Summary

Villkorlig Omprogrammering av Pediatric Human Esophageal epitelceller för användning i Tissue Engineering and Disease Investigation

Published: March 22, 2017
doi:

Summary

Utbyggnad av mänskliga pediatriska esofagus epitelceller som utnyttjar villkorad omprogrammering ger utredarna med en patient specifik population av celler som kan användas för att konstruera matstrupen konstruktioner för autolog implantation för behandling av defekter eller skada och fungerar som en reservoar för terapeutiska screeningsanalyser.

Abstract

Identifying and expanding patient-specific cells in culture for use in tissue engineering and disease investigation can be very challenging. Utilizing various types of stem cells to derive cell types of interest is often costly, time consuming and highly inefficient. Furthermore, undesired cell types must be removed prior to using this cell source, which requires another step in the process. In order to obtain enough esophageal epithelial cells to engineer the lumen of an esophageal construct or to screen therapeutic approaches for treating esophageal disease, native esophageal epithelial cells must be expanded without altering their gene expression or phenotype. Conditional reprogramming of esophageal epithelial tissue offers a promising approach to expanding patient-specific esophageal epithelial cells. Furthermore, these cells do not need to be sorted or purified and will return to a mature epithelial state after removing them from conditional reprogramming culture. This technique has been described in many cancer screening studies and allows for indefinite expansion of these cells over multiple passages. The ability to perform esophageal screening assays would help revolutionize the treatment of pediatric esophageal diseases like eosinophilic esophagitis by identifying the trigger mechanism causing the patient’s symptoms. For those patients who suffer from congenital defect, disease or injury of the esophagus, this cell source could be used as a means to seed a synthetic construct for implantation to repair or replace the affected region.

Introduction

Matstrupen vävnadsteknik och eosinofil esofagit (EoE) har varit i fokus för forskning i många laboratorier under det senaste decenniet. Medfödda defekter, såsom esofagusatresi, ses i cirka 1 i 4000 levande födda, vilket resulterar i ofullständig utveckling i matstrupen som leder till oförmåga att äta en. Incidensen och prevalensen av EoE har varit på uppgång sedan identifiering av sjukdomsbegrepp 1993. Förekomsten av EoE varierade från 0,7 till 10 / 100.000 per årsverke och prevalensen varierade från 0,2 till 43 / 100.000 2. En ny attraktiv kirurgisk metod för behandling av långa gap esofagusatresi består i att generera vävnadskonstrukten för implantering med användning av patientens egna celler. Dessa celler i kombination med syntetiska byggnadsställningar kommer att generera en autolog konstruktion som inte kräver immunsuppression. Vissa grupper har redan börjat undersöka osse stamliknande celler för esofageal tissue engineering 3 såväl som användningen av nativa esofagus epitelceller för att återbefolka slemhinnan 4-7. Sjukdomar som finns i matstrupen av pediatriska patienter är ofta svåra att diagnostisera eller studera utan ingripande. Dessutom använder djurmodeller eller in vitro odödlig cellinje modeller för barnsjukdomar som EoE omfattar inte den exakta sjukdomen patogenes eller patientspecifika skillnader 8. Därför är förmågan att studera en patients sjukdomsprocessen in vitro i syfte att identifiera specifika sjukdoms utlösande antigener, utvärdera underliggande mekanismerna och undersöka läkemedelsbehandlingar skulle vara nytt och ge kliniker med information som kan underlätta patientbehandling.

Det har funnits många autologa eller patientspecifika celltyper som har föreslagits för användning i tissue teknik och studera mänskliga sjukdomar patogenes. Emellertid vissa av dessa celltyper är begränsade i sin förmåga att alstra tillräckligt med celler av en viss fenotyp för att ympa en stor byggnadsställning eller utföra hög genomströmning in vitro-studier. Användningen av pluripotenta eller multipotenta stamceller har varit föremål för mycket forskning diskussion, dock begränsningar och tillkortakommanden för att använda dessa celler har beskrivits väl 9. Användningen av mänskliga embryonala stamceller är mycket diskuteras och presenterar många etiska frågor. Viktigast dessa celler bildar teratom, som liknar en tumör, om de inte skiljer sig från deras pluripotent tillstånd före att leverera dem till en levande värd 10. Dessutom skulle användningen av embryonala stamceller inte vara patientspecifika och kan framkalla en allogen svar och behovet av immunsuppression 10. Inducerade pluripotenta stamceller (iPSCs) är pluripotenta celler som kanhärledas från en patients egna celler. Somatiska celler, såsom hudceller, kan induceras att ett pluripotent tillstånd genom att använda en variation av integrativa och icke-integrativa tekniker. Dessa celler fungerar sedan som en patientspecifika cellkällor för vävnadsteknik eller sjukdomsundersökning. Integrationen av oönskat genetiskt material in i dessa celler är ett bekymmer många har beskrivits och även om sekvenserna är fullständigt avlägsnade iPSCs tycks bevara en epigenetisk "minne" i riktning mot den celltyp från vilken de var härledda 11. Dessa celler kommer också att bilda teratom in vivo om inte differentierade före transplantation 11. Många differentieringsprotokoll har undersökts med fokus på epiteliala härstamningar 12, 13, 14, är det dock mycket viktigt att notera att de celltyper som resulterar i slutet av differentiering inte är homogena och only besitter en bråkdel av celltypen av intresse. Detta resulterar i lågt utbyte och behovet av att rena den önskade celltypen. Även iPSCs är en potentiell patientspecifik cellkälla, till processen få en celltyp av intresse för antingen tissue engineering eller sjukdomsundersökning är mycket ineffektivt.

Humana epitelceller har framgångsrikt isolerats från en mängd av både sjuka och icke-sjuk vävnad i människokroppen inklusive: lunga 15, bröst 16, tunntarm 17, kolon 18, urinblåsa 19 och matstrupen 20. Det är viktigt att notera att humana primära celler har ett ändligt antal passager i vilka fenotypen upprätthålls 21, 22. Tyvärr innebär detta att antalet celler som behövs för sjukdomsundersökning eller sådd en konstruerad byggnadsställningför implantation inte kan uppnås. Därför är nya tekniker som behövs för att expandera patientceller och samtidigt bibehålla en epitelial fenotyp. Villkorlig omprogrammering av normala och cancer epitelceller utnyttjar matarceller och ROCK-inhibitor beskrevs 2012 av Liu et al. 2 3. Denna teknik användes för att expandera cancerous epitelceller erhållna från biopsier av prostata- och bröstcancer med användning av bestrålade matarceller, ROCK-inhibitor och villkorlig omprogrammering medel. Målet var att skapa tillräckligt med celler för in vitro-analyser såsom läkemedelsscreening. Denna teknik är i stånd att expandera epitelceller obestämd tid genom "omprogrammering" dessa celler till en stam eller stamfader-liknande tillstånd, som är mycket proliferativ. Det har visats att dessa celler är icke-tumörframkallande och inte har förmågan att bilda teratom 23, 24. Dessutom ingenkromosomavvikelser eller genetiska manipulationer var närvarande efter passage dessa celler i odling med hjälp av denna teknik 23, 24. Viktigast av allt, dessa celler kan bara att differentieras till den nativa celltypen av intresse. Därför erbjuder denna teknik en stor reservoar av patientspecifika epitelceller för sjukdomsundersökning eller vävnadsteknik utan behov av odödliggörande.

Erhålla epitelvävnad från ett visst organ för att studera sjukdomsprocesser är ofta begränsad och inte alltid möjligt på grund av patientens risk. För de patienter som lider av matstrupen sjukdom eller brister, är endoskopisk biopsi hämtning en minimalinvasiv metod för att erhålla epitelvävnad som kan skiljas och villkorligt omprogrammeras för att ge en obestämd cellkälla som är specifik för slemhinnan i det patientens matstrupe. Detta möjliggör sedan för in vitro-studierav epitelcellerna att utvärdera sjukdomsprocesser och skärm för potentiella läkemedel. En sjukdomsprocess som i hög grad skulle kunna dra nytta av denna metod är Eosinophilic Esofagit, som har beskrivits som allergisk sjukdom i matstrupen 8. Allergitester samt terapeutiska metoder kan utvärderas in vitro med hjälp av patientens egna epitelceller och dessa data kan sedan föras till den behandlande läkaren att utveckla individuella behandlingsplaner. Tekniken av villkorad omprogrammering i samband med att erhålla endoskopiska biopsier från pediatriska patienter ger möjlighet att expandera normala esofagus epitelceller på obestämd tid från någon patient. Denna cellkälla kan därför slagit ihop med naturliga eller syntetiska byggnadsställningar att tillhandahålla en patientspecifik kirurgiskt alternativ för defekter, sjukdom eller trauma. Med en obestämd celltal skulle bidra till ingenjör esofagus konstruktioner som besitter en helt reseededlumen med esofageala epitelceller för att hjälpa till att underlätta regenerering av de återstående celltyper.

Protocol

Esofagus biopsier erhölls efter informerat samtycke erhölls från föräldrar / vårdnadshavare för pediatriska patienter och i enlighet med Institutional Review Board (IRB # 13-094). 1. sterilisering av instrument och gelatinlösning Autoklav pincett, rakblad och saxar före hantering vävnad för att förhindra förorening. För att göra 200 ml 0,1% -ig gelatinlösning, kombinera 200 ml destillerat vatten med 0,2 g gelatin. Autoklavera och sval före användning. <p class="jo…

Representative Results

En sammanfattning av de viktigaste stegen i att isolera esofagus epitelceller från patientbiopsier sammanfattas i figur 1. Kolonier av epitelceller bildas i ungefär 4-5 dagar och kommer att omges av fibroblast feeder-celler (Figur 2A). Eftersom dessa kolonier expandera de kommer att slås samman med andra kolonier att bilda större kolonier (Figur 2B). När kulturerna har blivit 70% sammanflytande, måste de utökas (figur 2C)….

Discussion

De viktigaste stegen för att isolera och expandera esofagus epitelceller från patientbiopsier är: 1) på lämpligt sätt dissociera biopsivävnad med minimal celldöd; 2) säkerställa ROCK-inhibitor tillsätts till cellodlingsmediet vid varje mediumbyte; 3) Använd inte fler matarceller än rekommenderas; 4) upprätthålla en ren aseptisk kultur; och 5) passage celler strax före att nå sammanflödet.

På grund av de patientrelaterade skillnader i biopsiprover erhållna för villkorlig …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We would like to acknowledge Connecticut Children’s Medical Center Strategic Research Funding for supporting this work.

Materials

Primocin InVivogen ant-pm2
Isopentane Sigma Aldrich 277258-1L
Gelatin From Porcine Skin Sigma Aldrich G1890-100G
DMEM Thermofisher Scientific 11965092
Cryomold TissueTek 4565
Cryomatrix OCT Thermofisher Scientific 6769006
15ml Conical Tubes Denville Scientific C1017-p
Complete Keratinocyte Serum Free Medium Thermofisher Scientific 10724011
Penicillin Streptomycin Thermofisher Scientific 15140122
Glutamax Thermofisher Scientific 35050061
Insulin Solution Sigma Aldrich I9278-5ml
Human Epidermal Growth Factor (EGF) Peprotech AF-100-15
ROCK Inhibitor (Y-27632) Fisher Scientific 125410
F-12 Medium  Thermofisher Scientific 11765054
Fetal Bovine Serum Denville Scientific FB5001
Dispase Thermofisher Scientific 17105041
0.05% Trypsin-EDTA Thermofisher Scientific 25300062
0.25% Trypsin-EDTA Thermofisher Scientific 25200072
100mm Dishes Denville Scientific T1110-20
150mm Dishes Denville Scientific T1115
50ml Conicals Denville Scientific   C1062-9 
Phosphate Buffered Saline Tablets Fisher Scientific BP2944-100
5ml Pipettes Fisher Scientific 1367811D
10ml Pipettes Fisher Scientific 1367811E
25ml Pipettes Fisher Scientific 1367811
9" Pasteur Pipettes Fisher Scientific 13-678-20D
NIH 3T3 Cells ATCC CRL1658

References

  1. Clark, D. C. Esophageal atresia and tracheoesophageal fistula. Am Fam Physician. 59 (4), 910-920 (1999).
  2. Soon, I. S., Butzner, J. D., Kaplan, G. G., deBruyn, J. C. Incidence and prevalence of eosinophilic esophagitis in children. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 57 (1), 72-80 (2013).
  3. Sjöqvist, S., et al. Experimental orthotopic transplantation of a tissue-engineered oesophagus in rats. Nat Commun. 5, 3562 (2014).
  4. Saxena, A. K. Esophagus tissue engineering: designing and crafting the components for the ‘hybrid construct’ approach. Eur J Pediatr Surg. 24 (3), 246-262 (2014).
  5. Saxena, A. K., Ainoedhofer, H., Höllwarth, M. E. Culture of ovine esophageal epithelial cells and in vitro esophagus tissue engineering. Tissue Eng Part C Methods. 16 (1), 109-114 (2010).
  6. Saxena, A. K., Kofler, K., Ainodhofer, H., Hollwarth, M. E. Esophagus tissue engineering: hybrid approach with esophageal epithelium and unidirectional smooth muscle tissue component generation in vitro. J Gastrointest Surg. 13 (6), 1037-1043 (2009).
  7. Macheiner, T., Kuess, A., Dye, J., Saxena, A. K. A novel method for isolation of epithelial cells from ovine esophagus for tissue engineering. Biomed Mater Eng. 24 (2), 1457-1468 (2014).
  8. Mishra, A. Significance of Mouse Models in Dissecting the Mechanism of Human Eosinophilic Gastrointestinal Diseases (EGID). J Gastroenterol Hepatol Res. 2 (11), 845-853 (2013).
  9. Medvedev, S. P., Shevchenko, A. I., Zakian, S. M. Induced Pluripotent Stem Cells: Problems and Advantages when Applying them in Regenerative Medicine. Acta Naturae. 2 (2), 18-28 (2010).
  10. Metallo, C. M., Azarin, S. M., Ji, L., de Pablo, J. J., Palecek, S. P. Engineering tissue from human embryonic stem cells. J Cell Mol Med. 12 (3), 709-729 (2008).
  11. Lee, H., Park, J., Forget, B. G., Gaines, P. Induced pluripotent stem cells in regenerative medicine: an argument for continued research on human embryonic stem cells. Regen Med. 4 (5), 759-769 (2009).
  12. Ghaedi, M., et al. Human iPS cell-derived alveolar epithelium repopulates lung extracellular matrix. J Clin Invest. 123 (11), 4950-4962 (2013).
  13. Huang, S. X., et al. Efficient generation of lung and airway epithelial cells from human pluripotent stem cells. Nat Biotechnol. , (2013).
  14. Ogaki, S., Morooka, M., Otera, K., Kume, S. A cost-effective system for differentiation of intestinal epithelium from human induced pluripotent stem cells. Sci Rep. 5, 17297 (2015).
  15. Ehrhardt, C., Kim, K. J., Lehr, C. M. Isolation and culture of human alveolar epithelial cells. Methods Mol Med. 107, 207-216 (2005).
  16. Zubeldia-Plazaola, A., et al. Comparison of methods for the isolation of human breast epithelial and myoepithelial cells. Front Cell Dev Biol. 3, 32 (2015).
  17. Spurrier, R. G., Speer, A. L., Hou, X., El-Nachef, W. N., Grikscheit, T. C. Murine and human tissue-engineered esophagus form from sufficient stem/progenitor cells and do not require microdesigned biomaterials. Tissue Eng Part A. 21 (5-6), 906-915 (2015).
  18. Roche, J. K. Isolation of a purified epithelial cell population from human colon. Methods Mol Med. 50, 15-20 (2001).
  19. Southgate, J., Hutton, K. A., Thomas, D. F., Trejdosiewicz, L. K. Normal human urothelial cells in vitro: proliferation and induction of stratification. Lab Invest. 71 (4), 583-594 (1994).
  20. Kalabis, J., et al. Isolation and characterization of mouse and human esophageal epithelial cells in 3D organotypic culture. Nat Protoc. 7 (2), 235-246 (2012).
  21. Geraghty, R. J., et al. Guidelines for the use of cell lines in biomedical research. Br J Cancer. 111 (6), 1021-1046 (2014).
  22. Lodish, H., Berk, A., Zipursky, S. L., et al. . Molecular Cell Biology. , (2000).
  23. Liu, X., et al. ROCK inhibitor and feeder cells induce the conditional reprogramming of epithelial cells. Am J Pathol. 180 (2), 599-607 (2012).
  24. Suprynowicz, F. A., et al. Conditionally reprogrammed cells represent a stem-like state of adult epithelial cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (49), 20035-20040 (2012).
  25. Davis, A. A., et al. A human retinal pigment epithelial cell line that retains epithelial characteristics after prolonged culture. Invest Ophthalmol Vis Sci. 36 (5), 955-964 (1995).
  26. Carro, O. M., Evans, S. A., Leone, C. W. Effect of inflammation on the proliferation of human gingival epithelial cells in vitro. J Periodontol. 68 (11), 1070-1075 (1997).
check_url/55243?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Jensen, T. J., Foster, C., Sayej, W., Finck, C. M. Conditional Reprogramming of Pediatric Human Esophageal Epithelial Cells for Use in Tissue Engineering and Disease Investigation. J. Vis. Exp. (121), e55243, doi:10.3791/55243 (2017).

View Video