Summary

Utarbeidelse av Mica og Silicon Underlag for DNA Origami analyse og eksperimentering

Published: July 23, 2015
doi:

Summary

Reproducible cleaning processes for substrates used in DNA origami research are described, including bench-top RCA cleaning and derivatization of silicon oxide. Protocols for surface preparation, DNA origami deposition, drying parameters, and simple experimental set-ups are illustrated.

Abstract

The designed nature and controlled, one-pot synthesis of DNA origami provides exciting opportunities in many fields, particularly nanoelectronics. Many of these applications require interaction with and adhesion of DNA nanostructures to a substrate. Due to its atomically flat and easily cleaned nature, mica has been the substrate of choice for DNA origami experiments. However, the practical applications of mica are relatively limited compared to those of semiconductor substrates. For this reason, a straightforward, stable, and repeatable process for DNA origami adhesion on derivatized silicon oxide is presented here. To promote the adhesion of DNA nanostructures to silicon oxide surface, a self-assembled monolayer of 3-aminopropyltriethoxysilane (APTES) is deposited from an aqueous solution that is compatible with many photoresists. The substrate must be cleaned of all organic and metal contaminants using Radio Corporation of America (RCA) cleaning processes and the native oxide layer must be etched to ensure a flat, functionalizable surface. Cleanrooms are equipped with facilities for silicon cleaning, however many components of DNA origami buffers and solutions are often not allowed in them due to contamination concerns. This manuscript describes the set-up and protocol for in-lab, small-scale silicon cleaning for researchers who do not have access to a cleanroom or would like to incorporate processes that could cause contamination of a cleanroom CMOS clean bench. Additionally, variables for regulating coverage are discussed and how to recognize and avoid common sample preparation problems is described.

Introduction

Først introdusert i 2006, benytter DNA origami selv montering natur DNA-oligonukleotider å produsere utformbare og svært bestilte nanostrukturer. 1 En myriade av strukturer har blitt rapportert, alt fra smilefjes til låst 3-dimensjonale bokser. 2 DNA origami kan funksjon med ulike biomolekyler og nanostrukturer, noe som gir opphav til forskningssøknader i nanoelektronikk, medisin og quantum computing. 3 Men analysen og mange fremtidige programmer er ikke bare avhengig av strukturelle design, men også på vedheft av DNA origami nanostrukturer til overflater. Metodene som beskrives i dette manuskriptet gjelder for fremstillingen av DNA-origami prøver på to typer substrater: glimmer og funksjonaliseres silisiumoksid.

Glimmer er substratet grepet av DNA origami studier fordi det er atomisk flat, med en laghøyde på 0,37 nm ± 0,02 nm. 4 er det også easily rengjort, noe som gjør atomic force mikroskopi (AFM) studier prøveopparbeidelse og grei. Muskovitt glimmer inneholder en høy tetthet av kalium i hver spalting fly, men disse ioner diffunderer bort fra glimmer flaten når den er i vann. For å mediere binding av DNA origami til glimmer substratet, blir Mg 2+ brukes til å reversere den negative ladningen av glimmer og elektrostatisk binde DNA-fosfat-hovedkjeden til substratet (figur 1A). 5 Blandinger av hybridiserte DNA i nærvær av store overskudd av stapel- tråder gir høy dekningsgrad og gode bilder på glimmer på grunn av adhesjonen av DNA origami til Mg 2+ -terminated overflate er mye sterkere enn adhesjonen av enkelt-trådede oligonukleotider (stapel- tråder). Andre positivt ladede ioner, inkludert Ni 2+ 2+ Co og kan brukes til å kontrollere adhesjonen av DNA på glimmer. 6,7 Endring av konsentrasjonen av monovalente og divalente kationer i oppløsning kan mediere adhesjons og overflate diffusjonshastigheter av DNA origami. 8 imidlertid protokollen for fremstilling av glimmer substrater og avsette og skylle origami er ofte ikke eksplisitt er beskrevet i publiserte manuskripter. 9 Uten klar-protokollen, kan reproduserbare resultater være vanskelig å oppnå.

Glimmer er en isolator, slik at det ikke er egnet som substrat for enkelte applikasjoner i nanoelektronikk. Silicon passiv med et tynt innfødt oksid har attraktive elektroniske egenskaper, inkludert kompatibilitet med tidligere gratis Metal Oxide Semiconductor (CMOS) behandling for å lage input / output strukturer og topografiske egenskaper. Silisiumskiver som er lagret i luft er passivert med enten en tykk termisk oksyd eller tynn innfødt oksid film som er relativt skittent, med en høy partikkeltelling. Silisium-oksyd har en mye lavere tetthet enn overflateladning glimmer, og ladningstettheten er svært avhengig av oksyd forberedelse og historie. På magnesium ionekonsentrasjoner above 150 mM, god dekning (opp til 4 / um 2) med rektangulært DNA origami kan oppnås på oksygenplasma behandles silisiumsubstrater; Dette kan imidlertid konsentrasjonen og dekning endres avhengig av størrelsen og utformingen av nanostrukturer som brukes. 10 En alternativ protokoll for tuning overflaten kostnad er å feste en kationiske selv-montert monolayer av 3-aminopropyltrietoksysilan (APTES) (figur 1B) til oksydet. Det primære amin på APTES kan bli protonert ved pH-verdier under 9, modifisering av ladning og hydrofobisitet av underlaget. 11 For en fullstendig monolag av APTES å være vellykket avsettes, må silisium være hensiktsmessig renses ved hjelp av Radio Corporation of America (RCA) protokoller . Disse protokoller inkluderer behandlinger i ammoniumhydroksyd og hydrogenperoksydoppløsninger (RCA1) for å fjerne organiske rester og partikkel forurensninger. En kort etch i vandig flussyre-løsning, fjernes det naturlige oksydlag sammen mednoen ioniske forurensninger som holder seg til oksid. Til slutt, er prøvene utsatt for en saltsyre og hydrogen peroxide løsning (RCA2) for å fjerne metall og ioniske forurensninger og danner en tynn, jevn oksydlaget. 12 De fleste renrom har utpekt hetter for CMOS rengjøring protokoller, med strenge regler om hva som kan brukes i disse områdene. Et vanlig problem kommer i form av ioner slik som natrium, som kan forstyrre de elektroniske egenskaper av CMOS-strukturer ved å lage midbandgap feller. 13 Ioner som vanligvis anvendes i DNA origami forberedelse og deponering buffere kan forurense CMOS-bad og føre til problemer for andre forskere ved hjelp clean room. Av denne grunn, vår gruppe bruker en "skitne" CMOS rengjøring benk arrangert spesielt for de små prøver som brukes til DNA origami forskning. Denne prosessen er et godt alternativ til den tradisjonelle renrom oppsett og kan være egnet for laboratorier som ikke har tilgang til et renrom CMOS benk.

Protocol

1. Eksperimenter Planlegging og Material Forberedelse Bestem utforming, konsentrasjon, og funksjonaliteten av DNA origami som vil bli anvendt i eksperimentene. 14-16 Her anvendes en DNA origami rektangel utforming fremstilt i 1 x TAE / Mg2 +-oppløsning (40 mM Tris-base, 20 mM eddiksyre, 2 mM EDTA og 12 mM magnesium-acetat, pH 8,0). 17 Autoklav alle tips, rør og containere som skal brukes. Disse materialene må alle være autoklav kompatible. Forberede en …

Representative Results

To variabler diktere dekning av DNA origami på substratet: Løsning konsentrasjon og eksponeringstid. Absorpsjons egenskapene DNA origami på glimmer og APTES funksjonalisert silisiumoksyd er tidligere blitt rapportert. 13 Forholdet mellom konsentrasjonen av DNA origami i avsetningsoppløsningen og de ​​endelige dekning på glimmer er oppsummert i tabell 1 og figur 2, og viser økende konsentrasjon resultatene i økt dekning. Den tidsavhengighet av binding er sett i <str…

Discussion

Det er flere tiltak som må vektlegges for å oppnå konsistente og ideelle resultater. For glimmer prøver, etter en streng og grundig skylling og tørking regime, som i trinn 3.3 og 3.4, vil sørge for at bilder av høy kvalitet av individuelle DNA origami kan oppnås ved hjelp av AFM uten de ulike problemene skissert i representative resultater delen. Av særlig betydning for silisium prøvene er renslighet av underlaget. Etter rengjøring prosedyrene beskrevet i trinn 5.2 grundig og omhyggelig vil sikre at en hensik…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Dr. Gary Bernstein for use of the AFM.

Materials

Eppendorf epT.I.P.S. Reloads, capacity 2-200 μL  VWR International, LLC 22491733 10 reload tray of 96 tips
Microcentrifuge Tubes, Polypropylene VWR International, LLC 87003-290 0.65 mL, natural
Research Plus Pippete – Single Channel – 20-200 μL A. Daigger & Company, Inc. EF8960F-3120000054 EACH Adjustable Volume
Research Plus Pippete – Single Channel – 2-20 μL A. Daigger & Company, Inc. EF8960D-3120000038 EACH Adjustable Volume
Scotch 237 Permanent Double-Sided Tape Office Depot, Inc. 602710 3/4" x 300", Pack of 2
Vortex Mixer Thermo Scientific M37610-33Q
Wafer container single, 2" (50 mm), 60 mm x 11 mm Electron Microscopy Sciences 64917-2 6 per pack
6" Wafer, P-type, <100> orientation, w/ primary flat Nova Electronic Materials, Ltd. GC49266
Powder-Free Nitrile Examination Gloves VWR International, LLC 82062-428 Catalog number is for size large
High Accuracy Noncontact probes with Au reflective coating K-Tek Nanotechnology, Inc. HA_NC/15
Autoclave Pan A. Daigger & Company, Inc. NAL692-5000 EF25341C
Sol-Vex II Aggressive Gloves, Size: 9-9.5; 15 mil, 13 inch – 1 dz Spectrum Chemical Mfg. Corp. 106-15055 Before use, rinse with water and scrub together until no bubbles form on the gloves.
Tweezers PTFE 200 mm Square Dynalon Corp. 316504-0002
Muscovite Mica Sheets V-5 Quality Electron Microscopy Sciences 71850-01 10 per pack
Mica Disc, 10 mm Ted Pella, Inc 50 Mica discs are optional
Scriber Diamon Pen for Glassware VWR International, LLC 52865-005
Scintillation Vials, Borosilicate Glass, with Screw Cap – 20 mL VWR International, LLC 66022-060 Case of 500, with attached polypropylene cap and pulp foil liner
4 x 5 Inch Top PC-200 Hot Plate, 120 V/60 Hz Dot Scientific, Inc. 6759-200
Straight-Sided Glass Jars, Wide Mouth VWR International, LLC 89043-554 Case of 254, caps with pulp/vinyl liner attached
Standar-Grade Glass Beaker, 250 mL Capacity VWR International, LLC 173506
Beakers, PTFE VWR International, LLC 89026-022 For use with HF
Shallow form watch glass, 3" VWR International, LLC 66112-107 Case of 12
Plastic Storage Container VWR International, LLC 470195-354 For secondary container
General-Purpose Liquid-In-Glass Thermometers VWR International, LLC 89095-564
High precision and ultra fine tweezers Electron Microscopy Sciences 78310-0
Polycarbonate Faceshield Fisher Scientific, Inc. 18-999-4542
Neoprene Apron Fisher Scientific, Inc. 19-810-609
Calcium Gluconate, Calgonate W.W Grainger, Inc. 13W861 Tube, 25 g
Hydrogen Peroxide 30 % CR ACS 500 mL Fisher Scientific, Inc. H325 500 HARMFUL, TOXIC
3-Aminopropyltriethoxysilane Gelest Inc. SIA0610.0-25GM Let warm to room temperature before use.
Ammonium hydroxide, 2.5 L Fisher Scientific, Inc. A669-212 HARMFUL, TOXIC
Hydrochloric acid Fisher Scientific, Inc. A144-212 HARMFUL, TOXIC
Hydrofluoric acid Fisher Scientific, Inc. A147-1LB HARMFUL, TOXIC
MultiMode Nanoscope IIIa Veeco Instruments, Inc. n/a Any AFM capable of tapping mode is suitable for analysis
Dunk basket Made in lab Made in lab The dunk basket was made using the bottom of a PTFE bottle with holes drilled in, PTFE handle, and all PTFE screws.

References

  1. Rothemund, P. W. K. Folding DNA to create nanoscale shapes and patterns. Nature. 440, 297-302 (2006).
  2. Anderson, E. S., et al. Self-assembly of a nanoscale DNA box with a controllable lid. Nature. 459, 73-77 (2009).
  3. Wang, Z., Ding, B. Engineering DNA Self-Assemblies as Templates for Functional Nanostructures. Acc. Chem. Res. 47, 1654-1662 (2014).
  4. Xu, K., et al. Graphene Visualizes the First Water Adlayers on Mica at Ambient Conditions. Science. 329, 1188-1191 (2010).
  5. Bustamante, C., et al. Circular DNA-molecules imaged in air by scanning force microscopy. Biochemistry. 31, 22-26 (1992).
  6. Hsueh, C., et al. Localized Nanoscopic Surface Measurements of Nickel-Modified Mica for Single-Molecule DNA Sequence Sampling. ACS Appl Mater. Interfaces. 2, 3249-3256 (2010).
  7. Pastre, D., et al. Anionic polyelectrolyte adsorption on mica mediated by multivalent cations: A solution to DNA imaging by atomic force microscopy under high ionic strengths. Langmuir. 22, 6651-6660 (2006).
  8. Woo, S., et al. Self-assembly of two-dimensional DNA origami lattices using cation-controlled surface diffusion. Nature Communications. 5, 4889 (2014).
  9. Vesenka, J., et al. Substrate preparation for reliable imaging of DNA molecules with the scanning force microscope. Ultramicroscopy. 42-44, 1243-1249 (1992).
  10. Albrechts, B., et al. Adsorption studies of DNA origami on silicon dioxide. , (2010).
  11. Sarveswaran, K., et al. Adhesion of DNA Nanostructures and DNA Origami to lithographically patterned self-assembled monolayers in Si[100]. Proc. of SPIE-Soc. Opt. Eng. 7637, 76370M-1 (2010).
  12. Kern, W., Puotien, D. A. Cleaning solutions based on hydrogen peroxide for use in silicon semiconductor technology. RCA Rev. 31, 187-206 (1970).
  13. Pillers, M., Goss, V., Lieberman, M. Electron-Beam Lithography and Molecular Liftoff for Directed Attachment of DNA Nanostructures on Silicon: Top-down Meets Bottom-up. Acc. Chem. Res. 47, 1759-1767 (2014).
  14. Saccá, B., Niemery, C. M. DNA Origami: The Art of Folding DNA. Angew. Chem. Int. Ed. 51, 58-66 (2012).
  15. Douglas, S. M., et al. Rapid prototyping of 3D DNA-origami shapes with caDNAno. Nucleic Acids Res. 37, 5001-5006 (2009).
  16. Ben-Ishay, E., et al. Designing a Bio-responsive Robot from DNA. Origami. J. Vis. Exp. (77), e50268 (2013).
  17. Woo, S., et al. Programmable molecular recognition based on the geometry of DNA nanostructures. Nature Chemistry. 3, 620-627 (2011).
  18. Schlegel, M. L., et al. Cation sorption on the muscovite (001) surface in chloride solutions using high-resolution X-ray reflectivity. Geochim. Cosmochim. Acta. 70, 3549-3565 (2006).
  19. Rasband, W. S., Howarter, J. A., et al. National Institutes of Health. Langmuir. 22, 11142-11147 (2006).
  20. Kershner, R. J., et al. Placement and orientation of individual DNA shapes on lithographically patterned surfaces. Nature Nanotechnology. 4, 557-561 (2009).
  21. Hung, A. M., et al. Large-area spatially ordered arrays of gold nanoparticles directed by lithographically confined DNA origami. Nature Nanotechnology. 5, 121-126 (2010).
  22. Sarveswaran, K., et al. et al.Adhesion of DNA nanostructure and DNA origami to lithographically patterned self-assembled monolayers on Si[100. Proc. SPIE-Int. Soc. Opt. Eng. 7637, 76370M (2010).
  23. Pillers, M. A., Lieberman, M. Thermal stability of DNA origami on mica. J. Vac. Sci. Technol. B. 32, 040602 (2014).
  24. Song, J., et al. Direct Visualization of Transient Thermal Response of a DNA. Origami. J. Am. Chem. Soc. 134, 9844 (2012).
  25. Wei, X., et al. Mapping the thermal behavior of DNA origami nanostructures. J. Am. Chem. Soc. 135 (16), 6165-6176 (2013).
  26. Hyojeong Kim, ., et al. Stability of DNA Origami Nanostructures under Diverse Chemical Environments. Chem. Mater. 26, 5265-5273 (2014).
check_url/52972?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Pillers, M. A., Shute, R., Farchone, A., Linder, K. P., Doerfler, R., Gavin, C., Goss, V., Lieberman, M. Preparation of Mica and Silicon Substrates for DNA Origami Analysis and Experimentation. J. Vis. Exp. (101), e52972, doi:10.3791/52972 (2015).

View Video