Summary

Kvantifiering av Orofacial fenotyper in<em> Xenopus</em

Published: November 06, 2014
doi:

Summary

En metod för att kvantifiera orofacial storleken och formen av Xenopus laevis embryon har utvecklats. I detta protokoll är traditionella storleksmätningar i kombination med geometriska Morfometri att möjliggöra mer avancerade analyser av orofacial utveckling och defekter.

Abstract

Xenopus har blivit ett viktigt verktyg för att dissekera de mekanismer som styr kraniofaciala utveckling och defekter. En metod för att kvantifiera orofacial utveckling kommer att möjliggöra mer noggrann analys av orofaciala fenotyper vid upphävande med ämnen som är genetiskt eller molekylärt kan manipulera genuttryck eller proteinfunktion. Med hjälp av två dimensionella bilder av embryonala huvuden, är traditionella storleksmått-såsom orofacial bredd, höjd och områdes mäts. Dessutom är en rundhet mått på den embryonala mynningsöppningen används för att beskriva formen på munnen. Geometriska Morfometri av dessa två dimensionella bilder utförs också för att tillhandahålla en mer sofistikerad vy över förändringar i formen av den orofaciala området. Sevärdheter delas särskilda punkter i orofaciala regionen och koordinater skapas. En princip komponentanalys används för att minska landmärke koordinaterna till huvudkomponenterna som sedan diskriminerar behandlingengrupper. Dessa resultat visas som en punktdiagram där individer med liknande orofaciala former kluster tillsammans. Det är också användbart för att utföra ett urskiljningsfunktionen analys, som statistiskt jämför positionerna för de landmärken mellan två behandlingsgrupper. Denna analys visas på en omvandling nätet där förändringar i landmärke ställning betraktas som vektorer. Ett rutnät ovanpå dessa vektorer så att ett varpmönster visas för att visa var betydande landmärke ställning har förändrats. Formförändringar i analysen urskiljningsfunktionen baseras på ett statistiskt mått, och kan därför utvärderas genom att ett p-värde. Denna analys är enkel och tillgänglig, som endast kräver en stereoskop och freeware programvara, och därmed kommer att bli en värdefull forskning och undervisning resurs.

Introduction

Bland de vanligaste och förödande typer av humana fosterskador är de som berör munnen och ansiktet, till exempel orofaciala klyftor 1. Barn med missbildade orofaciala strukturer genomgår flera operationer under hela sin livstid och kämpar med ansikts vanställdhet, tal, hörsel och ätproblem. Därför underlättar ny forskning i cranio- och orofacial utveckling är avgörande för att förebygga och behandla dessa typer av fosterskador hos människor. Xenopus laevis har vuxit fram som ett nytt verktyg för att dissekera de mekanismer som styr kraniofaciala utveckling (några exempel är 2,3,4 -11). Därför skulle en kvantitativ metod för att analysera storlek och formförändringar under utvecklingen av huvudet och ansiktet av denna art är mycket kraftfull 3.

Här presenterar vi en sådan metod; kombinerar traditionella storleksmätningar med geometriska Morfometri anpassas från en Xenopus studie 12 </sup> och en uppsjö av studier som analyserar människans ansikts formulär 13-15. Målet med detta protokoll är att göra det möjligt för forskare att kvantifiera ansikts storlek och former för att skilja mellan olika orofaciala fenotyper under normal och onormal utveckling. Denna analys kommer att möjliggöra en bättre differentiering mellan subtila kraniofaciala defekter såsom sådana som härrör från synergistiska effekter av gener och / eller miljömässiga faktorer. Dessutom kan denna kvantifiering metoden också avslöjar även svag förbättring eller räddning av en orofacial defekt. Det gör därför en användbar guide i att analysera potentiella läkemedel.

Kombinationen av ansikts mätningar och geometriska Morfometri som vi presenterar här möjliggör en mer omfattande statistisk analys av både storlek och form på orofaciala regionen än dagens protokoll som till stor del använder bara det ena eller det andra 15-18. Vidare presenterar vi ett enkelt sätt att bedöma både den mediala och laterala planansiktet utan att det krävs avancerad tredimensionell avbildningsutrustning som används i löpande undersökningar 13,19.

Vi visar detta protokoll om Xenopus laevis embryon som behandlats med en retinsyrareceptor hämmare som inducerar onormal orofaciala utveckling och en median gomspalt 2,3. Kvantifiering av dimensionerna och formen av det orofaciala området i dessa embryon har avslöjat förändringar i ansiktet som är analogt till människor med liknande palatinala klyftor och musmodeller 20,21. Dock kan detta protokoll användas för att bedöma effekterna av andra föreningar på orofacial utveckling såsom naturämnen, herbicider, eller proteiner såsom tillväxtfaktorer. Vidare, orofaciala storlek och formförändringar till följd av störning av genuttryck via förlust eller vinst på funktions experiment (med antisens morpholinos eller Crispers / Talens) kan också kvantifieras med hjälp av detta protokoll. Slutligen har vi utvecklat denna metod specifically att bedöma Xenopus morfologi; dock är det lätt modifieras för analys av alla ryggradsdjur. Andra tillämpningar kan också innefatta användning av detta protokoll för att jämföra närbesläktade arter för evolutionära och ekologiska studier. Medan det exempel vi ger här använder detta protokoll för att beskriva analys av den orofaciala området, kunde den lätt modifieras för analys av andra regioner, organ eller strukturer.

Denna orofacial kvantifiering protokoll kommer att bli en värdefull resurs för forskarsamhället, samt ett utmärkt pedagogiskt hjälpmedel för studenter som en videodemonstration.

Protocol

Alla experiment utförda med hjälp av Xenopus laevis har godkänts av IACUC (protokoll # AD20261). 1. Förbereda Reagens och Material som behövs Reagens: Gör 1 liter 10x MBS (Modified Barths Saline) lösning 22. Lägg NaCl (880 mM), KCl (10 mM), MgSO 4 (10 mM), HEPES (50 mM, pH 7,8) och NaHCO 3 (25 mM) till en L destillerat vatten. Justera pH till 7,8 med NaOH. Gör en L 1X MBS genom att späda 100 ml av 10x MBS-lösn…

Representative Results

Här gjordes en kvantitativ analys av orofacial storlek och form visade att jämföra embryon som behandlats med en retinsyra-receptor-inhibitor (RAR-hämmare) till obehandlade kontroller. Embryon behandlades med en 1 ^ M koncentration av denna kemiska hämmaren från steg 24 till 30 (26-35 HPF), tvättas ut och fixeras vid steg 42 (82 HPF). De bearbetades därefter och analyserades såsom beskrivs i protokollet. Resultaten är originaldata, men i linje med observationer i tidigare publikationer 2,3. Embryon …

Discussion

Xenopus laevis har blivit ett användbart verktyg för att dissekera de utvecklings- mekanismerna bakom orofacial utveckling; Det finns dock för närvarande inga protokoll som beskriver storlek och formförändringar i denna region i grodor. Den metod som beskrivs här kommer att bidra avsevärt till området för orofacial utveckling genom att tillåta mer rigorös kvantifiering av orofaciala fenotyper i Xenopus och andra ryggradsdjur.

Den första, mest kritiska aspekten …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Uppstarts pengar till A. Dickinson från VCU stött detta arbete.

Författarna vill erkänna Dan Nacu för hans konstnärliga talang i att skapa den schematiska illustrationen.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Dissecting microscope Zeiss fitted with AxioCamICC1 camera
Dumont #5 Inox forceps Fine Science Tools 11251-10
Sterile, disposable scalpel Sklar 06-2015
24-well plate Fisher Scientific 087721
Standard Disposable transfer pipettes Fisher Scientific 13-711-7M
150 mm X 15 mm Petri dishes Falcon 351058
Incubators Ectotherm set to 15C or 20C 
Modeling Clay Premo, or other non-toxic modeling clay in black or white
Straight teasing needle Thermo Scientific 19010
Capillary Tubing (for needles) FHC 30-30-1 Borosil 1.0mm OD x 0.5mm ID/Fiber, 100 mm each
Needle Puller, Model P-97  Sutter Instrument Co,  Needle Puller: P-97 Flaming/ Bown micropipette puller Filament: FB300B For filaments, use Sutter 3.00mm square box filaments, 3.0mm wide.
Pipettemen Gilson F144802, F123600, F123602
BMS-453 Tocris 3409
DMSO American Bioanalytical AB00435-01000
Cysteine Sigma-Aldrich 52-90-4
Paraformaldehyde powder Sigma-Aldrich 158127
Petri dishes Falcom 353003, 351058 100 mm diameter and 150 mm in diameter
100% Ethanol VWR 89125-170

References

  1. Mossey, P. A., Little, J., Munger, R. G., Dixon, M. J., Shaw, W. C. Cleft lip and palate. Lancet. 374, 1773-1785 (2009).
  2. Kennedy, A. E., Dickinson, A. J. Median facial clefts in Xenopus laevis: roles of retinoic acid signaling and homeobox genes. Dev Biol. 365, 229-240 (2012).
  3. Kennedy, A. E., Dickinson, A. J. Quantitative Analysis of Orofacial Development and Median Clefts in Xenopus Laevis. Anat Rec (Hoboken). , (2014).
  4. Dickinson, A., Sive, H. Positioning the extreme anterior in Xenopus: cement gland, primary mouth and anterior pituitary. Semin Cell Dev Biol. 18, 525-533 (2007).
  5. Dickinson, A. J., Sive, H. Development of the primary mouth in Xenopus laevis. Dev Biol. 295, 700-713 (2006).
  6. Dickinson, A. J., Sive, H. L. The Wnt antagonists Frzb-1 and Crescent locally regulate basement membrane dissolution in the developing primary mouth. Development. 136, 1071-1081 (2009).
  7. Barnett, C., et al. Syndrome Transcription Factor is critical for neural crest cell function in Xenopus laevis. Mech Dev. 129, 324-338 (2012).
  8. Gonzales, B., Yang, H., Henning, D., Valdez, B. C. Cloning and functional characterization of the Xenopus orthologue of the Treacher Collins syndrome (TCOF1) gene product. Gene. 359, 73-80 (2005).
  9. Reisoli, E., De Lucchini, S., Nardi, I., Ori, M. Serotonin 2B receptor signaling is required for craniofacial morphogenesis and jaw joint formation in Xenopus. Development. 137, 2927-2937 (2010).
  10. Schuff, M., et al. FoxN3 is required for craniofacial and eye development of Xenopus laevis. Dev Dyn. 236, 226-239 (2007).
  11. Slater, B. J., Liu, K. J., Kwan, M. D., Quarto, N., Longaker, M. T. Cranial osteogenesis and suture morphology in Xenopus laevis: a unique model system for studying craniofacial development. PLoS One. 4, (2009).
  12. Vandenberg, L. N., Adams, D. S., Levin, M. Normalized shape and location of perturbed craniofacial structures in the Xenopus tadpole reveal an innate ability to achieve correct morphology. Dev Dyn. 241, 863-878 (2012).
  13. Bugaighis, I., Mattick, C. R., Tiddeman, B., Hobson, R. 3D Facial Morphometry in Children with Oral Clefts. Cleft Palate Craniofac J. , (2013).
  14. Farkas, L. G., Katic, M. J., Forrest, C. R. Surface anatomy of the face in Down’s syndrome: anthropometric proportion indices in the craniofacial regions. J Craniofac Surg. 12, 519-524 (2001).
  15. Scheuer, H. A., Holtje, W. J., Hasund, A., Pfeifer, G. Prognosis of facial growth in patients with unilateral complete clefts of the lip, alveolus and palate. J Craniomaxillofac Surg. 29, 198-204 (2001).
  16. Parsons, K. J., Andreeva, V., James Cooper, W., Yelick, P. C., Craig Albertson, R. Morphogenesis of the zebrafish jaw: development beyond the embryo. Methods Cell Biol. 101, 225-248 (2011).
  17. Farkas, L. G., Katic, M. J., Forrest, C. R. Surface anatomy of the face in Down’s syndrome: age-related changes of anthropometric proportion indices in the craniofacial regions. J Craniofac Surg. 13, 368-374 (2002).
  18. Cooper, W. J., et al. Bentho-pelagic divergence of cichlid feeding architecture was prodigious and consistent during multiple adaptive radiations within African rift-lakes. PLoS One. 5, (2010).
  19. Klingenberg, C. P., et al. Prenatal alcohol exposure alters the patterns of facial asymmetry. Alcohol. 44, 649-657 (2010).
  20. Zhao, Y., et al. Isolated cleft palate in mice with a targeted mutation of the LIM homeobox gene lhx8. Proc Natl Acad Sci U S A. 96, 15002-15006 (1999).
  21. Allam, K. A., et al. The spectrum of median craniofacial dysplasia. Plast Reconstr Surg. , 812-821 (2011).
  22. Sive, H. L., Grainger, R., Harlard, R. . Early development of Xenopus laevis: a laboratory manual. , (2000).
  23. Cross, M. K., Powers, M. Obtaining eggs from Xenopus laevis females. J Vis Exp. , (2008).
  24. Nieuwkoop, P. D., Faber, J. . Normal Table of Xenopus Laevis (Daudin). , (1967).
  25. Nieuwkoop, P. D. a. F. J. . Normal Table of Xenopus laevis (Daudin): A Systematical and Chronological Survey of the Development from the Fertilized Egg till the End of Metamorphosis. , (1994).
  26. Abdi, H., Williams, L. J. Principal Component Analysis. WIREs Computational Statistics. 2, (2010).
  27. Hill, T. L. . P. STATISTICS: Methods and Applications. , (2013).
check_url/52062?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kennedy, A. E., Dickinson, A. J. Quantification of Orofacial Phenotypes in Xenopus. J. Vis. Exp. (93), e52062, doi:10.3791/52062 (2014).

View Video