid effektivt end at få patientprøver og bortfiltrere individuelproteiner og enzymer. Endvidere, ved anvendelse af separerede proteiner og enzymer til at syntetisere blodpropper blev blodpropper standardiseret, således at der ikke var variabilitet mellem prøver som følge af andre proteiner i plasma.

Protocol

BEMÆRK: Følgende protokol følger retningslinjerne fastsat af Institutional Review Board (IRB) ved Georgia Tech. 1. Blodprøvetagning og røde blodlegemer isoleringsprocedure Saml 40-120 ml blod fra donorer i 10 ml hepariniserede vakuumbeholderrør. Start PBMC (perifert blod mononukleære celler) isolation inden 4 timer efter prøvetagning. I løbet af denne tid, holde blod ved stuetemperatur. BEMÆRK: O / N opbevaring af blod i RT eller 4 ° C anbefales ikke,</st…

Representative Results

Konfokal mikroskopi Analyse af glykeret fibrinkoagel Structures De konfokal mikroskopi billeder af normale og glycerede blodpropper er præsenteret i figur 3. Konfokal mikroskopi-analyse af de normale og glycerede blodpropper afslører, at glycerede blodpropper er tættere med mindre porer end det normale blodpropper både med og uden tilsætning af FXIIIa under blodprop polymerisation. I figur 3A og 3B, er der en lavere fibrin koncentration…

Discussion

For at opnå meningsfulde data om strukturen af ​​clotting mekanismer sygdomstilstande, er det vigtigt at isolere de faktorer involveret i koagulation for at bestemme virkningerne af proteiner og celler i disse betingelser. Denne protokol blev udviklet med henblik på at undersøge strukturen af fibrinkoagel i diabetiske og SCD stater in vitro.

Det er nødvendigt at forstå de mekanismer involveret i fibrindannelse og fibrinolyse i sygdomstilstande siden ændrede betingelser giv…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to thank the Lam Lab at Georgia Tech for many helpful discussions in developing the experimental assays. Research reported in this publication was supported by the National Heart, Lung, and Blood Institute of the National Institutes of Health under Award Number K01HL115486 and by New Innovator Grant 1DP2OD007433-01 from the Office of the Director, National Institutes of Health. The content is solely the responsibility of the authors and does not necessarily represent the official views of the National Institutes of Health.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
PBS Life Technologies 10010031
Ficoll-Paque (hydrophilic polysaccharide) GE Healthcare 45-001-749
10 ml heparinized vacutainer tubes BD Biosciences 366643
Human Fibrinogen Enzyme Research Laboratories N/A
Alexa Fluor 488 human fibrinogen conjugate Molecular Probes F13191
0.5 mL graduated microcentrifuge tube Fisher Scientific 05-408-120
Glucose powder Life Technologies 15023-02
FXIIIa Enzyme Research Laboratories N/A
VIS Confocal Microscope Zeiss LSM 510 LSM 510
50 mM Tris Lonza S50-642
Calcium Chloride (CaCl2) Sigma Aldrich 449709-10G
Vybrant DiD cell-labeling solution Life Technologies L7781
Plasmin Enzyme Research Laboratories N/A
Sodium Chloride (5 M NaCl) Life Technologies AM9759
Statistical Modeling Software IBM SPSS Statistics 22

References

  1. Averett, R. D., et al. A Modular Fibrinogen Model that Captures the Stress-Strain Behavior of Fibers. Biophysical Journal. 103, 1537-1544 (2012).
  2. Carlisle, C. R., et al. The mechanical properties of individual, electrospun fibrinogen fibers. Biomaterials. 30, 1205-1213 (2009).
  3. Falvo, M. R., Gorkun, O. V., Lord, S. T. The molecular origins of the mechanical properties of fibrin. Biophysical Chemistry. 152, 15-20 (2010).
  4. Guthold, M., Cho, S. S. Fibrinogen Unfolding Mechanisms Are Not Too Much of a Stretch. Structure. 19, 1536-1538 (2011).
  5. Gerth, C., Roberts, W. W., Ferry, J. D. Rheology of fibrin clots II: Linear viscoelastic behavior in shear creep. Biophysical Chemistry. 2 (74), 208-217 (1974).
  6. Nelb, G. W., Kamykowski, G. W., Ferry, J. D. Rheology of fibrin clots. v. shear modulus, creep, and creep recovery of fine unligated clots. Biophysical Chemistry. 13 (81), 15-23 (1981).
  7. Roberts, W. W., Kramer, O., Rosser, R. W., Nestler, F. H. M., Ferry, J. D. Rheology of fibrin clots. I.: Dynamic viscoelastic properties and fluid permeation. Biophysical Chemistry. 1, 152-160 (1974).
  8. Ryan, E. A., Mockros, L. F., Weisel, J. W., Lorand, L. Structural Origins of Fibrin Clot Rheology. Biophysical Journal. 77, 2813-2826 (1999).
  9. Weisel, J. W. Fibrin assembly. Lateral aggregation and the role of the two pairs of fibrinopeptides. Biophysical Journal. 50, 1079-1093 (1986).
  10. Weisel, J. W. The mechanical properties of fibrin for basic scientists and clinicians. Biophysical Chemistry. 112, 267-276 (2004).
  11. Wolberg, A. S. Thrombin generation and fibrin clot structure. Blood Reviews. 21, 131-142 (2007).
  12. Wolberg, A. S., Campbell, R. A. Thrombin generation, fibrin clot formation and hemostasis. Transfusion and Apheresis Science. 38, 15-23 (2008).
  13. Yeromonahos, C., Polack, B., Caton, F. Nanostructure of the Fibrin Clot. Biophysical Journal. 99, 2018-2027 (2010).
  14. Dunn, E. J. Fibrinogen and fibrin clot structure in diabetes. Herz. 29, 470-479 (2004).
  15. Gladwin, M. T., Sachdev, V. Cardiovascular abnormalities in sickle cell disease. Journal of the American College of Cardiology. 59, 1123-1133 (2012).
  16. Collet, J. P., et al. Altered Fibrin Architecture Is Associated With Hypofibrinolysis and Premature Coronary Atherothrombosis. Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology. 26, 2567-2573 (2006).
  17. Carr, M. E. Diabetes mellitus: a hypercoagulable state. Journal of Diabetes and its Complications. 15, 44-54 (2001).
  18. Ajjan, R. A., Ariëns, R. A. S. Cardiovascular disease and heritability of the prothrombotic state. Blood Reviews. 23, 67-78 (2009).
  19. Standeven, K. F., Ariëns, R. A. S., Grant, P. J. The molecular physiology and pathology of fibrin structure/function. Blood Reviews. 19, 275-288 (2005).
  20. Alzahrani, S., Ajjan, R. Review article: Coagulation and fibrinolysis in diabetes. Diabetes and Vascular Disease Research. 7, 260-273 (2010).
  21. Stuart, M. J., Nagel, R. L. Sickle-cell disease. The Lancet. 364, 1343-1360 (2004).
  22. Dunn, E. J., Ariëns, R. A. S., Grant, P. J. The influence of type 2 diabetes on fibrin structure and function. Diabetologia. 48, 1198-1206 (2005).
  23. Dunn, E. J., Philippou, H., Ariëns, R. A. S., Grant, P. J. Molecular mechanisms involved in the resistance of fibrin to clot lysis by plasmin in subjects with type 2 diabetes mellitus. Diabetologia. 49, 1071-1080 (2006).
  24. Famodu, A., Reid, H. Plasma fibrinogen levels in sickle cell disease. Tropical and geographical medicine. 39, 36-38 (1987).
  25. Richardson, S., Matthews, K., Stuart, J., Geddes, A., Wilcox, R. Serial Changes in Coagulation and Viscosity during Sickle-Cell Crisis. British journal of haematology. 41, 95-103 (1979).
  26. Ataga, K. I., Orringer, E. P. Hypercoagulability in sickle cell disease: a curious paradox. The American Journal of Medicine. 115, 721-728 (2003).
  27. Collet, J. P., et al. Altered fibrin architecture is associated with hypofibrinolysis and premature coronary atherothrombosis. Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology. 26, 2567-2573 (2006).
  28. Barazzoni, R., et al. Increased Fibrinogen Production in Type 2 Diabetic Patients without Detectable Vascular Complications: Correlation with Plasma Glucagon Concentrations. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 85, 3121-3125 (2000).
  29. Ceriello, A. Coagulation activation in diabetes mellitus: the role of hyperglycaemia and therapeutic prospects. Diabetologia. 36, 1119-1125 (1993).
  30. Mayne, E. E., Bridges, J. M., Weaver, J. A. Platelet adhesiveness, plasma fibrinogen and factor VIII levels in diabetes mellitus. Diabetologia. 6, 436-440 (1970).
  31. Weisel, J. W. Fibrinogen and fibrin. Advances in protein chemistry. 70, 247-299 (2005).
  32. Collet, J., et al. Influence of Fibrin Network Conformation and Fibrin Fiber Diameter on Fibrinolysis Speed Dynamic and Structural Approaches by Confocal Microscopy. Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology. 20, 1354-1361 (2000).
  33. Jörneskog, G., et al. Altered properties of the fibrin gel structure in patients with IDDM. Diabetologia. 39, 1519-1523 (1996).
  34. Svensson, J., et al. Acetylation and glycation of fibrinogen in vitro occur at specific lysine residues in a concentration dependent manner: A mass spectrometric and isotope labeling study. Biochemical and Biophysical Research Communications. 421, 335-342 (2012).
  35. Pieters, M., et al. Glycation of fibrinogen in uncontrolled diabetic patients and the effects of glycaemic control on fibrinogen glycation. Thrombosis Research. 120, 439-446 (2007).
  36. Baradet, T. C., Haselgrove, J. C., Weisel, J. W. Three-dimensional reconstruction of fibrin clot networks from stereoscopic intermediate voltage electron microscope images and analysis of branching. Biophysical journal. 68, 1551-1560 (1995).
  37. Campbell, R. A., Overmyer, K. A., Selzman, C. H., Sheridan, B. C., Wolberg, A. S. Contributions of extravascular and intravascular cells to fibrin network formation, structure, and stability. Blood. 114, 4886-4896 (2009).
  38. Curtis, D. J., et al. A study of microstructural templating in fibrin-thrombin gel networks by spectral and viscoelastic analysis. Soft Matter. 9, 4883-4889 (2013).
  39. Kim, E., et al. Correlation between fibrin network structure and mechanical properties: an experimental and computational analysis. Soft Matter. 7, 4983-4992 (2011).
  40. Keegan, P. M., Surapaneni, S., Platt, M. O. Sickle cell disease activates peripheral blood mononuclear cells to induce cathepsins k and v activity in endothelial cells. Anemia. 2012, 201781 (2012).
  41. Allison, A. Properties of sickle-cell haemoglobin. Biochemical Journal. 65, 212 (1957).
  42. Kuehl, R. O. . Design of experiments : statistical principles of research design and analysis. , (2000).
  43. Lindman, H. R. . Analysis of variance in experimental designs. , (1992).
  44. Pan, W., Galkin, O., Filobelo, L., Nagel, R. L., Vekilov, P. G. Metastable Mesoscopic Clusters in Solutions of Sickle-Cell Hemoglobin. Biophysical Journal. 92, 267-277 (2007).
  45. Wootton, D. M., Popel, A. S., Alevriadou, B. R. An experimental and theoretical study on the dissolution of mural fibrin clots by tissue-type plasminogen activator. Biotechnology and bioengineering. 77, 405-419 (2002).
  46. Sazonova, I. Y., et al. 127 Mathematic model of fibrin clot lysis by plasmin. Fibrinolysis and Proteolysis. 12, 45 (1998).

Play Video

Cite This Article
Fan, N. K., Keegan, P. M., Platt, M. O., Averett, R. D. Experimental and Imaging Techniques for Examining Fibrin Clot Structures in Normal and Diseased States. J. Vis. Exp. (98), e52019, doi:10.3791/52019 (2015).

View Video