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Article de méthode

Immunocoloration phospho-épitopes dans ciliées organes de Mont entiers embryons de poissons zèbres

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DOI :

10.3791/53747

19 février 2016

Dans cet article

Résumé

Techniques sont décrites à immunocoloration phospho-épitopes dans embryons de poisson zèbre entiers et ensuite procéder à deux couleurs confocal fluorescent localisation dans des structures cellulaires aussi petites que les cils primaires. Les techniques de fixation et d'imagerie peuvent définir l'emplacement et de la cinétique de l'apparition ou de l'activation de protéines spécifiques.

Résumé

La prolifération rapide des cellules, l'expression tissu-spécifique des gènes et de l'émergence de réseaux de signalisation caractérisent le développement embryonnaire précoce de tous les vertébrés. La cinétique et l'emplacement des signaux - même à l'intérieur des cellules individuelles - dans l'embryon en développement complète l'identification des gènes du développement importants. immunocoloration techniques sont décrites qui ont été montré pour définir les cinétiques de signaux intracellulaires et des animaux entiers dans des structures aussi petites que les cils primaires. Les techniques de fixation, d'imagerie et de traitement des images en utilisant un laser à balayage composé microscope confocal peut être complété en aussi peu que 36 heures.

Le poisson zèbre (Danio rerio) est un organisme souhaitable pour les enquêteurs qui cherchent à mener des études dans une espèce de vertébré qui est abordable et pertinente à la maladie humaine. KO ou passes rabattues génétiques doivent être confirmées par la perte du produit protéique réelle. Cette confirmation de la perte de protéinespeut être réalisée en utilisant les techniques décrites ici. Des indices dans les voies de signalisation peuvent également être déchiffrés en utilisant des anticorps qui sont réactifs avec des protéines qui ont été modifiées après la traduction par phosphorylation. La préservation et l'optimisation de l'état phosphorylée d'un épitope est donc essentiel de cette détermination et est accompli par ce protocole.

Cette étude décrit les techniques pour fixer des embryons au cours des premières 72 heures de développement et de co-localiser une variété d'épitopes pertinents avec cils dans des vésicules (KV) de l'Kupffer, le rein et l'oreille interne. Ces techniques sont simples, ne nécessitent pas de dissection et peut être complété en une période relativement courte de temps. Projection des piles d'images confocale en une seule image est un moyen utile de présenter ces données.

Introduction

Les techniques décrites ici sont le résultat d’études qui ont cherché à définir des cibles en aval des signaux Ca2+ lors d’événements qui se produisent au cours du développement précoce, y compris la fécondation, la gastrulation, la somitogenèse et la formation du tronc, de l’œil, du cerveau et des organes. 1-3 Les découvertes initiales de la signalisation embryonnaire Ca2+ dépendaient de l’utilisation d’indicateurs Ca2+ naturels et modifiés, tels que l’aequorin4 et le fura-2. 5 Même avec la technologie actuelle, la détection d’élévations transitoires de Ca2+ nécessite des outils analytiques ....

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Protocole

Les procédures de poisson zèbre dans ce protocole ont été approuvés par la Commission institutionnelle animal soin et l'utilisation (IACUC) à l'Université Virginia Commonwealth.

1. Préparation des réactifs

  1. 4% PFA / PBS. Peser 8 g de paraformaldehyde (PFA) dans la hotte. Alors qu'il était encore dans la hotte, dissoudre le PFA sec ~ 80 ml ​​de H 2 O distillée sous agitation et chauffage à 50 ° C. Tout en remuant, ajouter 3 - 10 gouttes de 1N NaOH frais jusqu'à ce que PFA est complètement dissous et une solution précise. Retirer du feu et ajouter 100 ml 2x tampon phosphate salin (PBS). Porter le volume ....

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Résultats

Conditions optimales pour la visualisation de phospho-épitopes

Des procédés décrivant l'immunolocalisation des epitopes protéiques dans embryons de poisson zèbre ont été relativement peu par rapport à celles de localisation d'ARNm par hybridation in situ. Fixateurs utilisés dans la localisation des épitopes des protéines dans les cellules ciliées des embryons de poisson zèbre ont inclus 4% PFA.......

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Discussion

La méthode / méthanol PFA a été développé dans ce laboratoire avec l'objectif principal d'optimiser la immunolocalisation du -CaMK-II épitope phospho-T 287 au cours du développement du poisson zèbre. Cette méthode localisée succès P-CaMK-II lors de la formation de plusieurs organes ciliées dont le KV de poisson zèbre, 12 oreille interne 14 et les reins. 13 en particulier au stade de KV, cette technique était nécessaire. Le succès de cette méthode est probablement due à.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu'ils ont aucun intérêt financier concurrentes.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par la National Science Foundation subvention IOS-0817658.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
1-phényl-2-thiourée (PTU)SigmaP-7629Solution mère à 0,12 %. Diluer 1:40 dans l’eau du système
Alexa488 anti-souris IgGLife TechnologiesA11001Polyclonal de chèvre, utilisation à 1:500
Alexa488 anti-lapin IgGLife TechnologiesA11008Polyclonal de chèvre, utilisation à 1:500
Alexa488 phalloïdineLife TechnologiesA12379Se lie préférentiellement à l’actine F
Alexa568 anti-souris IgGLife TechnologiesA11004Polyclonal de chèvre, utilisation à 1:500
Alexa568 anti-lapin IgGLife TechnologiesA11011Polyclonal de chèvre, utilisation à 1:500
anti-acétylé α ;-tubulineSigmaT7451Souris monoclonale, utilisation à 1:500
anti-phospho-T287 CaMK-IIEMD Millipore06-881Polyclonal de lapin, utilisation à 1:20
anti-total CaMK-IIBD Biosciences611292Souris monoclonale, utilisation à 1:20
ÉthanolFisherS96857Qualité laboratoire, 95 % dénaturé
PincesOutils de sciences fines11252-20Dumont #5
Lamelles en verreVWR16004-330#1  ; épaisseur
Lames de microscope en verreFisher12-550-15Lames en verre standard
MéthanolFisherA411Conserver au congélateur
Tubes de microcentrifugationVWR20170-038Tubes bouchés, non stériles
Sérum de chèvre normalLife Technologies16210-064Tubes aliquote de 1 ml, conserver au congélateur
ParaformaldéhydeSigmaP-6148Qualité réactif, cristallin
Solution saline tamponnée au phosphate (PBS)Qualité Biologique119-069-13110x solution mère ou fabriquée en laboratoire
Triton X-100SigmaBP-15110 % solution dans l’eau, stocker chez RT
Tween-20Life Technologies8511310 % solution dans l’eau, stocker chez RT
Compoundmicroscope NikonE-600Monture sur table sans vibration
C1 Plus deux lasers confocal à balayage NikonC1 PlusExécuté par le programme EZ-C1, mais les mises à niveau utilisent " Éléments"

Références

  1. Webb, S. E., Miller, A. L. Calcium signalling during embryonic development. Nat Rev Mol Cell Biol. 4, 539-551 (2003).
  2. Webb, S. E., Miller, A. L. Ca2+ signalling and early embryonic patterning during zebrafish development. Clin Exp Pharmacol Physiol.

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Réimpressions et autorisations

Mots-clés

Microscopie confocaleFixation au PFA et au m thanolTubuline ac tyl ephospho CaMKIIV sicule de KupfferImagerie sur montage entierBalayage laser