Summary

アフリカツメガエル卵母細胞:マイクロインジェクションのために最適化された方法、濾胞細胞層の除去、および電気生理学的実験における高速解法の変更

Published: December 31, 2016
doi:

Summary

Optimized procedures for the isolation of single follicles, cytoplasmic RNA microinjections, the removal of surrounding cell layers, and protein expression in Xenopus oocytes are described. In addition, a simple method for fast solution changes in electrophysiological experiments with ligand-gated ion channels is presented.

Abstract

タンパク質の異種発現系としてアフリカツメガエル卵母細胞は、第一のガードンによって記載されました 1、広くその発見以来使用されている(文献2から3、およびその中の参考文献)。外国のチャンネル発現のための卵母細胞は、魅力的な特徴は、内因性イオンチャネル4の貧しい豊富です。この発現系は、それらのリガンド依存性イオンチャネルの中で、多くのタンパク質の特徴付けのために有用であることが証明されました。

アフリカツメガエル卵母細胞におけるGABA A受容体の発現およびそれらの機能的特徴付けは、卵母細胞、cRNAを、濾胞細胞層を除去しながら、微量注入、および電気生理学的実験で高速なソリューションの変化の分離を含め、ここに記載されています。手順は、この研究室5,6で最適化し、日常的に7-9を使用したものから逸脱しました。伝統的に、露出した卵母細胞を調製しますRTで卵巣ローブの長期のコラゲナーゼ処理、およびこれらの裸化卵母細胞にmRNAをマイクロインジェクションしています。最適化された方法を使用して、多様な膜タンパク質が発現されており、そのような組換えGABA A受容体10-12、ヒト組換えクロライドチャネル13、トリパノソーマカリウムチャネル14、及びミオの -イノシトールトランス15、16のように、このシステムを研究しました。

ここに詳述した方法は、 アフリカツメガエル卵母細胞における選択の任意のタンパク質の発現に適用することができ、迅速な溶液交換は、他のリガンド依存性イオンチャネルを研究するために使用することができます。

Introduction

アフリカツメガエル卵母細胞は、広く( – 3、およびその中の参考文献参考文献2)発現系として使用されます。彼らは、適切に組み立て、それらの形質膜に機能的に活性な多サブユニットタンパク質を組み込むことができます。このシステムを使用して、機能的に変異した、キメラ、または連結されたタンパク質の特性を研究するため、および潜在的な薬物をスクリーニングするために、単独で、または他のタンパク質と組み合わせて膜タンパク質を調査することが可能です。

他の異種発現システムより卵母細胞を使用する利点は、巨細胞の簡単な取り扱い、外来遺伝情報を発現する細胞の高い割合、浴灌流によって、卵母細胞の環境の簡単な制御、および膜電位の制御を含みます。

この発現系の欠点は、多くの研究室17〜20において観察された季節変動です。この変化の理由明確にはほど遠いです。さらに、卵母細胞の質は、多くの場合、強く変化することが観察されます。伝統的な方法7-9は卵巣ローブの分離、いくつかの時間のためのコラゲナーゼに卵巣ローブの露出、裸に卵母細胞の選択、および卵母細胞のマイクロインジェクションが含まれています。ここで、代替、高速手順の数は、私たちは、卵母細胞の品質の無い季節変動や変化の少ない、30年以上にわたってこの発現システムで動作することが許可されていることが報告されています。

改変及び改良された卵母細胞の単離のためにここに記載された方法、cRNAをマイクロインジェクションし、及び濾胞細胞層の除去は、 アフリカツメガエル卵母細胞における選択の任意のタンパク質の発現のために使用することができます。卵母細胞の周囲の培地の高速解の変化のための非常に簡単な方法は、任意のリガンド依存性イオンチャネルのキャリアの研究に適用することができます。

Protocol

動物実験は、ベルン州Kantonstierarztの地方委員会、KantonalerVeterinärdienstベルン(BE85 / 15)によって承認されています。 アフリカツメガエル卵母細胞の調製厳密に20°Cに維持され、水に12時間/ 12時間の明/暗サイクルでカエル( アフリカツメガエル)を維持します 。 女性のカエル9から卵巣のローブを削除します。 注:ローブの…

Representative Results

アフリカツメガエル卵母細胞は、機械的に白金耳( 図1)を使用して選び出しました。 0.5:2.5のfmol /卵母細胞( 図2)卵母細胞は、mRNAは、受容体サブユニットは4、β2、δ、0.5をαGABAをコードをマイクロインジェクションしました。 4日後、卵胞細胞層( 図3)を除去しました。電圧は、卵母細胞を-80mVでク?…

Discussion

この資料に記載された方法は、伝統的に7-9使用されるものから外れます。 1〜2時間コラゲナーゼ処理8に卵巣のローブを露出するための規格です。損傷を受けていない、裸に卵母細胞を分離します。およびmRNAは、市販の注入装置を使用してそれらを注入します。卵母細胞は、コラゲナーゼの高濃度に長時間暴露によって損傷される可能性が高い1):これは古典的な手順は以下…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the Swiss National Science Foundation grant 315230_156929/1. M.C.M. is a recipient of a fellowship (Beca Chile Postdoctorado from CONICYT, Ministerio de Educacion, Chile).

Materials

NaCl Sigma 71380
KCl Sigma P-9541
NaHCO3 Sigma S6014
MgSO4  Sigma M-1880
CaCl2  Sigma 223560
Ca(NO3)2  Sigma C1396
HEPES Sigma H3375
Penicilin/streptomycin Gibco 15140-148 100 μg penicillin/ml and 100 μg streptomycin/ml
Platinum wire loop home-made
Micropipette puller Zeitz-Instruments GmBH DMZ
Hamilton syringe  Hamilton 80300 10 μl, Type 701N
Thick walled polytetrafluoroethylene tubing Labmarket GmBH 1.0 mm OD 
Paraffin oil Sigma 18512
Nylon net, gauge 0.8 mm  ZBF Züricher Beuteltuchfabrik AG
Borosilicate glass tube  Corning 99445-12 PYREX
Collagenase NB Standard Grade SERVA 17454
Trypsin inhibitor type I-S Sigma T-9003
EGTA Sigma E3389
Glass capillary Jencons (Scientific ) LTD. H15/10 1.35 ID mm (for perfusion), alternative company: Harvard Apparatus Limited
Borosilicate glass capillary Harvard Apparatus Limited 30-0019 1.0 OD X  0.58 ID X 100 Length mm (for microinjection) 
Borosilicate glass capillary  Harvard Apparatus Limited 30-0044 1.2 OD X 0.69 ID X 100 Length mm (for two-electrode voltage clamp)
γ-Aminobutyric acid (GABA) Sigma A2129
3α,21-Dihydroxy-5α-pregnan-20-one (THDOC) Sigma P2016
grill motor Faulhaber  DC micromotor Type 2230 with gear Type 22/2
micrometer screw Kiener-Wittlin 10400 TESA, AR 02.11201
Sterile plastic transfer pipettes Saint-Amand  Mfg. 222-20S

References

  1. Gurdon, J. B., Lane, C. D., Woodland, H. R., Marbaix, G. Use of frog eggs and oocytes for the study of messenger RNA and its translation in living cells. Nature. 233 (5316), 177-182 (1971).
  2. Soreq, H. The biosynthesis of biologically active proteins in mRNA-microinjected Xenopus oocytes. CRC Crit Rev Biochem. 18 (3), 199-238 (1985).
  3. Sigel, E. Use of Xenopus oocytes for the functional expression of plasma membrane proteins. J Membr Biol. 117 (3), 201-221 (1990).
  4. Dascal, N. The use of Xenopus oocytes for the study of ion channels. CRC Crit Rev Biochem. 22 (4), 317-387 (1987).
  5. Sigel, E. Properties of single sodium channels translated by Xenopus oocytes after injection with messenger ribonucleic acid. J Physiol. 386, 73-90 (1987).
  6. Sigel, E., Minier, F. The Xenopus oocyte: system for the study of functional expression and modulation of proteins. Mol Nutr Food Res. 49 (3), 228-234 (2005).
  7. Colman, A., Hames, B. D., Higgins, S. J. Expression of exogenous DNA in Xenopus oocytes. Transcription and Translation’A Practical Approach. , 49-69 (1984).
  8. Sive, H. L., Grainger, R. M., Harland, R. M. Defolliculation of Xenopus oocytes. Cold Spring Harb Protoc. 2010 (12), 1377-1379 (2010).
  9. Smart, T. G., Krishek, B. J., Boulton, A. A., Baker, ., Wolfgang, W. a. l. z. Xenopus oocyte microinjection and ion-channel expression. Patch-Clamp Applications and Protocols. , 259-305 (1995).
  10. Maldifassi, M. C., Baur, R., Sigel, E. Functional sites involved in modulation of the GABA receptor channel by the intravenous anesthetics propofol, etomidate and pentobarbital. Neuropharmacology. 105, 207-214 (2016).
  11. Maldifassi, M. C., Baur, R., Pierce, D., Nourmahnad, A., Forman, S. A., Sigel, E. Novel positive allosteric modulators of GABAA receptors with anesthetic activity. Sci Rep. 6, 25943 (2016).
  12. Wongsamitkul, N., Baur, R., Sigel, E. Towards understanding functional properties and subunit arrangement of α4β2δ GABAA receptors. J Biol Chem. 291 (35), 18474-18483 (2016).
  13. Burgunder, J. M., et al. Novel chloride channel mutations leading to mild myotonia among Chinese. Neuromuscul Disord. 18 (8), 633-640 (2008).
  14. Steinmann, M. E., Gonzalez-Salgado, A., Butikofer, P., Maser, P., Sigel, E. A heteromeric potassium channel involved in the modulation of the plasma membrane potential is essential for the survival of African trypanosomes. FASEB J. 29 (8), 3228-3237 (2015).
  15. Gonzalez-Salgado, A., et al. myo-Inositol uptake is essential for bulk inositol phospholipid but not glycosylphosphatidylinositol synthesis in Trypanosoma brucei. J Biol Chem. 287 (16), 13313-13323 (2012).
  16. Gonzalez-Salgado, A., et al. Trypanosoma brucei Bloodstream Forms Depend upon Uptake of myo-Inositol for Golgi Complex Phosphatidylinositol Synthesis and Normal Cell Growth. Eukaryot Cell. 14 (6), 616-624 (2015).
  17. Wu, M., Gerhart, J. Raising Xenopus in the laboratory. Methods Cell Biol. 36, 3-18 (1991).
  18. Gurdon, J. B., Wilt, F. H., Wessels, N. K. American clawed frogs. Methods in developmental biology. , 75-84 (1967).
  19. Elsner, H. A., Honck, H. H., Willmann, F., Kreienkamp, H. J., Iglauer, F. Poor quality of oocytes from Xenopus laevis used in laboratory experiments: prevention by use of antiseptic surgical technique and antibiotic supplementation. Comp Med. 50 (2), 206-211 (2000).
  20. Green, S. L. Factors affecting oogenesis in the South African clawed frog (Xenopus laevis). Comp Med. 52 (4), 307-312 (2002).
  21. Dumont, J. N. Oogenesis in Xenopus laevis (Daudin). I. Stages of oocyte development in laboratory maintained animals. J Morphol. 136 (2), 153-179 (1972).
  22. Kressmann, A., Celis, J. E., Grassmann, A., Loyter, A. Birnstiel M.L. Surrogate genetics. Transfer of Cell Constituents into Eucaryotic Cells. , 388-407 (1980).
  23. Middendorp, S. J., Maldifassi, M. C., Baur, R., Sigel, E. Positive modulation of synaptic and extrasynaptic GABAA receptors by an antagonist of the high affinity benzodiazepine binding site. Neuropharmacology. 95, 459-467 (2015).
  24. Dumont, J. N., Brummett, A. R. Oogenesis in Xenopus laevis (Daudin). V. Relationships between developing oocytes and their investing follicular tissues. J Morphol. 155 (1), 73-97 (1978).
  25. Dascal, N., Landau, E. M., Lass, Y. Xenopus oocyte resting potential, muscarinic responses and the role of calcium and guanosine 3′,5′-cyclic monophosphate. J Physiol. 352, 551-574 (1984).
  26. Buckingham, S. D., Pym, L., Sattelle, D. B. Oocytes as an expression system for studying receptor/channel targets of drugs and pesticides. Methods Mol Biol. 322, 331-345 (2006).
  27. Sigel, E., Baur, R., Trube, G., Möhler, H., Malherbe, P. The effect of subunit combination of rat brain GABAA receptors on channel function. Neuron. 5, 703-711 (1990).
check_url/55034?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Maldifassi, M. C., Wongsamitkul, N., Baur, R., Sigel, E. Xenopus Oocytes: Optimized Methods for Microinjection, Removal of Follicular Cell Layers, and Fast Solution Changes in Electrophysiological Experiments. J. Vis. Exp. (118), e55034, doi:10.3791/55034 (2016).

View Video