Summary

Targeting Biofilm Associated<em> Staphylococcus aureus</em> Bruke Resazurin Basert Narkotika mottakelighet analyse

Published: May 05, 2016
doi:

Summary

Most bacterial infections produce a biofilm. By virtue of their environment, biofilm associated bacteria are often phenotypically drug resistant. Novel antibacterial molecules that kill bacteria in biofilms are thus a high priority. We establish an assay to quickly screen for antimicrobial compounds that are effective at eradicating biofilms.

Abstract

Most pathogenic bacteria are able to form biofilms during infection, but due to the difficulty of manipulating and assessing biofilms, the vast majority of laboratory work is conducted with planktonic cells. Here, we describe a peg plate biofilm assay as performed with Staphylococcus aureus. Bacterial biofilms are grown on pegs attached to a 96-well microtiter plate lid, washed through gentle submersion in buffer, and placed in a drug challenge plate. After subsequent incubation they are again washed and moved to a final recovery plate, in which the fluorescent dye resazurin serves as a viability indicator. This assay offers greatly increased ease-of-use, reliability, and reproducibility, as well as a wealth of data when conducted as a kinetic read. Moreover, this assay can be adapted to a medium-throughput drug screening approach by which an endpoint fluorescent readout is taken instead, offering a path for drug discovery efforts.

Introduction

Patogene mikrober kan danne biofilmer in vivo fører til ikke-akutte kroniske infeksjoner 1. Biofilm-assosiert infeksjon er en alvorlig risikofaktor for medisinske prosedyrer som involverer implantering av fremmedlegemer (f.eks kunstig bein erstatninger, brystimplantater) eller installasjon av trakealtubers eller urinkateter 2. I disse sammenhenger, er anti-infektiv terapi nesten alltid nødvendig som biofilm-baserte infeksjoner er sjelden fjernet på egen hånd, selv i immunkompetente personer. Staphylococcus aureus er en av de mest hyppigst observerte patogener innblandet i biofilm-relaterte komplikasjoner som oppstår under bruk av invasiv medisinsk utstyr 3.

Dessverre, selve innholdet av biofilm som en beskyttende barriere som gjør dem mer motstandsdyktige mot behandling enn planktoniske celler 1,4, og evaluering av forventet klinisk effekt er en viktig del av både innledendelegemiddelutvikling samt resistens overvåking. Det er økende erkjennelse av at laboratorieforhold, fokusert på planktoniske kulturer, kanskje ikke trofast representerer reell sykdom fem. Ytterligere compounding problemet, er replikering av biofilm fenotyper vanskelig, og eksisterende biofilm modeller er kjedelige og lider av høyt inter- og intra-assay 6 variabilitet. Dermed mange forskere, gjennom nødvendighet, som standard planktoniske celleanalyser av resistens, for derved potensielt å neglisjere et viktig aspekt av bakteriell virulens og sykdom.

Her beskriver vi protokollen for analyse av bakterier, spesielt S. aureus, i pre-vokst biofilmer benytte en 96-brønn basert biofilm system 7,8. Mens protokollen for biofilmdannelse og utfordring følger i hovedsak anbefaling fra produsenten, presenterer vi en alternativ informasjonsrikt metodikk for kvantifisering av levedyktighet av biofilm etter utfordring. I korthet bakterier er dyrket i pluggen plate, hvor biofilmer dannes på de utstikkende tapper som er festet til platen lokket. Etter at biofilmdannelse blir pinnene forsiktig dyppet i brønner i en ny plate som er fylt med PBS for å fjerne planktoniske celler. PEG-lokk, med biofilm festet, blir overført til en ny utfordring plate, inneholdende forskjellige konsentrasjoner av antibiotika skal bli analysert. Etter en andre inkubasjon, blir lokkene igjen fjernet, vasket og overført til en plate inneholdende gjenvinning av Resazurin fargestoff, hvor de gjennomgår en endelig inkubering. Resazurin konvertering kan tas opp kinetisk eller tas som et endepunkt lesing etter en definert utvinning perioden. Dette dye-basert metode for å kvantifisere levedyktighet av biofilm avviker betydelig fra de kjedelige CFU (colony forming units) teller basert metodikk beskrevet i den opprinnelige protokollen 7. OD 600 målinger av medikamentet utfordringen platen og resazurin konverteringskinetikk tjene som levedyktighet lestouts av planktoniske og biofilmceller, henholdsvis, og tilbyr en rask, pålitelig, informasjonsrike og teknisk enkel analyse for biofilm overlevelse.

Protocol

1. Biofilm Innvielse Dyrk en kultur av biofilm produserende organisme i et næringsrikt medium. Vaksinere Staphylococcus aureus stamme Newman i 10 ml Mueller-Hinton medium fra en glyserol lager. Utføre alt arbeid med håndtering av S. aureus med hansker og innen biosikkerhet skap. Inkuber i 16 timer ved 37 ° C på en rotasjonsrister (100-200 rpm). Bestemme OD 600 av kulturen ved hjelp av et spektrofotometer, og en standard kuvette (banelengde: 1 cm). <li…

Representative Results

Resazurin-analysen er følsom nok til å detektere meget pålitelig måte få levedyktige celler som er i stand til å replikere i medikamentfritt medium etter utfordring. I denne metoden, definerer vi den minimale biofilmen utrydd konsentrasjon som den laveste konsentrasjon ved hvilken ingen resazurin omdannelse sees innen 24 timer. Den resazurin analysen er avhengig av oksidative molekyler som finnes i metabolsk aktive celler som omdanner fargestoff farge fra blått til rosa. Dye omdan…

Discussion

Her har vi beskrevet en modifisert biofilm-assay for bestemmelse av aktiviteten av testede inhibitorer på S. aureus biofilmer med fokus på den metabolske tilstand av biofilm forbundet celler. Mens den beskrevne biofilm initiering og duell prosedyrer for det meste etterlignet produsentens anbefalinger, bruk av Resazurin fargestoff for å påvise og kvantifisere biofilm-assosierte celler som overlever en 24-timers-inhibitor utfordring forenkler dramatisk den anbefalte fremgangsmåten i cellegjenvinning (via van…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Saran Kupul for technical assistance. This work was supported in part by NIH grant R01-AI104952 to FW. Further support was provided by the University of Alabama at Birmingham (UAB) Center for AIDS Research (CFAR), an NIH funded program (P30 AI027767) that was made possible by the following NIH Institutes: NIAID, NIMH, NIDA, NICHD, NHLDI, NIA.

Materials

 Mueller-Hinton Medium Oxoid CM0405 Follow recommendations of manufacturer
RPMI-medium Corning  17-105-CV
CRPMI Ref 9 RPMI-1640 medium chelexed for 1h with Chelex 100 resin and then supplemented with 10% unchelexed RPMI-1640
Chelex 100 Resin Bio Rad 142-2822
MBEC-plates Innovotech 19111
Resazurin Sodium Salt Sigma R7017 800µg/ml in DI water     Filter sterile
Micro Plate Shaking Platform  Heidolph Titramax 1000
Cytation 3 Plate Reader Biotek
Gen5 software Biotek Recording and analysis of resazurin conversion
Neocuproine Sigma N1501  prepare 10 mM stock in 100% Ethanol, store at -80ºC
Copper sulfate Acros Organics 7758-99-8 prepare a 100 mM stock solution in water, store at 4ºC
Cu-Neocuproine Self-Made Generated by mixing equal molarities of neocuproine and copper sulfate. Mix was diluted in CRPMI medium to desired concentration.
Gentamicin Sigma G3632-1G

References

  1. Bjarnsholt, T., Ciofu, O., Molin, S., Givskov, M., Hoiby, N. Applying insights from biofilm biology to drug development – can a new approach be developed. Nat Rev Drug Discov. 12, 791-808 (2013).
  2. Song, Z., et al. Prosthesis infections after orthopedic joint replacement: the possible role of bacterial biofilms. Orthop Rev (Pavia). 5, 65-71 (2013).
  3. Hall-Stoodley, L., Costerton, J. W., Stoodley, P. Bacterial biofilms: from the natural environment to infectious diseases). Nat Rev Microbiol. 2, 95-108 (2004).
  4. Bordi, C., de Bentzmann, S. Hacking into bacterial biofilms: a new therapeutic challenge. Ann Intensive Care. 1, 19 (2011).
  5. Fux, C. A., Shirtliff, M., Stoodley, P., Costerton, J. W. Can laboratory reference strains mirror ‘real-world’ pathogenesis?. Trends Microbiol. 13, 58-63 (2005).
  6. Kwasny, S. M., Opperman, T. J. Static biofilm cultures of Gram-positive pathogens grown in a microtiter format used for anti-biofilm drug discovery. Curr Protoc Pharmacol. Chapter 13, Unit 13A 18 (2010).
  7. Ceri, H., et al. The MBEC Assay System: multiple equivalent biofilms for antibiotic and biocide susceptibility testing. Methods Enzymol. 337, 377-385 (2001).
  8. Ceri, H., et al. The Calgary Biofilm Device: new technology for rapid determination of antibiotic susceptibilities of bacterial biofilms. J Clinical Microbiol. 37, 1771-1776 (1999).
  9. Baker, J., et al. Copper stress induces a global stress response in Staphylococcus aureus and represses sae and agr expression and biofilm formation. Appl Environ Microbiol. 76, 150-160 (2010).
  10. Haeili, M., et al. Copper complexation screen reveals compounds with potent antibiotic properties against methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother. 58, 3727-3736 (2014).
  11. O’Brien, J., Wilson, I., Orton, T., Pognan, F. Investigation of the Alamar Blue (resazurin) fluorescent dye for the assessment of mammalian cell cytotoxicity. Eur J Biochem. 267, 5421-5426 (2000).
  12. Mah, T. F. Establishing the minimal bactericidal concentration of an antimicrobial agent for planktonic cells (MBC-P) and biofilm cells (MBC-B). J Vis Exp. (83), e50854 (2014).
  13. Junker, L. M., Clardy, J. High-throughput screens for small-molecule inhibitors of Pseudomonas aeruginosa biofilm development. Antimicrob Agents Chemother. 51, 3582-3590 (2007).
  14. Shah, D., et al. Persisters: a distinct physiological state of E. coli. BMC Microbiol. 6, 53 (2006).
  15. Lewis, K. Riddle of biofilm resistance. Antimicrob Agents Chemother. 45, 999-1007 (2001).
check_url/53925?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Dalecki, A. G., Crawford, C. L., Wolschendorf, F. Targeting Biofilm Associated Staphylococcus aureus Using Resazurin Based Drug-susceptibility Assay. J. Vis. Exp. (111), e53925, doi:10.3791/53925 (2016).

View Video