Summary

Filtration Isolement des acides nucléiques: Une méthode d'extraction de l'ADN simple et rapide

Published: August 06, 2016
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Summary

Nous décrivons ici un procédé d'extraction d'ADN simple et rapide à base de papier d'ADN proviral du VIH dans le sang total détecté par PCR quantitative. Ce protocole peut être étendu pour une utilisation dans la détection d'autres marqueurs génétiques ou en utilisant des méthodes d'amplification alternatives.

Abstract

FINA, l'isolement de filtration d'acides nucléiques, est une nouvelle méthode d'extraction qui utilise une filtration verticale par l'intermédiaire d'une membrane de séparation et un tampon absorbant pour extraire l'ADN cellulaire du sang entier en moins de 2 minutes. L'échantillon de sang est traité avec un détergent, brièvement mélangés et appliqués à la pipette sur la membrane de séparation. Le lysat en évacuant le buvard en raison de l'action capillaire, la capture de l'ADN génomique à la surface de la membrane de séparation. L'ADN extrait est retenu sur la membrane lors d'une étape de lavage simple, dans laquelle les inhibiteurs de PCR sont méchants dans le tampon buvard absorbant. La membrane contenant l'ADN piégé est ensuite ajouté à la réaction de PCR sans autre purification. Cette méthode simple ne nécessite pas d'équipement de laboratoire et peut être facilement mis en œuvre avec des fournitures de laboratoire peu coûteux. Nous décrivons ici un protocole de détection très sensible et la quantification de l'ADN du VIH-1 proviral de sang total de 100 ul en tant que modèle pour le début dele diagnostic fant du VIH qui pourraient facilement être adapté à d'autres cibles génétiques.

Introduction

Plusieurs rapports ont discuté de l'élaboration de méthodes d'extraction de papier ou à base de membranes pour une utilisation au point-of-care (POC) dispositifs 1-5 avec le but de rendre la sensibilité exquise et la spécificité du diagnostic moléculaire disponible pour tous. L'Organisation mondiale de la santé (OMS) sur les maladies sexuellement transmissibles Initiative Diagnostics a inventé le terme ASSUREE (, sensible, spécifique, conviviale, rapide et robuste, sans équipement et livré à ceux qui en ont besoin abordables) pour décrire les caractéristiques idéales d'un POC essai 6. Parmi ces lignes directrices, la caractéristique sans équipement est particulièrement difficile à réaliser pour le diagnostic moléculaire. Cependant, toute innovation dans le domaine va avancer l'objectif d'atteindre ceux qui en ont le plus besoin, et il y a un espoir d'amélioration à court terme des performances de test en adaptant la technologie 7 existante.

Nous décrivons ici un protocole simple pour extraire l'ADN du sang totalqui ne nécessite pas la chimie complexe ou l'instrumentation de laboratoire. La FINA (Isolement de filtration d'acides nucléiques) méthode de préparation des échantillons a été initialement développé pour extraire l'ADN des leucocytes du sang entier afin de détecter le VIH-1 provirus dans le cadre d'un point-of-care (POC) échantillon à réponse PCR quantitative (qPCR) infantile diagnostic précoce plate – forme (EID) pour une utilisation dans des contextes de ressources limitées 8-11. L' extraction FINA diffère des procédés de purification classiques qui utilisent des membranes de silice ou des particules paramagnétiques enrobées de silice de se lier de façon réversible l' ADN en présence d'agents chaotropes 12. Au lieu de cela, la FINA utilise une filtration verticale par l'intermédiaire d'une membrane de séparation pour en extraire l'ADN cellulaire du sang entier directement. La membrane contenant l'ADN piégé peut être placé directement dans un tube PCR et soit immédiatement utilisée dans une réaction PCR ou séché à l' air pour une amplification ultérieure 9. Aucun des agents chaotropiques, le phénol, ou les alcools sont utilisés dans l'extraction de l'échantillon, eliminating les vastes Les étapes de lavage nécessaires pour éliminer les inhibiteurs de qPCR puissants issus du processus d'extraction 13,14.

La membrane peut capturer la FINA soit des cellules 9 ou l' ADN génomique libéré par la lyse des cellules 11 avant que l'échantillon est ajouté à la membrane. Pour la capture des cellules, du sang entier est ajouté directement à la membrane. Les cellules sont ensuite lysées dans la membrane par addition de NaOH 10 mM. L'avantage de cette méthode est qu'elle ne comporte que trois étapes: 1) addition de l'échantillon; 2) la lyse cellulaire / lavage et 3) le placement filtre à disque dans qPCR tube. L'inconvénient de cette méthode est que la membrane peut contenir uniquement un nombre défini de cellules directement proportionnelle au diamètre du disque de membrane. Pour atteindre la limite de détection requis pour EID, 100 ul de sang entier est nécessaire pour l'entrée échantillon qui comporte un filtre qui est trop grand pour être placé dans un tube qPCR. La lyse des cellules du sang avec un détergent avant d'ajouter l'échantillon à la collectionMembrane ajoute une étape de traitement, mais permet l'utilisation d'un filtre plus faible pour la même taille de l'échantillon. Nous avons été en mesure de démontrer une reproductibilité élevée, la détection de copie unique, et la quantification de aussi peu que 10 copies de VIH-1 ADN proviral de 100 pi de sang à l' aide de cette configuration de test 11.

Dans ce rapport, nous décrivons le protocole FINA initialement développé pour une utilisation en laboratoire. Le sandwich membrane / filtre connu sous le nom du module de préparation d'échantillon FINA peut être préparé en grandes séries et stocké pour une utilisation ultérieure. Quand les échantillons doivent être extraits, ce processus prend 2 minutes et peut être réalisée en faisant varier la taille des lots. Le qPCR peut être exécuté immédiatement ou les filtres contenant l'ADN intégré peut être stocké jusqu'à ce qu'il soit commode d'exécuter qPCR. Cette méthode est très pratique pour l'analyse de routine des échantillons dans les deux milieux basses et hautes ressources.

Protocol

déclaration éthique: L'ensemble des échantillons de sang utilisés dans cette étude ne sont pas considérés comme de la recherche impliquant des sujets humains. Les échantillons ont été obtenus à des fins de diagnostic clinique, qui ont été satisfaites, et la partie restante de ces spécimens ont été fournis pour le test de recherche de la FINA. Les spécimens ont été codées de telle sorte que les enquêteurs ne sont pas en mesure de vérifier facilement l'identité des personnes. 1. Prépa…

Representative Results

Le flux de travail pour extraire l' ADN proviral du sang entier additionné de cellules 8E5-LAV est représenté sur la figure 1. La figure 2 montre le module d'échantillonnage FINA et préparé qPCR tube. Cette méthode permet une amplification efficace du provirus VIH-1 à partir de cellules 8E5-LAV à différents nombres de copies, comme le montre la courbe d' étalonnage des échantillons artificiels (figure 3). PCR a eu…

Discussion

EID liée à l' accès à un traitement rapide a été démontrée pour réduire la mortalité infantile due à l' infection par le VIH 16. En raison de la persistance des anticorps maternels dans le sang d'un enfant, les tests rapides d'anticorps anti-VIH ont une utilité limitée pour déterminer le statut des nourrissons exposés au VIH. L'OMS recommande que tous les nourrissons nés de mères VIH-1 positifs devraient être testés à 4-6 semaines d'âge, à l' aide d' un te…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This protocol development was supported by the Bill and Melinda Gates Foundation Grand Challenges in Global Health grant 37774. Real-time PCR reagents and advice were provided by Abbott Molecular Inc. Des Plaines, IL. 8E5-LAV cells were provided by the Virology Quality Assurance Laboratory, Rush Presbyterian; St. Luke’s Medical Center. HIV-1 negative blood was provided by Core Lab, NorthShore University HealthSystems, Evanston, IL. Thanks to Mark Fisher for photography help.

Materials

Fusion 5 GE Healthcare Life Sciences 8151-9915
707 blotting pad VWR International 28298-014
PARAFILM M VWR International 52858-000
3M Double-Coated Polyester Diagnostic Tape  3M Medical Specialties 9965
200 µl qPCR strip tubes Agilent 401428
optical strip caps Agilent 401425
Mx3005p qPCR System Agilent 401456
sodium hydroxide Sigma-Aldrich 221465 A.C.S. Reagent
Triton X-100 Sigma-Aldrich T9284 BioXtra
dimethyl sulfoxide Sigma-Aldrich D8418 for molecular biology
fetal bovine serum, certified, U.S. origin Thermo Fisher Scientific 16000-044
Hammer driven small hole punch 3/16" hole diameter (5.1 mm) McMaster Carr 3424A16
Hammer driven small hole punch 1/4" hole diameter (7.14 mm) McMaster Carr 3424A19
Hammer driven small hole punch 5/16" hole diameter (8.35 mm) McMaster Carr 3424A23

References

  1. Byrnes, S. A., et al. One-step purification and concentration of DNA in porous membranes for point-of-care applications. Lab Chip. 15 (12), 2647-2659 (2015).
  2. Connelly, J. T., Rolland, J. P., Whitesides, G. M. “Paper Machine” for Molecular Diagnostics. Anal Chem. 87 (15), 7595-7601 (2015).
  3. Govindarajan, A. V., Ramachandran, S., Vigil, G. D., Yager, P., Bohringer, K. F. A low cost point-of-care viscous sample preparation device for molecular diagnosis in the developing world; an example of microfluidic origami. Lab Chip. 12 (1), 174-181 (2012).
  4. Linnes, J. C., et al. Paper-based molecular diagnostic for. RSC Adv. 4 (80), 42245-42251 (2014).
  5. Rodriguez, N. M., et al. Paper-Based RNA Extraction, in Situ Isothermal Amplification, and Lateral Flow Detection for Low-Cost, Rapid Diagnosis of Influenza A (H1N1) from Clinical Specimens. Anal Chem. 87 (15), 7872-7879 (2015).
  6. Peeling, R. W., Holmes, K. K., Mabey, D., Ronald, A. Rapid tests for sexually transmitted infections (STIs): the way forward. Sex Transm Infect. 82, 1-6 (2006).
  7. Mabey, D., Peeling, R. W., Ustianowski, A., Perkins, M. D. Diagnostics for the developing world. Nat Rev Microbiol. 2 (3), 231-240 (2004).
  8. Jangam, S. R., Agarwal, A. K., Sur, K., Kelso, D. M. A point-of-care PCR test for HIV-1 detection in resource-limited settings. Biosens Bioelectron. 42, 69-75 (2013).
  9. Jangam, S. R., Yamada, D. H., McFall, S. M., Kelso, D. M. Rapid point-of-care extraction of human immunodeficiency virus type 1 proviral DNA from whole blood for detection by real-time PCR. J Clin Microbiol. 47 (8), 2363-2368 (2009).
  10. Kelso, D. M., Jangam, S., Yamada, D., McFall, S. . Google Patents. , (2012).
  11. McFall, S. M., et al. A Simple and Rapid DNA Extraction Method from Whole Blood for Highly Sensitive Detection and Quantitation of HIV-1 Proviral DNA by Real-Time PCR. Journal of Virological Methods. 214, 37-42 (2015).
  12. Boom, R., et al. Rapid and simple method for purification of nucleic acids. J Clin Microbiol. 28 (3), 495-503 (1990).
  13. Radstrom, P., Knutsson, R., Wolffs, P., Lovenklev, M., Lofstrom, C. Pre-PCR processing: strategies to generate PCR-compatible samples. Mol Biotechnol. 26 (2), 133-146 (2004).
  14. Schrader, C., Schielke, A., Ellerbroek, L., Johne, R. PCR inhibitors – occurrence, properties and removal. J Appl Microbiol. 113 (5), 1014-1026 (2012).
  15. Folks, T. M., Powell, D. M., Martin, M. A. . Google Patents. , (1991).
  16. Violari, A., et al. Early Antiretroviral Therapy and Mortality among HIV-Infected Infants. N Engl J Med. 359 (21), 2233-2244 (2008).
  17. . . World Health Organization. , (2010).
  18. Gruner, N., Stambouli, O., Ross, R. S. Dried blood spots–preparing and processing for use in immunoassays and in molecular techniques. J Vis Exp. (97), (2015).
  19. Maiers, T. J., et al. An investigation of fingerstick blood collection for point-of-care HIV-1 viral load monitoring in South Africa. S Afr Med J. 105 (3), 228-231 (2015).
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Cite This Article
McFall, S. M., Neto, M. F., Reed, J. L., Wagner, R. L. Filtration Isolation of Nucleic Acids: A Simple and Rapid DNA Extraction Method. J. Vis. Exp. (114), e54289, doi:10.3791/54289 (2016).

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