Summary

خلية الفحص مجاني لدراسة لونين Decondensation في نهاية الانقسام

Published: December 19, 2015
doi:

Summary

The molecular mechanisms of the decondensation of highly compacted mitotic chromatin are ill-defined. We present a cell-free assay based on mitotic chromatin clusters isolated from HeLa cells and Xenopus laevis egg extract that faithfully reconstitutes the decondensation process in vitro.

Abstract

During the vertebrate cell cycle chromatin undergoes extensive structural and functional changes. Upon mitotic entry, it massively condenses into rod shaped chromosomes which are moved individually by the mitotic spindle apparatus. Mitotic chromatin condensation yields chromosomes compacted fifty-fold denser as in interphase. During exit from mitosis, chromosomes have to re-establish their functional interphase state, which is enclosed by a nuclear envelope and is competent for replication and transcription. The decondensation process is morphologically well described, but in molecular terms poorly understood: We lack knowledge about the underlying molecular events and to a large extent the factors involved as well as their regulation. We describe here a cell-free system that faithfully recapitulates chromatin decondensation in vitro, based on mitotic chromatin clusters purified from synchronized HeLa cells and X. laevis egg extract. Our cell-free system provides an important tool for further molecular characterization of chromatin decondensation and its co-ordination with processes simultaneously occurring during mitotic exit such as nuclear envelope and pore complex re-assembly.

Introduction

القيطم المورق استخراج البيض هو أداة قوية والتطبيقية على نطاق واسع لدراسة الأحداث الخلوية المعقدة في بساطة مقايسة خالية من الخلايا. منذ أول وصف من قبل Lohka وMasui 1 كانت قد استخدمت على نطاق واسع لدراسة العمليات الإنقسامية مثل لونين التكثيف والتجمع المغزل المغلف انهيار النووي ولكن أيضا وسائل النقل نووي هيولي 5 أو 6 تكرار الحمض النووي. الأحداث الجارية في نهاية الانقسام، اللازمة لإعادة تشكيل نواة interphasic مثل إصلاح الغلاف النووي والمسام النووي إعادة التجميع المعقدة هي أقل بكثير يفهم مقارنة أحداث الإنقسامية في وقت مبكر ولكن يمكن دراستها على نحو مماثل باستخدام القيطم استخراج البيض 7. أنشأنا مؤخرا مقايسة على أساس القيطم استخراج البيض لدراسة ونين decondensation في نهاية الانقسام وهي عملية التحقيق في إطار ذلك ينتظر طنهاية الخبر توصيف مفصل.

في metazoans، ويتم تكثيف لونين للغاية في دخول الإنقسامية من أجل القيام بأمانة الفصل بين المادة الوراثية. للتأكد من أن لونين يمكن الوصول إليها للتعبير عن الجينات وتكرار الحمض النووي أثناء الطور البيني، فإنه يحتاج إلى أن إلغاء ضغط في نهاية الانقسام. في الفقاريات، لونين هو ما يصل إلى خمسين ضعفا أكثر كبس خلال الانقسام مقارنة البيني على النقيض من الخمائر حيث الضغط الإنقسامية عادة ما يكون أقل من ذلك بكثير، على سبيل المثال، فقط شقين في S. الخباز 10. وقد الفقاريات لونين decondensation درس معظمهم في سياق إعادة تنظيم DNA الحيوانات المنوية بعد الإخصاب البيض. A الآلية الجزيئية، التي nucleoplasmin، وهو بروتين الخلية البيضية وفيرة، ويتبادل protamines الحيوانات المنوية محددة لالهستونات H2A وH2B المخزنة في البيض. تم توضيح هذه العملية أيضا باستخدام القيطم استخراج البيض 11 و 12. ومع ذلك، فإن التعبيرمن nucleoplasmin يقتصر على البويضات 13 و ونين الإنقسامية لا تحتوي على هذه protamines الحيوانات المنوية الخاصة. لذا لونين decondensation في نهاية الانقسام هو nucleoplasmin مستقلة 8.

لفي المختبر decondensation رد فعل ونحن توظيف استخراج الناتجة عن تنشيط X. البيض المورق وتجمعات لونين عزل من خلايا هيلا متزامنة. علاج البيض مع حامل الأيون الكالسيوم يحاكي إطلاق الكالسيوم في البويضة الناتجة عن دخول الحيوانات المنوية أثناء الإخصاب. موجة الكالسيوم مشغلات استئناف دورة الخلية والبيضة، الذي اعتقل في الطورية الثانية من الانقسام الاختزالي، يتقدم إلى البيني الأول 14. ولذلك، مقتطفات البيض إعداد النموذج تنشيط البيض تمثل الإنقسامية الدولة مخرج / البيني وهي المختصة للحث على أحداث محددة للخروج الإنقسامية مثل decondensation لونين، المغلف النووي والمسام إصلاح معقدة. لعزل الفصل الإنقساميةromatin مجموعات استخدمنا صيغة معدلة بشكل طفيف من البروتوكول التي نشرتها جاسر وLaemmli 15، حيث يتم الإفراج مجموعات كروموسوم التي تحلل من خلايا هيلا متزامنة في الانقسام ومعزولة في البوليامين تحتوي على مخازن من قبل centrifugations الانحدار.

Protocol

الإنقسامية لونين عزل الكتلة من الخلايا هيلا 1. الاستعدادات حلول الثقافة الخلية <li style=";text-align:right…

Representative Results

الاعتماد وقت رد الفعل decondensation ويبين الشكل 1 دورة الوقت النموذجي للمقايسة decondensation. الكتلة من الكروموزومات واضحة في بداية رد فعل decondenses ويدمج في عملية واحدة، وجولة ونواة سلسة. عندما يتم استبدال استخراج البيض م…

Discussion

القيطم المورق مقتطفات البيض هي أداة مفيدة جدا لإنتاج بأمانة العمليات الخلوية في المختبر، وكان يستخدم هذا النظام بنجاح في توصيف دورة الخلية وانقسام الخلية أحداث 3،5،6،17. ونظرا إلى مخازن كبيرة من المكونات النووية المحجوزة في البيض خلال oogenesis وع?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل من قبل المؤسسة الألمانية للبحوث وERC (AN377 / 3-2 وCHROMDECON 309528 لWA) وعلى زمالة الدكتوراه من بورنغير إنغلهايم فون إلى AKS الشكل 1 و 2 وأعيد طبعه من التطور الخلوي 31 (3)، Magalska وآخرون، وظيفة ATPases RuvB تشبه في لونين decondensation في نهاية الانقسام، 305-318، 2014 بعد الحصول على اذن من السيفير.

Materials

spermine tetrahydrochloride Fluka analytical 85610-25G
spermidine trihydrochloride Sigma  S2501-5G
high-purity digitonin Millipore 300410-1GM toxic
PMSF Applichem A0999,0100 toxic
thymidine Calbiochem 6060
nocodazole Calbiochem 487928 toxic
37 % formaldehyde solution Roth 7398-1 toxic
trypan blue solution (0.4%) Sigma T8154 toxic
1,4-dithiothreitol (DTT) Roth 6908.2
AEBSF hydrochloride Applichem A1421,0001
pepstatin Roth 2936.1/2/3
leupeptin Roth CN334
aprotinin Roth A162.3
Percoll (colloidal silica particles solution) GE Healthcare 17-0891-01
glutamine Gibco 25030-024
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140-122
75 cm² tissue culture flasks Greiner Bio-one 658175
heat-inactivated fetal bovine serum (FBS) Gibco 10500-064
Homogenizer (40 mL tissue grinder) Wheaton 357546
Neubauer chamber Assistent 441/1
 Oak Ridge Centrifuge Tubes, polycarbonate (50 ml) Nalgene 3118-0050
100 µm cell strainer, nylon BD Falcon 352360
cytochalasin B Applichem A7657,0010 toxic
cycloheximide Roth 8682.3 toxic
L-cystein Merck 1,028,381,000
hCG available as Ovogest MSD 1431593
PMSG available as Intergonan MSD 1431015
A23187 (mixed calcium-magnesium-salt) Enzo ALX-450-002-M010 toxic
syringe needles (1.20 x 40 mm, 18 G x 1 1/2") Braun 4665120
ATP Serva 10920.03
GTP, 2 Na x 3 H20 Roth K056.1/2/3/4
creatine phosphat disodium salt Calbiochem 2380
creatine phosphokinase Sigma C3755-35KU
DMAP Sigma D2629-1G
DAPI  Roche 10236276001
PFA Sigma P-6148 toxic
centrifugation tubes for TLA 100 (7 x 10 mm, 5/16 x 13/16 in.) Beckman Coulter 343775
"Cell-Saver" (tips with wide opening, 1000 µL) Biozym 729065
50 % glutaraldehyde solution, grade I Sigma alderich G7651-10 mL toxic
0.1 % (w/v) poly-L-lysine solution Sigma P8920-100 mL
flat-bottom tubes (6 mL, 16.0/55 mm) Greiner Bio-one 145211
Vectashield mounting medium Vector laboratories H1000
tubes for TLA120 (11 x 34 mm, 7/16 x 1 3/8 in.) Beckman Coulter 343778
"Cell-Saver" (tips with wide opening, 200 µL) Biozym 729055
12 mm coverslips Thermo Scientific 0784 #1

References

  1. Lohka, M. J., Masui, Y. Formation in vitro of sperm pronuclei and mitotic chromosomes induced by amphibian ooplasmic components. Science. 220, 719-721 (1983).
  2. de la Barre, A. E., Robert-Nicoud, M., Dimitrov, S. Assembly of mitotic chromosomes in Xenopus egg extract. Methods Mol Biol. 119, 219-229 (1999).
  3. Maresca, T. J., Heald, R. Methods for studying spindle assembly and chromosome condensation in Xenopus egg extracts. Methods Mol Biol. 322, 459-474 (2006).
  4. Galy, V., et al. A role for gp210 in mitotic nuclear-envelope breakdown. J Cell Sci. 121, 317-328 (2008).
  5. Chan, R. C., Forbes, D. I. In vitro study of nuclear assembly and nuclear import using Xenopus egg extracts. Methods Mol Biol. 322, 289-300 (2006).
  6. Gillespie, P. J., Gambus, A., Blow, J. J. Preparation and use of Xenopus egg extracts to study DNA replication and chromatin associated proteins. Methods. 57, 203-213 (2012).
  7. Gant, T. M., Wilson, K. L. Nuclear assembly. Annu Rev Cell Dev Biol. 13, 669-695 (1997).
  8. Magalska, A., et al. RuvB-like ATPases function in chromatin decondensation at the end of mitosis. Developmental Cell. 31, 305-318 (2014).
  9. Belmont, A. S. Mitotic chromosome structure and condensation. Curr Opin Cell Biol. 18, 632-638 (2006).
  10. Lavoie, B. D., Tuffo, K. M., Oh, S., Koshland, D., Holm, C. Mitotic chromosome condensation requires Brn1p, the yeast homologue of Barren. Mol Biol Cell. 11, 1293-1304 (2000).
  11. Philpott, A., Leno, G. H. Nucleoplasmin remodels sperm chromatin in Xenopus egg extracts. Cell. 69, 759-767 (1992).
  12. Philpott, A., Leno, G. H., Laskey, R. A. Sperm decondensation in Xenopus egg cytoplasm is mediated by nucleoplasmin. Cell. 65, 569-578 (1991).
  13. Burglin, T. R., Mattaj, I. W., Newmeyer, D. D., Zeller, R., De Robertis, E. M. Cloning of nucleoplasmin from Xenopus laevis oocytes and analysis of its developmental expression. Genes Dev. 1, 97-107 (1987).
  14. Whitaker, M. Calcium at fertilization and in early development. Physiological reviews. 86, 25-88 (2006).
  15. Gasser, S. M., Laemmli, U. K. Improved methods for the isolation of individual and clustered mitotic chromosomes. Exp Cell Res. 173, 85-98 (1987).
  16. Eisenhardt, N., Schooley, A., Antonin, W. Xenopus in vitro assays to analyze the function of transmembrane nucleoporins and targeting of inner nuclear membrane proteins. Methods Cell Biol. 122, 193-218 (2014).
  17. Wignall, S. M., Deehan, R., Maresca, T. J., Heald, R. The condensin complex is required for proper spindle assembly and chromosome segregation in Xenopus egg extracts. J Cell Biol. 161, 1041-1051 (2003).
  18. Forbes, D. J., Kirschner, M. W., Newport, J. W. Spontaneous formation of nucleus-like structures around bacteriophage DNA microinjected into Xenopus eggs. Cell. 34, 13-23 (1983).
  19. Hartl, P., Olson, E., Dang, T., Forbes, D. J. Nuclear assembly with lambda DNA in fractionated Xenopus egg extracts: an unexpected role for glycogen in formation of a higher order chromatin intermediate. J Cell Biol. 124, 235-248 (1994).
  20. Sandaltzopoulos, R., Blank, T., Becker, P. B. Transcriptional repression by nucleosomes but not H1 in reconstituted preblastoderm Drosophila chromatin. EMBO J. 13, 373-379 (1994).
  21. Ulbert, S., Platani, M., Boue, S., Mattaj, I. W. Direct membrane protein-DNA interactions required early in nuclear envelope assembly. J Cell Biol. 173, 469-476 (2006).
  22. Zhang, C., Clarke, P. R. Chromatin-independent nuclear envelope assembly induced by Ran GTPase in Xenopus egg extracts. Science. 288, 1429-1432 (2000).
  23. Paulson, J. R. Isolation of chromosome clusters from metaphase-arrested HeLa cells. Chromosoma. 85, 571-581 (1982).
  24. Ramadan, K., et al. Cdc48/p97 promotes reformation of the nucleus by extracting the kinase Aurora B from chromatin. Nature. 450, 1258-1262 (2007).
check_url/53407?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Schellhaus, A. K., Magalska, A., Schooley, A., Antonin, W. A Cell Free Assay to Study Chromatin Decondensation at the End of Mitosis. J. Vis. Exp. (106), e53407, doi:10.3791/53407 (2015).

View Video