Summary

Kvantifisering av Orofacial fenotyper i<em> Xenopus</em

Published: November 06, 2014
doi:

Summary

En fremgangsmåte for å kvantifisere orofacial størrelsen og formen av Xenopus laevis embryoer har blitt utviklet. I denne protokollen, er tradisjonell størrelse målinger kombinert med geometriske morphometrics å tillate mer sofistikerte analyser av orofacial utvikling og defekter.

Abstract

Xenopus har blitt et viktig verktøy for å dissekere de mekanismene som styrer craniofacial utvikling og defekter. En metode for å kvantifisere orofacial utviklingen vil tillate mer grundig analyse av orofacial fenotyper ved opphevelse med stoffer som genetisk eller molekylært kan manipulere genuttrykket eller protein funksjon. Ved hjelp av todimensjonale bilder av embryonale hoder, er tradisjonelle dimensjoner-en slik størrelse som orofacial bredde, høyde og området-målt. I tillegg er en rundhet mål på den embryoniske munnåpningen brukt for å beskrive formen av munnen. Geometriske morphometrics av ​​disse to dimensjonale bilder blir også utført for å tilveiebringe en mer sofistikert riss av endringer i formen av orofacial regionen. Landemerker er tildelt spesifikke punkter i orofacial regionen og koordinatene er opprettet. Et prinsipp komponentanalyse anvendes for å redusere Landmark koordinater til prinsipielle komponenter som deretter diskriminere behandlingengrupper. Disse resultatene vises som et punktplott som personer med lignende orofacial former klynge sammen. Det er også nyttig å utføre en funksjon diskriminant analyse, som statistisk sammenligner posisjonene til landemerker mellom to behandlingsgruppene. Denne analysen vises på en transformasjon rutenett der endringer i landemerke posisjon blir sett på som vektorer. Et rutenett legges oppå disse vektorer slik at en fordreining mønster vises for å vise hvor viktig kjennetegn er flyttet. Formendringer i diskriminant funksjonsanalysen er basert på et statistisk mål, og kan derfor bli vurdert av en p-verdi. Denne analysen er enkel og tilgjengelig, krever bare et stereoskop og freeware programvare, og dermed vil være en verdifull forskning og undervisning ressurs.

Introduction

Blant de mest utbredte og ødeleggende typer av humant fødselsskader er de som påvirker munn og ansikt, slik som orofacial kløfter en. Barn med misdannede orofacial strukturer gjennomgå flere operasjoner i hele sin levetid, og sliter med ansikts disfigurements, tale, hørsel og spiseproblemer. Derfor er av vesentlig betydning for forebygging og behandling av disse typer misdannelser tilrettelegge ny forskning i cranio- og orofacial utvikling hos mennesker. Xenopus laevis har dukket opp som et nytt verktøy for å dissekere de mekanismene som styrer craniofacial utvikling (noen eksempler er 2,3,4 -11). Derfor kan en kvantitativ metode for å analysere størrelse og form endres under utviklingen av hodet og ansiktet av denne arten være svært kraftig tre.

Her presenterer vi en slik metode; kombinerer tradisjonelle målinger størrelse med geometriske morphometrics tilpasset fra en Xenopus studie 12 </sup> og et vell av studier analysere menneskelig ansikts skjema 13-15. Målet med denne protokollen er å tillate forskere å kvantifisere ansikts størrelse og former for å skille mellom ulike orofacial fenotyper under normal og unormal utvikling. Denne analysen vil gi rom for bedre differensiering mellom subtile kraniofaciale defekter som dem som skyldes synergieffekter av gener og / eller miljømessige faktorer. I tillegg kan dette kvantifisering metoden også avsløre enda liten forbedring eller redning av en orofacial defekt. Dette gjør det derfor en nyttig guide i å analysere mulige behandlingsformer.

Kombinasjonen av ansikts målinger og geometriske morphometrics som vi presenterer her gjør det mulig for en mer omfattende statistisk analyse av både størrelsen og formen på den orofacial region enn nåværende protokoller som i stor grad utnytter bare den ene eller den andre 15-18. Videre presenterer vi en enkel måte å vurdere både den mediale og laterale flyene avansiktet uten å kreve avansert tredimensjonal bildeutstyr som brukes i dagens studier 13,19.

Vi demonstrerer denne protokollen på Xenopus laevis embryoer behandlet med en retinsyrereseptor hemmer som induserer unormal orofacial utvikling og en median ganespalte 2,3. Kvantifisering av dimensjonene og formen på orofacial regionen i disse embryoer har avdekket endringer i midface som er analog til mennesker med liknende palatal kløfter og musemodeller 20,21. Imidlertid kan denne protokollen benyttes for å vurdere effekten av andre forbindelser på orofacial utvikling som naturlige stoffer, plantevernmidler, eller proteiner som vekstfaktorer. Videre orofacial størrelse og form endringer som følger av endringen av genekspresjon via tap eller gevinst på funksjons eksperimenter (ved hjelp av antisense morpholinos eller Crispers / Talens) også kan kvantifiseres ved hjelp av denne protokollen. Til slutt, har vi utviklet denne metoden spesifikasjonlly å vurdere Xenopus morfologi; men det er imidlertid lett modifiseres for analyse av en hvilken som helst vertebrat. Andre programmer kan også omfatte å bruke denne protokollen for å sammenligne nært beslektede arter for evolusjonære eller økologiske studier. Mens eksempelet vi tilbyr her benytter denne protokollen å beskrive analyse av orofacial regionen, kan det lett bli endret for analyse av andre regioner, organer eller strukturer.

Dette orofacial kvantifisering protokollen vil bli en verdifull ressurs for forskersamfunnet, samt en utmerket læringsverktøy for lavere grads studenter som en video demonstrasjon.

Protocol

Alle eksperimenter utført ved hjelp Xenopus laevis har blitt godkjent av IACUC (protokoll # AD20261). 1. Forberede Reagenser og nødvendige materialer Reagenser: Lag 1 liter 10x MBS (Modified Barths Saline) løsning 22. Legg NaCl (880 mM), KCl (10 mM), MgSO4 (10 mM), HEPES (50 mM, pH 7,8), og NaHCO3 (25 mM) til 1 liter destillert vann. Juster pH til 7,8 med NaOH. Lag 1 L av 1 x MBS ved å fortynne 100 ml av 10x MBS-oppl…

Representative Results

Her ble en kvantitativ analyse av orofacial størrelse og form demonstrert å sammenligne embryoer behandlet med retinsyre-reseptor inhibitor (inhibitor RAR) til ubehandlede kontroller. Embryoene ble behandlet med en 1fiM konsentrasjon av denne kjemiske hemmer fra scenen 24-30 (26-35 HPF), vasket ut, og fikset på scenen 42 (82 HPF). De ble deretter behandlet og analysert som beskrevet i protokollen. Resultatene er originale data, men i samsvar med observasjoner i tidligere publikasjoner 2,3. Kontroll embryoe…

Discussion

Xenopus laevis har blitt et nyttig verktøy for å dissekere den utviklingsmessige mekanismer underliggende orofacial utvikling; men det er for øyeblikket ingen protokoller som beskriver størrelse og form endringer i denne regionen i frosker. Metoden som beskrives her vil bidra vesentlig til feltet av orofacial utvikling ved å tillate for strengere kvantifisering av orofacial fenotyper i Xenopus og andre virveldyr.

Den første, mest kritiske aspekt ved riktig utførelse …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Oppstarts penger til A. Dickinson fra VCU støttet dette arbeidet.

Forfatterne ønsker å erkjenne Dan Nacu for sitt kunstneriske talent i å skape skjematisk illustrasjon.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Dissecting microscope Zeiss fitted with AxioCamICC1 camera
Dumont #5 Inox forceps Fine Science Tools 11251-10
Sterile, disposable scalpel Sklar 06-2015
24-well plate Fisher Scientific 087721
Standard Disposable transfer pipettes Fisher Scientific 13-711-7M
150 mm X 15 mm Petri dishes Falcon 351058
Incubators Ectotherm set to 15C or 20C 
Modeling Clay Premo, or other non-toxic modeling clay in black or white
Straight teasing needle Thermo Scientific 19010
Capillary Tubing (for needles) FHC 30-30-1 Borosil 1.0mm OD x 0.5mm ID/Fiber, 100 mm each
Needle Puller, Model P-97  Sutter Instrument Co,  Needle Puller: P-97 Flaming/ Bown micropipette puller Filament: FB300B For filaments, use Sutter 3.00mm square box filaments, 3.0mm wide.
Pipettemen Gilson F144802, F123600, F123602
BMS-453 Tocris 3409
DMSO American Bioanalytical AB00435-01000
Cysteine Sigma-Aldrich 52-90-4
Paraformaldehyde powder Sigma-Aldrich 158127
Petri dishes Falcom 353003, 351058 100 mm diameter and 150 mm in diameter
100% Ethanol VWR 89125-170

References

  1. Mossey, P. A., Little, J., Munger, R. G., Dixon, M. J., Shaw, W. C. Cleft lip and palate. Lancet. 374, 1773-1785 (2009).
  2. Kennedy, A. E., Dickinson, A. J. Median facial clefts in Xenopus laevis: roles of retinoic acid signaling and homeobox genes. Dev Biol. 365, 229-240 (2012).
  3. Kennedy, A. E., Dickinson, A. J. Quantitative Analysis of Orofacial Development and Median Clefts in Xenopus Laevis. Anat Rec (Hoboken). , (2014).
  4. Dickinson, A., Sive, H. Positioning the extreme anterior in Xenopus: cement gland, primary mouth and anterior pituitary. Semin Cell Dev Biol. 18, 525-533 (2007).
  5. Dickinson, A. J., Sive, H. Development of the primary mouth in Xenopus laevis. Dev Biol. 295, 700-713 (2006).
  6. Dickinson, A. J., Sive, H. L. The Wnt antagonists Frzb-1 and Crescent locally regulate basement membrane dissolution in the developing primary mouth. Development. 136, 1071-1081 (2009).
  7. Barnett, C., et al. Syndrome Transcription Factor is critical for neural crest cell function in Xenopus laevis. Mech Dev. 129, 324-338 (2012).
  8. Gonzales, B., Yang, H., Henning, D., Valdez, B. C. Cloning and functional characterization of the Xenopus orthologue of the Treacher Collins syndrome (TCOF1) gene product. Gene. 359, 73-80 (2005).
  9. Reisoli, E., De Lucchini, S., Nardi, I., Ori, M. Serotonin 2B receptor signaling is required for craniofacial morphogenesis and jaw joint formation in Xenopus. Development. 137, 2927-2937 (2010).
  10. Schuff, M., et al. FoxN3 is required for craniofacial and eye development of Xenopus laevis. Dev Dyn. 236, 226-239 (2007).
  11. Slater, B. J., Liu, K. J., Kwan, M. D., Quarto, N., Longaker, M. T. Cranial osteogenesis and suture morphology in Xenopus laevis: a unique model system for studying craniofacial development. PLoS One. 4, (2009).
  12. Vandenberg, L. N., Adams, D. S., Levin, M. Normalized shape and location of perturbed craniofacial structures in the Xenopus tadpole reveal an innate ability to achieve correct morphology. Dev Dyn. 241, 863-878 (2012).
  13. Bugaighis, I., Mattick, C. R., Tiddeman, B., Hobson, R. 3D Facial Morphometry in Children with Oral Clefts. Cleft Palate Craniofac J. , (2013).
  14. Farkas, L. G., Katic, M. J., Forrest, C. R. Surface anatomy of the face in Down’s syndrome: anthropometric proportion indices in the craniofacial regions. J Craniofac Surg. 12, 519-524 (2001).
  15. Scheuer, H. A., Holtje, W. J., Hasund, A., Pfeifer, G. Prognosis of facial growth in patients with unilateral complete clefts of the lip, alveolus and palate. J Craniomaxillofac Surg. 29, 198-204 (2001).
  16. Parsons, K. J., Andreeva, V., James Cooper, W., Yelick, P. C., Craig Albertson, R. Morphogenesis of the zebrafish jaw: development beyond the embryo. Methods Cell Biol. 101, 225-248 (2011).
  17. Farkas, L. G., Katic, M. J., Forrest, C. R. Surface anatomy of the face in Down’s syndrome: age-related changes of anthropometric proportion indices in the craniofacial regions. J Craniofac Surg. 13, 368-374 (2002).
  18. Cooper, W. J., et al. Bentho-pelagic divergence of cichlid feeding architecture was prodigious and consistent during multiple adaptive radiations within African rift-lakes. PLoS One. 5, (2010).
  19. Klingenberg, C. P., et al. Prenatal alcohol exposure alters the patterns of facial asymmetry. Alcohol. 44, 649-657 (2010).
  20. Zhao, Y., et al. Isolated cleft palate in mice with a targeted mutation of the LIM homeobox gene lhx8. Proc Natl Acad Sci U S A. 96, 15002-15006 (1999).
  21. Allam, K. A., et al. The spectrum of median craniofacial dysplasia. Plast Reconstr Surg. , 812-821 (2011).
  22. Sive, H. L., Grainger, R., Harlard, R. . Early development of Xenopus laevis: a laboratory manual. , (2000).
  23. Cross, M. K., Powers, M. Obtaining eggs from Xenopus laevis females. J Vis Exp. , (2008).
  24. Nieuwkoop, P. D., Faber, J. . Normal Table of Xenopus Laevis (Daudin). , (1967).
  25. Nieuwkoop, P. D. a. F. J. . Normal Table of Xenopus laevis (Daudin): A Systematical and Chronological Survey of the Development from the Fertilized Egg till the End of Metamorphosis. , (1994).
  26. Abdi, H., Williams, L. J. Principal Component Analysis. WIREs Computational Statistics. 2, (2010).
  27. Hill, T. L. . P. STATISTICS: Methods and Applications. , (2013).
check_url/52062?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kennedy, A. E., Dickinson, A. J. Quantification of Orofacial Phenotypes in Xenopus. J. Vis. Exp. (93), e52062, doi:10.3791/52062 (2014).

View Video