Sammenhengende kryo-seksjoner er samlet for å muliggjøre histologiske programmer og berikelse av RNA for genekspresjon målinger ved hjelp av naboregionene fra et enkelt museskjelettmuskulatur. Høy kvalitet RNA er hentet fra 20 – 30 mg av sammenslåtte frysesnitt og målinger sammenlignet direkte på tvers av applikasjoner.
Med denne metoden blir påfølgende frysesnitt samles for å muliggjøre både mikroskopi applikasjoner for vev histologi og anrikning av RNA for genuttrykk ved bruk av tilstøtende områder fra et enkelt museskjelettmuskulatur. Vanligvis er det vanskelig å oppnå tilstrekkelig homogenisering av små skjelettmuskelprøver fordi buffervolum kan være for lavt for effektiv sliping, men uten tilstrekkelig mekanisk avbrudd, den tette vev arkitektur muskel grenser penetrasjon av buffer reagenser, slutt forårsaker lav RNA yield. Ved å følge protokollen angitt her, er 30 um seksjoner oppsamlet og slått sammen slik at cryosectioning og påfølgende nål homogenisering for å mekanisk å forstyrre muskelen, å øke overflatearealet som utsettes for buffer penetrasjon. De primære begrensninger av teknikken er at det krever en cryostat, og det er forholdsvis liten produksjon. Imidlertid kan høy kvalitet RNA fås fra små prøver av oppsamlet muscle frysesnitt, noe som gjør denne fremgangsmåte er tilgjengelig i mange forskjellige skjelettmuskler og annet vev. Videre muliggjør denne teknikken matchet analyser (f.eks vev histopatologi og genekspresjon) fra tilstøtende regioner i en enkelt muskel-skjelettlidelser, slik at målinger kan sammenlignes direkte på tvers av programmer for å redusere eksperimentell usikkerhet og for å redusere replikative dyreforsøk er nødvendig for å kilden en liten vev for flere programmer.
Målet med denne teknikken er å gjøre flere eksperimentelle analyser av ulike modaliteter, for eksempel histologi og genuttrykk, tilgjengelig fra en enkelt liten skjelettmuskulatur kilde vev. Mikros programmer som er mest følsomme for å smake konserveringsmetoder, som må kontrolleres nøye for å begrense dannelsen av iskrystall gjenstander under nedfrysing. Således er metodeutvikling basert på den muskel tibialis anterior (TA) frosne delvis dekket med innstøping harpiks i en -140 ° C med flytende nitrogen avkjølte 2-metylbutan bad som kildemateriale for både immunfluorescens-mikroskopi og genekspresjon analyser.
Behovet for å bruke samme kildemateriale for ulike tekniske tilnærminger er spesielt viktig for intramuskulær injeksjon baserte eksperimenter der venstre og høyre musklene representerer ulike forhold, en eksperimentell og en kontroll. For eksempel i muskel regenerering studier, en muscle injiseres med en gift for å forårsake omfattende vevsskade mens kontralaterale muskelen fungerer som et redskap-injisert kontroll en. Tilsvarende genterapistudier for muskelforstyrrelser begynner vanligvis med validering av genterapi vektoren ved intramuskulær injeksjon for å bli sammenlignet med tom vektor, som ikke er relatert vektor eller bærerkontroll på den kontralaterale side 2. Derfor er det ikke mulig å kilden hver TA muskelen til et annet program.
Vanlige strategier for å håndtere dette problemet er: i) å bruke en annen muskelgruppe for hvert program, ii) å bruke flere mus, eller iii) å kutte av et stykke av muskelen for hvert program. Men store forskjeller mellom muskelgrupper gjør det vanskelig å sammenligne data fra forskjellige programmer, og flere dyr øke utgiftene og er dårlig begrunnet dersom andre alternativer eksisterer. Splitte muskler etter disseksjon til kilden forskjellige applikasjoner er det beste alternativet in mange tilfeller. Imidlertid muskel stykkene er ofte for liten til å bruke pulverisering under flytende nitrogen eller mekaniske slipeteknikker for homogenisering 2-5. Som muskel er et meget strukturell vev pakket med ekstracellulære matrise og kontraktile proteiner, fører utilstrekkelig mekanisk homogenisering til et lavt utbytte av påfølgende DNA, RNA eller protein. Metoden beskrevet her gjør at små mengder vev fra en kilde muskel for bruk i flere programmer, og inkludering av cryosectioning og nål finmaling forbedrer mekanisk homogenisering for bedre RNA yield.
To achieve best results with this method, keep embedding resin restricted to the lower third or half of the muscle during tissue cryopreservation because excess resin will slow the collection of the pooled cryosections and may increase embedding resin contamination in the RNA isolation. Also, careful attention during needle homogenization is important to maximize yield and minimize the probability of clogging the needle. The protocol may be modified by using a Luer-Lok syringe to protect against sample loss if the needle…
The authors have nothing to disclose.
Madison Grant, Steven Foltz, Halie Zastre and Junna Luan provided technical assistance. Research reported in this publication was supported by the National Institute of Arthritis and Musculoskeletal and Skin Diseases of the National Institutes of Health under award number AR065077. The content is solely the responsibility of the author and does not necessarily represent the official views of the National Institutes of Health.
Cork | VWR Scientific | 23420-708 | Cut into small squares with a sharp blade. |
Plastic coverslip | Fisher Scientific | 12-547 | Used to orient the muscle during freezing. |
Low temperature thermometer | VWR Scientific | 89370-158 | |
2-methylbutane | Sigma | M32631-4L | Caution: hazardous chemical. Store in flammable cabinet. |
Embedding resin: "cryomatrix" | Thermo Fisher Scientific | 6769006 | Other embedding resins can be substituted for cryomatrix. |
Cryostat | Thermo Fisher Scientific | microm HM550 with disposable blade carrier | Any working cryostat should be sufficient for the protocol. |
Disposable cryostat blade | Thermo Fisher Scientific | 3052835 | Use an appropriate blade or knife for the cryostat to be used. |
RNAse decontamination solution: "RNase Zap" | Thermo Fisher Scientific | AM9780 | |
Analytical balance | Mettler Toledo | XS64 | |
Paint brush | Daler Rowney | 214900920 | Use to handle cryosections. Can be found with in stores with simple art supplies. |
Razor blade | VWR Scientific | 55411-050 | |
Microscope slide | VWR Scientific | 48311600 | |
RNA organic extraction reagent: TRIzol | Thermo Fisher Scientific | 15596026 | Caution: TRIzol is a hazardous chemical. Note: Only organic extraction reagents are recommended for RNA extraction from skeletal muscle. |
18 gauge needle | VWR Scientific | BD305185 | |
22 gauge needle | VWR Scientific | BD305155 | |
26 gauge needle | VWR Scientific | BD305115 | Optional. Can be used for a third round of sample trituration in the RNA extraction protocol. |
1 mL syringe | VWR Scientific | BD309659 | For very high value samples, a luer-lok syringe is recommended (e.g. VWR BD309628). |
1-bromo-3-chloropentane (BCP) | Sigma | B9673 | |
For 70% ethanol in DEPC water: 200 proof alcohol | Decon Laboratories, Inc. | +M18027161M | Mix 35 ml 200 proof alcohol + 15 mL DEPC water. |
For 70% ethanol in DEPC water: DEPC-treated water | Thermo Fisher Scientific | AM9922 | Mix 35 ml 200 proof alcohol + 15 mL DEPC water. |
RNA purification kit: PureLink RNA minikit | Thermo Fisher Scientific | 12183018A | Final steps of RNA preparation. |
DNase/Rnase-free water | Gibco | 10977 | DEPC-treated water can also be used. |
Spectrophotometer: Nanodrop 2000 | Thermo Fisher Scientific | NanoDrop 2000 | |
Dnase I | Thermo Fisher Scientific | AM2222 | Treat purified RNA to remove any DNA contamination before downstream appications. |
Hydrophobic pen | Thermo Fisher Scientific | 8899 | |
Dulbecco's PBS | Gibco | 14190 | PBS for immunofluorescence protocol. |
Donkey serum | Jackson ImmunoResearch Laoratories, Inc | 017-000-121 | Rehydrate normal donkey serum stock according to the manufacturer's instructions, then dilute an aliquot to 5% for immunofluorescence. Normal goat serum can also be used. |
eMHC antibody | University of Iowa Developmental Studies Hybridoma Bank | F1.652 | |
Collagen VI antibody | Fitzgerald Industries | #70R-CR009x | |
Donkey anti-rabbit AlexaFluor488 | Thermo Fisher Scientific | A21206 | |
Goat anti-mouse IgG1 AlexaFluor546 | Thermo Fisher Scientific | A21123 | |
DAPI (4',6-diamidino-2-phenylindole) | Thermo Fisher Scientific | D1306 | |
Aqueous mounting media: Permafluor | Thermo Fisher Scientific | TA-030-FM | Only use mounting media designed for fluorescent applications with anti-fade properties. |
Glass coverslip | VWR Scientific | 16004-314 | Use for mounting slides at the end of immunofluorescence protocl |
Image analysis software: ImageProExpress | Media Cybernetics, Inc. | Image-Pro Express, or more advanced products | Freeware ImageJ should also work for manual counting. More advanced software with segmentation abiities may allow partial automation of the process. E.g. ImageProPremier. |
Merge and map section images: Photoshop | Adobe | Photoshop | |
Cardiotoxin | Sigma | C9659 | Sigma C9659 has been discontinued. Other options for cardiotoxin are EMD Millipore #217503; American Custom Chemicals Corp. # BIO0000618; or Ge Script # RP17303; but these have not been validated. |
reverse transcription kit: Superscript III First-strand synthesis system | Thermo Fisher Scientific | 18080051 | Any validated, high quality reverse transcription reagents can be used. |
Standard PCR: GoTaq Flexi polymerase system | Promega | M8298 | Any validated, high quality Taq polymerase system can be used. If DNA sequencing is to be used for any application downstream of the PCR, then a high fidelity PCR system should be used instead. |
SYBR green | Thermo Fisher Scientific | S7585 | For use in qPCR when not using a dedicated qPCR master mix. Use with SuperROX (for Applied Biosystems instruments) and GoTaq Flexi polymerase and buffers. |
ROX: SuperROX, 15 mM | BioResearch Technologies, Inc. Novato CA | SR-1000-10 | SuperROX is more stable in the PCR reaction, so it is preferred for use as a qPCR passive reference dye over ROX (carboxy-X-rhodamine). For qPCR with Applied Biosystems instruments |
Real-time PCR | Applied Biosystems | 7900HT |