Summary

Cellule staminali base Immunità Engineered contro l'infezione da HIV nel modello umanizzato mouse

Published: July 02, 2016
doi:

Summary

This protocol describes the methods in constructing a humanized bone-marrow/liver/thymus mouse model with stem cell-based engineered immunity against HIV infection.

Abstract

Con il rapido sviluppo di terapie geniche a base di cellule staminali contro l'HIV, non vi è necessità di premere un modello animale per studiare la differenziazione ematopoietiche e la funzione immunitaria delle cellule geneticamente modificate. Il umanizzato midollo osseo / Fegato / Thymus (BLT) topo modello consente la piena ricostituzione di un sistema immunitario umano in periferia, che comprende le cellule T, cellule B, cellule NK e monociti. L'impianto del timo umano consente anche per la selezione timica delle cellule T nel tessuto del timo autologo. Oltre allo studio dell'infezione da HIV, il modello rappresenta un potente strumento per studiare la differenziazione, lo sviluppo e la funzionalità delle cellule derivate da cellule staminali ematopoietiche (CSE). Qui descriviamo la costruzione di umanizzato diabetici non obesi (NOD) -Grave combinato immunodeficienti (SCID) -Comune gamma catena knockout (c γ – / -) topo Hong osseo osseo / Fegato / Thymus (NSG-BLT) con CSE trasdotte con CD4 recettore per l'antigene chimerico (CD4CAR)vettore lentivirus. Abbiamo dimostrato che il CD4CAR CSE può differenziarsi con successo in molteplici linee e hanno attività anti-HIV. L'obiettivo dello studio è quello di dimostrare l'uso del modello di topo NSG-BLT come un modello in vivo per l'immunità ingegnerizzato contro l'HIV. Vale la pena notare che, poiché viene utilizzato lentivirus e tessuti umani, esperimenti e interventi chirurgici devono essere eseguiti in una classe II armadio biosicurezza in un livello di biosicurezza 2 (BSL2) con particolari precauzioni (BSL2 +) struttura.

Introduction

Nonostante il successo del combinato terapia anti-retrovirale, l'infezione da HIV è ancora una malattia per tutta la vita. La risposta immunitaria cellulare contro l'HIV gioca un ruolo molto importante nel controllo della replicazione di HIV. I recenti progressi nella manipolazione di cellule staminali ha permesso per il rapido sviluppo di approcci di terapia genica per l'HIV trattamento 1-3. Di conseguenza, è importante avere un modello animale adeguato che permette studio in vivo dell'efficacia di terapie cellulari contro l'HIV.

Utilizzo di HIV in modelli animali è complicata dal fatto che il virus infetta soltanto cellule umane. Per aggirare questa limitazione, gli scienziati hanno fatto ricorso all'utilizzo di modelli di malattia come il virus dell'immunodeficienza delle scimmie (SIV) in Rhesus macachi 4,5. Purtroppo, ci sono importanti limitazioni in questo modello a causa delle differenze intrinseche tra le specie e le differenze tra SIV e HIV. Inoltre, solo i servizi altamente specializzati sono capable di sostenere il lavoro con i primati non umani e ogni macaco richiede un grande investimento. Pertanto, vi è una necessità urgente di un modello che utilizza il sistema immunitario umano, che è suscettibile di infezione HIV / patogenesi, ed è meno proibitivo finanziariamente.

Il diabetici non obesi (NOD) -Grave combinato immunodeficienti (SCID) -Comune gamma catena knockout (c γ – / -) (o NSG) Sangue / Fegato / Thymus (BLT) modello di topo umanizzato è sempre dimostrato di essere uno strumento importante per studiare l'infezione da HIV. Impiantando cellule staminali ematopoietiche (CSE) e del timo fetale, i topi sono in grado di sviluppare e riepilogare un sistema immunitario umano 1-3. Un tipo di terapia genica basata sulle cellule staminali coinvolge 'reindirizzamento' cellule T periferiche di indirizzare l'HIV riprogrammando cellule staminali ematopoietiche (CSE) di differenziarsi in cellule T antigene specifico. Abbiamo dimostrato in precedenza che HSC ingegneria con un molecolare clonato anti-HIV specifica re delle cellule Trecettore (TCR) contro l'epitopo SL9 (aminoacido 77-85; SLYNTVATL) del virus HIV-1 gag può reindirizzare le cellule staminali in formazione di linfociti T maturi che sopprimono la replicazione di HIV nel umanizzato NSG-BLT modello di topo 6. L'avvertimento di utilizzare un TCR clonato molecolare è che è limitato ad uno specifico sottotipo antigene leucocitario umano (HLA) che limitare l'applicazione di questa terapia. recettori chimerici antigene (CAR), d'altro canto, possono essere universalmente applicati a tutti i sottotipi HLA. Gli studi iniziali sono stati eseguiti utilizzando un CAR costruito con i domini extracellulari e transmembrana di CD4 umana fusa alla ζ segnalazione intracellulare dominio di CD3 (definito il CD4ζCAR). CD4ζCAR espresso sulle cellule T CD8 può riconoscere busta HIV e scatenare una risposta delle cellule T citotossiche che è simile a quella mediata da un recettore delle cellule T 7. Abbiamo recentemente dimostrato che cellule staminali emopoietiche umane possono essere modificati con CD4ζCAR, che possono poi differenziarsi in molteplici ematopoietiche Lineages, comprese le cellule T funzionali in grado di sopprimere la replicazione dell'HIV nel modello umanizzato del mouse 8. Con il rapido avanzamento in chimerici terapie recettore antigene per il cancro 9, e la caratterizzazione continuo di potenti ampie anticorpi neutralizzanti 10-12 contro l'HIV che permettono la costruzione di un'unica catena CAR anticorpi, è percepibile che molti nuovi costrutti candidati, in aggiunta a CD4ζCAR , sarà generato e testato per la terapia genica a base di cellule staminali di malattie HIV e altre malattie. Inoltre, il modello di topo NSG-BLT umanizzato contenente queste vetture antigene-specifiche può anche fornire un utile strumento per esaminare attentamente le risposte delle cellule T umane in vivo. È importante sottolineare che il nostro protocollo differisce dai metodi descritti precedenti per la costruzione di umanizzato di topi BLT 13-15 dal fatto che la CSE in miscela proteica gelatinosa viene utilizzato al posto di tronchi fegato fetale 16. Questo protocollo descrive: 1) costruzione di Humanitopi BLT zed ingegnerizzati con CD4ζCAR; e 2) caratterizzazione del differenziamento delle cellule geneticamente modificate; e 3) caratterizzazione della funzionalità delle cellule geneticamente modificate.

Protocol

Dichiarazione etica: tessuto fetale umano è stato ottenuto da avanzate Biosciences risorse o da Novogenix ed è stato ottenuto senza informazioni di identificazione e non richiedono l'approvazione IRB per il suo utilizzo. La ricerca sugli animali descritti in questo manoscritto è stato eseguito sotto l'approvazione scritta della University of California, Los Angeles, e comitato per la ricerca (UCLA) animali (ARC) in conformità a tutte le leggi federali, statali, e le linee guida locali. In pa…

Representative Results

La figura 1 mostra uno schema di costruzione di topi BLT umanizzati con cellule staminali modificato. 10 settimane dopo la chirurgia implantare, i topi sono stati sacrificati per valutare la differenziazione e sviluppo di cellule geneticamente modificate. Come mostrato in figura 2, molteplici tessuti linfoidi (sangue, milza, timo e midollo osseo) sono state raccolte da un topo che è stato modificato con CD4ζCAR. Il CD4ζCAR utilizzato in questo protoco…

Discussion

Con l'automobile e HSC-based immunità ingegnerizzato acquistando slancio verso gli studi clinici, è importante avere un modello animale adeguato per esaminare da vicino la differenziazione e la funzione di queste cellule ingegnerizzate. In questo protocollo abbiamo descritto i metodi per costruire e testare i topi umanizzati con cellule staminali geneticamente modificate ingegnerizzate contro l'HIV. E 'importante avere efficiente trasduzione di cellule staminali prima del trapianto. Tuttavia, a causa della…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We would like to thank Ms. Jessica Selander in providing artistic assistant in making our figures. This work was funded by grants from the NIAID/NIH, grant no. RO1AI078806, the UCLA Center for AIDS Research (CFAR), grant no. P30AI28697, the California Institute for Regenerative Medicine, grant no. TR4-06845, the American Federation for AIDS Research (amfAR), grant no. #108929-54-RGRL, and the UC Multi-campus Research Program and Initiatives, California Center for Antiviral Drug discovery (CCADD)

Materials

CD34 microbead kit miltenyi 130-046-702 For sorting human CD34+ progenitor cells
Bambanker Wako 302-14681 for freezing cells
QIAamp Viral RNA kit  Qiagen 52904 For measuring viral load in the serum
MACSQuant Flow Cytometer Miltenyi For flow analysis
BD LSRFortessa™ BD biosciences For flow analysis
Hyaluronidase Sigma H6254-500MG  For tissue digestion
Deoxyribonuclease I       Worthington LS002006  for tissue digestion
Collagenase Life technology 17104-019  for tissue digestion
CFX Real time PCR detection system Biorad For measuring viral load and gene expression
Mice, strain NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ The Jackson Laboratory 5557 For constructing the humanized mice
Penicillin Streptomycin (Pen Strep) Thermo Fisher Scientific 10378016 For culturing cells
piperacillin/tazobactam Pfizer Zosyn Anti-fungal
Amphotericin B (Fungizone antimycotic) Thermo Fisher Scientific 15290-018 Anti-fungal
AUTOCLIP Wound Clips, 9 mm – 1000 units     Becton Dickinson 427631  For surgery
Sterile Poly-Reinforced Aurora Surgical Gowns, 30 per case       Medline DYNJP2707  For surgery
sutures, 4-0, vicryl           Owens and Minor 23000J304H   For surgery
Alcohol prep pads           Owens and Minor 3583006818 For surgery
Gloves, surgical, 6 1/2 Owens and Minor 4075711102 For surgery
Yssel’s Serum-Free T-Cell Medium Gemini Bio-products 400-102 For CD34+ cell transduction
Human Serum Albumin  Sigma-Aldrich A9511 For CD34+ cell transduction

References

  1. Karpel, M. E., Boutwell, C. L., Allen, T. M. BLT humanized mice as a small animal model of HIV infection. Current opinion in virology. 13, 75-80 (2015).
  2. Zhen, A., Kitchen, S. Stem-cell-based gene therapy for HIV infection. Viruses. 6 (1), 1-12 (2014).
  3. Goulder, P. J. R., Watkins, D. I. HIV and SIV CTL escape: implications for vaccine design. Nature Reviews: Immunology. 4 (8), 630-640 (2004).
  4. Kitchen, S. G., Bennett, M., et al. Engineering Antigen-Specific T Cells from Genetically Modified Human Hematopoietic Stem Cells in Immunodeficient Mice. PloS one. 4 (12), e8208 (2009).
  5. Goulder, P. J. R., Watkins, D. I. HIV and SIV CTL escape: implications for vaccine design. Nature Reviews: Immunology. 4 (8), 630-640 (2004).
  6. Kitchen, S. G. S., Levin, B. R. B., et al. In vivo suppression of HIV by antigen specific T cells derived from engineered hematopoietic stem cells. PLoS Pathogens. 8 (4), e1002649 (2012).
  7. Yang, O. O., Tran, A. C., Kalams, S. A., Johnson, R. P., Roberts, M. R., Walker, B. D. Lysis of HIV-1-infected cells and inhibition of viral replication by universal receptor T cells. PNAS. 94 (21), 11478-11483 (1997).
  8. Zhen, A., Kamata, M., et al. HIV-specific Immunity Derived From Chimeric Antigen Receptor-engineered Stem Cells. Molecular Therapy. 23 (8), 1358-1367 (2015).
  9. Barrett, D. M., Singh, N., Porter, D. L., Grupp, S. A., June, C. H. Chimeric Antigen Receptor Therapy for Cancer. Annual Review of Medicine. 65 (1), 333-347 (2014).
  10. Pejchal, R., Doores, K. J., et al. A Potent and Broad Neutralizing Antibody Recognizes and Penetrates the HIV Glycan Shield. Science. 334 (6059), 1097-1103 (2011).
  11. Caskey, M., Klein, F., et al. Viraemia suppressed in HIV-1-infected humans by broadly neutralizing antibody 3BNC117. Nature. 522 (7557), 487-491 (2015).
  12. West, A. P., Scharf, L., Scheid, J. F., Klein, F., Bjorkman, P. J., Nussenzweig, M. C. Structural insights on the role of antibodies in HIV-1 vaccine and therapy. Cell. 156 (4), 633-648 (2014).
  13. Lan, P., Tonomura, N., Shimizu, A., Wang, S., Yang, Y. -. G. Reconstitution of a functional human immune system in immunodeficient mice through combined human fetal thymus/liver and CD34+ cell transplantation. Blood. 108 (2), 487-492 (2006).
  14. Melkus, M. W., Estes, J. D., et al. Humanized mice mount specific adaptive and innate immune responses to EBV and TSST-1. Nature medicine. 12 (11), 1316-1322 (2006).
  15. Shultz, L. D., Brehm, M. A., Garcia-Martinez, J. V., Greiner, D. L. Humanized mice for immune system investigation: progress, promise and challenges. Nature Reviews: Immunology. 12 (11), 786-798 (2012).
  16. Vatakis, D. N., Bristol, G. C., et al. Using the BLT humanized mouse as a stem cell based gene therapy tumor model. Journal of visualized experiments : JoVE. (70), e4181 (2012).
  17. De Rosa, S. C., Brenchley, J. M., Roederer, M. Beyond six colors: a new era in flow cytometry. Nature medicine. 9 (1), 112-117 (2003).
  18. Shimizu, S., Hong, P., et al. A highly efficient short hairpin RNA potently down-regulates CCR5 expression in systemic lymphoid organs in the hu-BLT mouse model. Blood. 115 (8), 1534-1544 (2010).
  19. Denton, P. W., Olesen, R., et al. Generation of HIV latency in humanized BLT mice. Journal of virology. 86 (1), 630-634 (2012).
  20. Zhou, J., Zhang, Y., et al. Embryoid bodies formation and differentiation from mouse embryonic stem cells in collagen/Matrigel scaffolds. Journal of Genetics and Genomics. 37 (7), 451-460 (2010).
  21. Vatakis, D. N., Arumugam, B., Kim, S. G., Bristol, G., Yang, O., Zack, J. A. Introduction of Exogenous T-cell Receptors Into Human Hematopoietic Progenitors Results in Exclusion of Endogenous T-cell Receptor Expression. Molecular Therapy. 21 (5), 1055-1063 (2013).
  22. Ito, R., Takahashi, T., Katano, I., Ito, M. Current advances in humanized mouse models. Cellular & Molecular Immunology. 9 (3), 208-214 (2012).
  23. Martinez-Torres, F., Nochi, T., Wahl, A., Garcia, J. V., Denton, P. W. Hypogammaglobulinemia in BLT humanized mice–an animal model of primary antibody deficiency. PloS one. 9 (10), e108663 (2014).
  24. McCune, J. M. Development and applications of the SCID-hu mouse model. Seminars in Immunology. 8 (4), 187-196 (1996).
  25. Srivastava, S., Riddell, S. R. Engineering CAR-T Cells: Design Concepts. Trends in immunology. 36 (8), (2015).
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Zhen, A., Rezek, V., Youn, C., Rick, J., Lam, B., Chang, N., Zack, J., Kamata, M., Kitchen, S. Stem-cell Based Engineered Immunity Against HIV Infection in the Humanized Mouse Model. J. Vis. Exp. (113), e54048, doi:10.3791/54048 (2016).

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