Summary

Multimodal Kvantitativ Phase Imaging med Digital Holografisk Microscopy Præcist Vurderer tarmbetændelse og Epithelial Sårheling

Published: September 13, 2016
doi:

Summary

Accurate assessment of anti-inflammatory effects is of utmost importance for the evaluation of potential new drugs for the treatment of inflammatory bowel disease. Digital holographic microscopy provides assessment of inflammation in murine and human colonic tissue samples as well as automated multimodal evaluation of epithelial wound healing in vitro.

Abstract

Forekomsten af inflammatorisk tarmsygdom, dvs, Crohns sygdom og colitis ulcerosa, steget betydeligt i det seneste årti. Ætiologien for IBD er ukendt og nuværende terapeutiske strategier er baseret på den uspecifikke undertrykkelse af immunsystemet. Udviklingen af ​​behandlinger, der specifikt er målrettet mod tarmbetændelse og epitelial sårheling væsentlig grad kan forbedre forvaltningen af ​​IBD, men dette kræver nøjagtig påvisning af inflammatoriske forandringer. I øjeblikket er potentielle lægemiddelkandidater sædvanligvis evalueret under anvendelse af dyremodeller in vivo eller med cellekultur-baserede teknikker in vitro. Histologisk undersøgelse normalt kræver de celler eller væv af interesse, der skal farves, hvilket kan ændre prøven egenskaber og desuden kan fortolkningen af ​​resultaterne variere fra investigator ekspertise. Digital holografisk mikroskopi (DHM), baseret på påvisning af længden forsinkelse optiske vej, tilladerplet-fri kvantitativ fasekontrast billeddannelse. Dette gør det muligt at underkaste dem en direkte korreleret med absolutte biofysiske parametre. Vi viser, hvordan målingen af ​​ændringer i vævstæthed med DHM, baseret på brydningsindeks måling, kan kvantificere inflammatoriske ændringer, uden farvning, i forskellige lag af colon vævsprøver fra mus og mennesker med colitis. Derudover viser vi kontinuerlig multimodal label-free overvågning af epitelial sårheling in vitro, muligt ved hjælp DHM gennem simpel automatiseret bestemmelse af det sårede område og samtidig bestemmelse af morfologiske parametre såsom tør masse og lagtykkelse på migrerende celler. Afslutningsvis DHM repræsenterer en værdifuld, hidtil ukendt og kvantitativ værktøj til vurdering af tarmbetændelse med absolutte værdier for parametre er muligt, forenkles kvantificering af epitelial sårheling in vitro og har derfor stort potentiale for translationel diagnostisk uSE.

Introduction

Inflammatorisk tarmsygdom (IBD), dvs., colitis ulcerosa (UC) og Crohns sygdom (CD) er idiopatiske inflammatoriske sygdomme i mavetarmkanalen 1. Forskning i den underliggende patofysiologi IBD og evalueringen af ​​potentielle nye lægemidler eller nye diagnostiske metoder er især af betydning. I både grundforskning og den kliniske behandling af IBD patienter har tarmslimhinden blive fokus for opmærksomhed 2,3. Slimhinden betegner en anatomisk grænse, hvor interaktionen mellem kommensale bakterier, epitelceller og forskellige cellulære bestanddele af den intestinale immunsystem iscenesætte gut homeostase 4,5. I IBD patienter, ukontrolleret og vedvarende tarmbetændelse fører imidlertid til mucosale skade, kan påvises som ulcerationer eller stenose, som endelig kan kulminere i nedbrydning af epitelial barrierefunktion, som i sig selv forværrer lokal inflammation 6.

<pclass = "jove_content"> Epithelial sårheling er derfor afgørende for epitelial regeneration efter inflammation, men er også et centralt krav til heling af mavesår eller anastomotiske lækage efter gastrointestinal kirurgi 7. Epithelial sårheling kan simuleres i in vitro sårheling assays og i murine modeller af tarmbetændelse 8,9. Både in vitro- og in vivo fremgangsmåder har ulemper, som begrænser nøjagtigheden af eksperimentel vurdering. In vitro-assays, som klassiske scratch assays, kræver langvarige farvningsprocedurer eller transfektion med fluorescerende kromoforer. De er ofte begrænset af deres diskontinuerlig overvågning af celleproliferation og migration, der ikke kan automatiseres 10. In vivo modeller, såsom dextran natriumsulfat (DSS) -induceret colitis, ofte mangler robuste udlæsninger, delvis på grund af den betydelige variation set i laboratoriemarkører, making sådanne markører upassende at evaluere colitis sværhedsgrad 11,12. Histologisk analyse af den betændte slimhinde, er stadig den mest anvendelig metode til bestemmelse colitis sværhedsgrad men dette, som in vitro epiteliale sårhelende assays kræver farvning og er afhængig af investigators ekspertise 13.

Senest digital holografisk mikroskopi (DHM), en variant af kvantitativ fase mikroskopi 14, blev identificeret som nyttigt redskab til evaluering af epitelial sårheling in vitro og in vivo 15. DHM tillader vurdering af væv densitet ved måling af optisk vejlængde forsinkelse (OPD) , hvor der er udsigt roman kræftdiagnose 16-18 og kvantificering af inflammation relateret væv forandringer 19. Derudover DHM tillader overvågning af cellemorfologi dynamik ved at bestemme celle tykkelse, celle dækket overfladeareal og intracellulære (protein) indhold mængde <sup> 15,20. I in vitro-assays, DHM muliggør også analyse af fysiologiske processer, fx cellulære vandpermeabilitet ved at evaluere ændringer i cellevolumen og tykkelse 21,22. Desuden kan DHM målinger automatiseres som forhindrer investigator-associeret prøve bias.

Her demonstrerer vi brug af DHM i en musemodel af tarmbetændelse, og gælder også DHM til analyse af humane væv prøver til kvantitativ overvågning af sårheling som en etiket-fri in vitro assay. Først, vi evaluerer inflammatoriske ændringer af forskellige colon væg-lag i colitic mus og vævssnit fra mennesker med IBD. Efter at have beskrevet den kvantitative fase imaging procedure DHM, giver vi detaljerede instruktioner for brug af mikroskop komponenter, udarbejdelse af vævssnit og også beskrive evalueringen af ​​de overtagne fase billeder kvantitative.

Dernæst viser vi, at DHM kan være utilized til kontinuerlig multimodal overvågning af epitelial sårheling in vitro, og beskrive den analyse af cellulære egenskaber som celle lagtykkelse, tørvægt og cellulære volumen giver indsigt i narkotika-induceret og fysiologisk celle forandringer.

Protocol

Alle eksperimenter dyr blev godkendt af den regionale etiske komité (Landesamt für Natur, Umwelt und Verbraucherschutz, LANUV, Tyskland) i henhold til den tyske Animal Protection Law. Den lokale etiske udvalg fra University of Münster godkendt brugen af ​​humane væv til histologisk og mikroskop analyse. 1. Dyr og materialer Brug kvindelig eller mandlig mus af den krævede DSS-følsom stamme, der vejer 20 til 25 g, og huset i henhold til lokal lovgivning dyr pleje. Giv sær…

Representative Results

Typisk Opsætning til DHM Imaging for Digital Holografisk Microscopy (DHM) For at udføre lyse felt billedbehandling og kvantitativ DHM fase kontrast imaging, vi anvendte et omvendt mikroskop som vist i figur 1 B. Systemet blev modificeret ved at fastgøre en DHM modul, som tidligere beskrevet 25. Digitale hologrammer blev genereret ved belysning af…

Discussion

Vi viser, at DHM giver nøjagtig vurdering af histologiske skader i murine colitis modeller og prøver menneskelige colon væv ex vivo. Desuden er vi vist DHM kan løbende overvåge epitelial sårheling og samtidig give multimodal information om cellulære ændringer. I DHM, er genopbygningen af digitalt tilfangetagne hologrammer udføres numerisk 32. Derfor, i sammenligning med lysfeltmikroskopi, Zernike fasekontrast og differentieret interferens kontrast mikroskopi, DHM giver kvantitativ fasekontra…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Faekah Gohar for proofreading the manuscript. We thank Sonja Dufentester and Elke Weber for expert technical assistance.

Materials

Reagents
Azoxymethane (AOM) Sigma – Aldrich, Deisenhofen, Germany A5486
Cell Culture Flask Greiner Bio-One, Frickenhausen, Germany 658170
Costar Stripette Corning Inc., New York, USA 4488
Dextran sulphate sodium (DSS) TdB Consulatancy, Uppsala, Sweden DB001
DMEM/Ham´s F12 PAA Laboratories – Pasching – Austria E15-813
EGF Sigma – Aldrich, Deisenhofen, Germany SPR3196
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)                          Sigma – Aldrich, Deisenhofen, Germany E 9884
Falcon Tube 50ml BD Biosciences, Erembodegem, Belgium 352070
Isopentane (2- Methylbutane) Sigma – Aldrich, Deisenhofen, Germany M32631-1L
Methylene blue Merck, Darmstadt, Germany 1159430025
Mitomycin C Sigma – Aldrich, Deisenhofen, Germany M4287
Microscope Slides G. Menzel, Braunschweig, Germany J1800AMNZ
O.C.T. Tissue Tek compound                                  Sakura, Zoeterwonde, Netherlands 4583
Pen/Strep/Amphotericin B Lonza, Verviers, Belgium 1558
Phosphate buffered saline, PBS Lonza, Verviers, Belgium 4629
RPMI 1640 Lonza, Verviers, Belgium 3626
Sodium Chloride 0,9% Braun, Melsungen, Germany 5/12211095/0411
Standard diet Altromin, Lage, Germany 1320
Tissue-Tek Cryomold Sakura, Leiden, Netherlands 4566
Trypsin EDTA Lonza, Verviers, Belgium 7815
Vitro – Clud                                                                R. Langenbrinck, Teningen, Germany 04-0002 
 µ-Dish 35 mm with Culture-Insert, high ibidi GmbH, Munich, Germany 81176
DIC Lid for µ-Dishes, with a glass insert ibidi GmbH, Munich, Germany 80050
Equipment
MICROM HM550 Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, USA 46320
Digital holographic microscope
Component Model Company
Inverted Microscope iMIC Till Photonics, Graefelfing, Germany
Laser Compass 315M Coherent GmbH, Luebeck, Germany
Microscope lens Zeiss EC Plan Neofluar 10x/0.3 Zeiss, Goettingen, Germany
CCD camera DMK 41BF02 The Imaging Source, Bremen, Germany

References

  1. Baumgart, D. C., Sandborn, W. J. Inflammatory bowel disease: clinical aspects and established and evolving therapies. Lancet. 369 (9573), 1641-1657 (2007).
  2. Dieleman, L. A., et al. Chronic experimental colitis induced by dextran sulphate sodium (DSS) is characterized by Th1 and Th2 cytokines. Clin Exp Immunol. 114 (3), 385-391 (1998).
  3. Florholmen, J. Mucosal healing in the era of biologic agents in treatment of inflammatory bowel disease. Scand J Gastroenterol. 50 (1), 43-52 (2015).
  4. Merga, Y., Campbell, B. J., Rhodes, J. M. Mucosal barrier, bacteria and inflammatory bowel disease: possibilities for therapy. Dig Dis. 32 (4), 475-483 (2014).
  5. Young, V. B., Kahn, S. A., Schmidt, T. M., Chang, E. B. Studying the Enteric Microbiome in Inflammatory Bowel Diseases: Getting through the Growing Pains and Moving Forward. Front Microbiol. 2, 144 (2011).
  6. Atreya, R., Neurath, M. F. IBD pathogenesis in 2014: Molecular pathways controlling barrier function in IBD. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 12 (2), 67-68 (2015).
  7. Jones, M. K., Tomikawa, M., Mohajer, B., Tarnawski, A. S. Gastrointestinal mucosal regeneration: role of growth factors. Front Biosci. 4, 303-309 (1999).
  8. Burk, R. R. A factor from a transformed cell line that affects cell migration. Proc Natl Acad Sci U S A. 70 (2), 369-372 (1973).
  9. Singh, A., Nascimento, J. M., Kowar, S., Busch, H., Boerries, M. Boolean approach to signalling pathway modelling in HGF-induced keratinocyte migration. Bioinformatics. 28 (18), 495-501 (2012).
  10. Sakalar, C., et al. Pronounced transcriptional regulation of apoptotic and TNF-NF-kappa-B signaling genes during the course of thymoquinone mediated apoptosis in HeLa cells. Mol Cell Biochem. 383 (1-2), 243-251 (2013).
  11. Serada, S., et al. Serum leucine-rich alpha-2 glycoprotein is a disease activity biomarker in ulcerative colitis. Inflamm Bowel Dis. 18 (11), 2169-2179 (2012).
  12. Turovskaya, O., et al. RAGE, carboxylated glycans and S100A8/A9 play essential roles in colitis-associated carcinogenesis. Carcinogenesis. 29 (10), 2035-2043 (2008).
  13. Perse, M., Cerar, A. Dextran sodium sulphate colitis mouse model: traps and tricks. J Biomed Biotechnol. 2012, 718617 (2012).
  14. Lee, K., et al. Quantitative phase imaging techniques for the study of cell pathophysiology: from principles to applications. Sensors (Basel). 13 (4), 4170-4191 (2013).
  15. Bettenworth, D., et al. Quantitative stain-free and continuous multimodal monitoring of wound healing in vitro with digital holographic microscopy. PLoS One. 9 (9), 107317 (2014).
  16. Sridharan, S., Macias, V., Tangella, K., Kajdacsy-Balla, A., Popescu, G. Prediction of prostate cancer recurrence using quantitative phase imaging. Sci Rep. 5, 9976 (2015).
  17. Wang, Z., Tangella, K., Balla, A., Popescu, G. Tissue refractive index as marker of disease. J Biomed Opt. 16 (11), 116017 (2011).
  18. Majeed, H., et al. Breast cancer diagnosis using spatial light interference microscopy. J Biomed Opt. 20 (11), 111210 (2015).
  19. Lenz, P., et al. Digital holographic microscopy quantifies the degree of inflammation in experimental colitis. Integr Biol (Camb). 5 (3), 624-630 (2013).
  20. Popescu, G., et al. Optical imaging of cell mass and growth dynamics. Am J Physiol Cell Physiol. 295 (2), 538-544 (2008).
  21. Klokkers, J., et al. Atrial natriuretic peptide and nitric oxide signaling antagonizes vasopressin-mediated water permeability in inner medullary collecting duct cells. Am J Physiol Renal Physiol. 297 (3), 693-703 (2009).
  22. Jourdain, P., et al. Determination of transmembrane water fluxes in neurons elicited by glutamate ionotropic receptors and by the cotransporters KCC2 and NKCC1: a digital holographic microscopy study. J Neurosci. 31 (33), 11846-11854 (2011).
  23. Wirtz, S., Neufert, C., Weigmann, B., Neurath, M. F. Chemically induced mouse models of intestinal inflammation. Nat Protoc. 2 (3), 541-546 (2007).
  24. Bettenworth, D., et al. The tripeptide KdPT protects from intestinal inflammation and maintains intestinal barrier function. Am J Pathol. 179 (3), 1230-1242 (2011).
  25. Kemper, B., et al. Modular digital holographic microscopy system for marker free quantitative phase contrast imaging of living cells. Proc. SPIE. 6191, (2006).
  26. Kemper, B., von Bally, G. Digital holographic microscopy for live cell applications and technical inspection. Appl Opt. 47 (4), 52-61 (2008).
  27. Langehanenberg, P., von Bally, G., Kemper, B. Autofocusing in digital holographic microscopy. 3D Research. 2 (1), 1-11 (2011).
  28. Daimon, M., Masumura, A. Measurement of the refractive index of distilled water from the near-infrared region to the ultraviolet region. Applied optics. 46 (18), 3811-3820 (2007).
  29. Przibilla, S., et al. Sensing dynamic cytoplasm refractive index changes of adherent cells with quantitative phase microscopy using incorporated microspheres as optical probes. J Biomed Opt. 17 (9), 0970011-0970019 (2012).
  30. Kemper, B., et al. Integral refractive index determination of living suspension cells by multifocus digital holographic phase contrast microscopy. J Biomed Opt. 12 (5), 054009 (2007).
  31. Carpenter, A. E., et al. CellProfiler: image analysis software for identifying and quantifying cell phenotypes. Genome Biol. 7 (10), 100 (2006).
  32. Marquet, P., et al. Digital holographic microscopy: a noninvasive contrast imaging technique allowing quantitative visualization of living cells with subwavelength axial accuracy. Opt Lett. 30 (5), 468-470 (2005).
  33. Langehanenberg, P., Kemper, B., Dirksen, D., von Bally, G. Autofocusing in digital holographic phase contrast microscopy on pure phase objects for live cell imaging. Appl Opt. 47 (19), 176-182 (2008).
  34. Hanauer, S. B., et al. Maintenance infliximab for Crohn’s disease: the ACCENT I randomised trial. Lancet. 359 (9317), 1541-1549 (2002).
  35. Colombel, J. F., et al. Adalimumab for maintenance of clinical response and remission in patients with Crohn’s disease: the CHARM trial. Gastroenterology. 132 (1), 52-65 (2007).
  36. Feagan, B. G., et al. Vedolizumab as induction and maintenance therapy for ulcerative colitis. N Engl J Med. 369 (8), 699-710 (2013).
  37. Sandborn, W. J., et al. Vedolizumab as induction and maintenance therapy for Crohn’s disease. N Engl J Med. 369 (8), 711-721 (2013).
  38. Monteleone, G., et al. Mongersen, an oral SMAD7 antisense oligonucleotide, and Crohn’s disease. N Engl J Med. 372 (12), 1104-1113 (2015).
  39. Vermeire, S., et al. Etrolizumab as induction therapy for ulcerative colitis: a randomised, controlled, phase 2 trial. Lancet. 384 (9940), 309-318 (2014).
  40. Sandborn, W. J., et al. Ustekinumab induction and maintenance therapy in refractory Crohn’s disease. N Engl J Med. 367 (16), 1519-1528 (2012).
  41. Natividad, J. M., et al. Commensal and probiotic bacteria influence intestinal barrier function and susceptibility to colitis in Nod1-/-; Nod2-/- mice. Inflamm Bowel Dis. 18 (8), 1434-1446 (2012).
  42. Melgar, S., et al. Validation of murine dextran sulfate sodium-induced colitis using four therapeutic agents for human inflammatory bowel disease. Int Immunopharmacol. 8 (6), 836-844 (2008).
  43. Erben, U., et al. A guide to histomorphological evaluation of intestinal inflammation in mouse models. Int J Clin Exp Pathol. 7 (8), 4557-4576 (2014).
  44. Bruckner, M., et al. Murine endoscopy for in vivo multimodal imaging of carcinogenesis and assessment of intestinal wound healing and inflammation. J Vis Exp. (90), (2014).
  45. Zhao, K., Wang, W., Guan, C., Cai, J., Wang, P. Inhibition of gap junction channel attenuates the migration of breast cancer cells. Mol Biol Rep. 39 (3), 2607-2613 (2012).
  46. Pavillon, N., et al. Early cell death detection with digital holographic microscopy. PLoS One. 7 (1), 30912 (2012).
  47. Hindryckx, P., et al. Clinical trials in ulcerative colitis: a historical perspective. J Crohns Colitis. 9 (7), 580-588 (2015).
  48. Neurath, M. F., Travis, S. P. Mucosal healing in inflammatory bowel diseases: a systematic review. Gut. 61 (11), 1619-1635 (2012).
  49. Bryant, R. V., Winer, S., Travis, S. P., Riddell, R. H. Systematic review: histological remission in inflammatory bowel disease. Is ‘complete’ remission the new treatment paradigm? An IOIBD initiative. J Crohns Colitis. 8 (12), 1582-1597 (2014).
  50. Marchal Bressenot, A., et al. Review article: the histological assessment of disease activity in ulcerative colitis. Aliment Pharmacol Ther. 42 (8), 957-967 (2015).
check_url/54460?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lenz, P., Brückner, M., Ketelhut, S., Heidemann, J., Kemper, B., Bettenworth, D. Multimodal Quantitative Phase Imaging with Digital Holographic Microscopy Accurately Assesses Intestinal Inflammation and Epithelial Wound Healing. J. Vis. Exp. (115), e54460, doi:10.3791/54460 (2016).

View Video