Most bacterial infections produce a biofilm. By virtue of their environment, biofilm associated bacteria are often phenotypically drug resistant. Novel antibacterial molecules that kill bacteria in biofilms are thus a high priority. We establish an assay to quickly screen for antimicrobial compounds that are effective at eradicating biofilms.
Most pathogenic bacteria are able to form biofilms during infection, but due to the difficulty of manipulating and assessing biofilms, the vast majority of laboratory work is conducted with planktonic cells. Here, we describe a peg plate biofilm assay as performed with Staphylococcus aureus. Bacterial biofilms are grown on pegs attached to a 96-well microtiter plate lid, washed through gentle submersion in buffer, and placed in a drug challenge plate. After subsequent incubation they are again washed and moved to a final recovery plate, in which the fluorescent dye resazurin serves as a viability indicator. This assay offers greatly increased ease-of-use, reliability, and reproducibility, as well as a wealth of data when conducted as a kinetic read. Moreover, this assay can be adapted to a medium-throughput drug screening approach by which an endpoint fluorescent readout is taken instead, offering a path for drug discovery efforts.
Patogene mikroorganismer kan danne biofilm in vivo fører til ikke-akutte kroniske infektioner 1. Biofilm-associeret infektion er en alvorlig risikofaktor for medicinske procedurer, der involverer implantation af fremmedlegemer (f.eks kunstige ben udskiftninger brystimplantater) eller installation af luftrør rør eller urinkatetre 2. I disse sammenhænge, antiinfektiva er næsten altid nødvendigt som biofilm-baserede infektioner sjældent blokerede på egen hånd, selv i immunkompetente individer. Staphylococcus aureus er en af de hyppigst forekommende patogener impliceret i biofilm-relaterede komplikationer der opstår under brug af invasive medicinsk udstyr 3.
Desværre er den meget karakter af biofilm som en beskyttende barriere gør dem mere modstandsdygtige over for behandling end planktoniske celler 1,4, og evaluering af forudsagt klinisk effekt er en kritisk del af både indledendeudvikling af lægemidler samt resistens overvågning. Der er stigende erkendelse af, at laboratorieforhold, der fokuserer på planktoniske kulturer, ikke kan trofast repræsentere virkelige verden sygdom 5. Yderligere forværrer problemet, replikering af biofilm fænotyper er vanskelig, og eksisterende biofilm modeller er kedelig og lider høj inter- og intra-assay 6 variabilitet. Således mange forskere gennem nødvendighed, standard til planktoniske celle analyser af narkotika modtagelighed, derved potentielt forsømmer et vigtigt aspekt af bakteriel virulens og sygdom.
Her beskriver vi protokol for analyse bakterier, specielt S. aureus, i præ-dyrket biofilm anvendelse af en 96-brønd baseret biofilm systemet 7,8. Mens protokollen for biofilm dannelse og udfordring følger væsentlige fabrikantens anbefalinger, præsenterer vi en alternativ information-rige metode til kvantificering af levedygtigheden af biofilm efter udfordring. Kort beskrevet bakterier dyrkes i stangen plade, hvor biofilm dannes på de fremspringende tappe fastgjort til pladen låg. Efter biofilmdannelse, er tappene forsigtigt dyppet i brønde i en frisk plade fyldt med PBS for at fjerne planktoniske celler. PEG-låg, med biofilm fastgjort, overføres til en ny udfordring pladen, som indeholdt forskellige koncentrationer af antibiotika, der skal analyseres. Efter en anden inkubation låg fjernes igen, vasket og overført til en genopretning plade indeholdende Resazurinfarvestof, hvor de underkastes en afsluttende inkubation. Resazurin konvertering kan optages kinetisk eller taget som et endepunkt læsning efter en defineret restitutionsperiode. Denne farvestofbaseret metode til kvantificering af levedygtigheden af biofilm adskiller sig væsentligt fra de kedelige CFU (kolonidannende enheder) tælle-metode, der er beskrevet i den oprindelige protokol 7. OD 600 målinger af lægemidlet udfordring plade og tilsætte Resazurin konvertering kinetik tjene som levedygtighed læstouts af planktoniske og biofilm celler henholdsvis tilbyder en hurtig, pålidelig, indholdsrigt og teknisk enkel analyse til biofilm overlevelse.
Her har vi beskrevet et modificeret biofilm assay til bestemmelse af aktivitet af testede inhibitorer på S. aureus biofilm med fokus på den metaboliske tilstand af biofilm forbundet celler. Mens den beskrevne biofilm initierings- og provokationseksponeringen meste efterlignede producentens anbefalinger, anvendelse af Resazurinfarvestof at påvise og bestemme biofilm-associerede celler som overlever en 24 hr inhibitor udfordring dramatisk simplificerer den fremgangsmåde af celleindvinding (via vandbad lydbeha…
The authors have nothing to disclose.
We thank Saran Kupul for technical assistance. This work was supported in part by NIH grant R01-AI104952 to FW. Further support was provided by the University of Alabama at Birmingham (UAB) Center for AIDS Research (CFAR), an NIH funded program (P30 AI027767) that was made possible by the following NIH Institutes: NIAID, NIMH, NIDA, NICHD, NHLDI, NIA.
Mueller-Hinton Medium | Oxoid | CM0405 | Follow recommendations of manufacturer |
RPMI-medium | Corning | 17-105-CV | |
CRPMI | Ref 9 | RPMI-1640 medium chelexed for 1h with Chelex 100 resin and then supplemented with 10% unchelexed RPMI-1640 | |
Chelex 100 Resin | Bio Rad | 142-2822 | |
MBEC-plates | Innovotech | 19111 | |
Resazurin Sodium Salt | Sigma | R7017 | 800µg/ml in DI water Filter sterile |
Micro Plate Shaking Platform | Heidolph Titramax 1000 | ||
Cytation 3 Plate Reader | Biotek | ||
Gen5 software | Biotek | Recording and analysis of resazurin conversion | |
Neocuproine | Sigma | N1501 | prepare 10 mM stock in 100% Ethanol, store at -80ºC |
Copper sulfate | Acros Organics | 7758-99-8 | prepare a 100 mM stock solution in water, store at 4ºC |
Cu-Neocuproine | Self-Made | Generated by mixing equal molarities of neocuproine and copper sulfate. Mix was diluted in CRPMI medium to desired concentration. | |
Gentamicin | Sigma | G3632-1G |