Summary

הפקה של רטרווירוס שכפול פגומים-by transfection חלוף של תאים 293T

Published: December 04, 2007
doi:

Summary

טכניקה זו ממחישה דרך יעילה כדי להכין את השכפול פגום מניות retroviral קידוד oncogene אדם, לאחר מכן נעשה שימוש לזירוז המחלה myeloproliferative במודל עכבר.

Abstract

מחקרים במעבדה שלנו מחלות myeloproliferative האדם הנגרמת על ידי אונקוגנים כגון Bcr-Abl או גורם הגדילה לקולטן הנגזרות אונקוגנים (ZNF198-FGFR1, Bcr-PDGFRα וכו '). אנו מסוגלים מודל מחקר מחלות אנושיות, כמו במודל העכבר שלנו, על ידי השתלת תאים במח העצם נגוע בעבר עם רטרווירוס ביטוי oncogene של עניין. שכפול-פגום רטרווירוס קידוד oncogene האדם סמן (GFP, RFP, גן עמידות לאנטיביוטיקה, וכו ') מופק על ידי פרוטוקול transfection חולף באמצעות תאים 293T, קו אנושי כליות תא אפיתל ממיר את המוצר adenovirus גן E1A. 293 תאים יש את המאפיין יוצא דופן להיות transfectable מאוד על ידי סידן זרחתי (Capo 4), עם יעילות של עד 50-80% transfection להשגה בקלות. כאן, אנו שיתוף transfect 293 תאים עם וקטור retroviral ביטוי oncogene עניין פלסמיד המבטא את איסור הפרסום-pol-env פונקציות אריזה, כגון הגנום יחיד אריזה בונה קאט או PCL, במקרה זה EcoPak פלסמיד. Transfection הראשונית היא שיפור נוסף על ידי שימוש chloroquine. מניות של הנגיף ecotropic, שנאספו supernatant תרבות 48 שעות. פוסט transfection, ניתן לאחסן -80 ° C ו המשמש זיהום של קווי תאים לאור השינוי במבחנה, או תאים ראשוניים כגון עצם לתאי מוח העכבר, כי לאחר מכן ניתן להשתמש להשתלה במודל העכבר שלנו .

Protocol

ערב קודם, השינוי התאים צלחת 293T ב 3-5×10 6 תאים / 6 cultureplate רקמות ס"מ. הערה: אנו משתמשים 293T תאים על מנת להקל שלהם transfection ותאי efficacyas וירוס לייצר. תאים אלו חסרים האריזה וירוס אלא עוזר פלסמיד הוא הציג. בבוקר הראש…

Discussion

ארבע נקודות קריטיות יבטיח את ההצלחה של מניות ויראלי טוב:

  1. התאים לייצר 293T צריך להיות מאוד בריא, כלומר הם היו מפוצלים לפי לוח זמנים קבוע מאוד, מעולם לא היו מגודלים, והם מצופה בצפיפות של 3.5-5000000 מותאם לכל צלחת 6 ס"מ תרבות רקמות, כד…

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
293T cells cell-line     Split 1:3 to 1:4 every 3 days, otherwise they will tend to clump with replating and will not transfect as well.
293T cell medium       DMEM/hi-glu + 10 % FBS + 1% Pen/Strep + 1% L-Glutamine (1% NEAA, optional). We obtain our tissue culture slutions from CellGro.
coding DNA plasmid       Twice purified by CsCl. MSCV backbone, encoding oncogene and marker of choice (Neo, GFP, etc.)
EcoPak       also called pMCV-Ecopac: ecotropic packaging plasmid, encoding gag-pol-env
2x HBS       For 500 ml: 8.0 g NaCl + 0.37 g KCl + 106.5 mg Na2HPO4 (anhydrous; 201.1 mg if 7xH2O) + 1.0 g dextrose (D-glucose) + 5.0 g HEPES powder. Dissolve in 450 ml dH2O (milli-Q), adjust pH to 7.05 with NaOH, then complete to 500 ml with dH2O. Sterile filter thru 0.45 µ filter. Store at room temperature, with the cap on tight.
2M CaCl2   Sigma    
miliQ H2O       sterile-filtered
Chloroquine       1000x stock is 25 mM in PBS- (w/o Ca2+/Mg2+), stored at -20C. Add fresh to the medium when needed.
6 cm plates       for tissue culture
Incubator       for tissue culture. Set at 37C, 10% CO2.
10 cc sterile syringes       Sterile. One per virus type.
18G needles       single use, one per virus type.
45 um syringe filters        
5 ml plastic tubes       Sterile, to mix transfection solution, for up to 2 plates at a time (2 ml). We use Falcon tubes.
50 ml conical tubes        
cryovials       2 and 4 ml, for virus aliquots.

All reagents used in the transfection must be sterile-filtered (CaCl2, 2x HBS, miliQ H2O) and kept sterile.

References

  1. DuBridge, R. B., Tang, P., Hsia, H. C., Leong, P. M., Miller, J. H., Calos, M. P. Analysis of mutation in human cells by using an Epstein-Barr virus shuttle system. Mol Cell Biol. 7, 379-387 (1987).
  2. Cherry, S. R., Biniszkiewicz, D., van Parijs, L., Baltimore, D., Jaenisch, R. Retroviral expression in embryonic stem cells and hematopoietic stem cells. Mol Cell Biol. 20, 7419-7426 (2000).
  3. Finer, M. H., Dull, T. J., Qin, L., Farson, D., Roberts, M. kat: A high-efficiency retroviral transduction system for primary human T lymphocytes. Blood. 83, 43-50 (1994).
  4. Naviaux, R. K., Costanzi, E., Haas, M., Verma, I. M. The pCL vector system: rapid production of helper-free, high-titer, recombinant retroviruses. J Virol. 70, 5701-5705 (1996).
  5. Pear, W. S., Miller, J. P., Xu, L., Pui, J. C., Soffer, B., Quackenbush, R. C., Pendergast, A. M., Bronson, R., Aster, J. C., Scott, M. L., Baltimore, D. Efficient and rapid induction of a chronic myelogenous leukemia-like myeloproliferative disease in mice receiving P210 bcr/abl-transduced bone marrow. Blood. 92, 3780-3792 (1998).
  6. Pear, W. S., Nolan, G. P., Scott, M. L., Baltimore, D. Production of high-titer helper-free retroviruses by transient transfection. Proc Natl Acad Sci USA. 90, 8392-8396 (1993).
  7. Stocking, C., Kollek, R., Bergholz, U., Ostertag, W. Long terminal repeat sequences impart hematopoietic transformation properties to the myeloproliferative sarcoma virus. Proc Natl Acad Sci USA. 82, 5746-5750 (1985).
  8. Van Etten, R. A. Models of chronic myeloid leukemia. Curr Oncol Rep. 3, 228-237 (2001).
  9. Van Etten, R. A. Studying the pathogenesis of BCR-ABL+ leukemia in mice. Oncogene. 21, 8643-8651 (2002).
check_url/550?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Gavrilescu, L. C., Van Etten, R. A. Production of Replication-Defective Retrovirus by Transient Transfection of 293T cells. J. Vis. Exp. (10), e550, doi:10.3791/550 (2007).

View Video