Här presenterar vi ett protokoll för en mosaik märkningsteknik som tillåter visualisering av neuron härledda från en gemensam ursprungscell i två distinkta färger. Detta underlättar neurala härstamning analys med möjlighet att födelsehållande enskilda nervceller och studera geners funktion i samma nervceller i olika individer.
M osaic ANALYS med en r epressible c ell m Arker (MARCM) är en positiv mosaik märkningssystem som har i stor utsträckning i Drosophila neurobiologiska studier för att skildra intrikata morfologier och manipulera funktionen av gener i delmängder av nervceller inom annars omärkta och ostörda organismer. Genetiska mosaiker genereras i MARCM systemet förmedlas genom ställesspecifik rekombination mellan homologa kromosomer inom dividera föregångarceller för att producera både märkta (MARCM kloner) och omärkta dotterceller under mitos. En förlängning av MARCM metod, kallad twin-spot MARCM (tsMARCM), etiketter både av tvilling celler härledda från en gemensam stamfader med två distinkta färger. Denna teknik har utvecklats för att göra det möjligt för hämtning av nyttig information från både hemi-linjerna. Genom omfattande analys av olika par av tsMARCM kloner tillåter tsMARCM systemet högupplösta neurala härstamning Mapping för att avslöja den exakta födelseordning de märkta nervceller som produceras från vanliga stamceller. Dessutom tsMARCM systemet sträcker sig också genfunktion studier genom att tillåta fenotypisk analys av identiska nervceller av olika djur. Här beskriver vi hur man tillämpa tsMARCM systemet för att underlätta studier av neural utveckling i Drosophila.
Hjärnan, består av ett stort antal och olika typer av nervceller, begåvar djur med förmåga att uppfatta, bearbeta och svara på utmaningarna från den yttre världen. Neuroner i den vuxna Drosophila centrala hjärnan är härledda från ett begränsat antal av neurala stamceller, som kallas neuroblaster (NBS), under utveckling en, två. De flesta av NBS deltar i hjärnan neurogenes i Drosophila genomgå asymmetrisk division att generera självförnyande NBs och ganglion moderceller (GMC), och GMC går sedan genom ytterligare en runda av division för att producera två dotterceller som differentierar till neuroner 3 (Figur 1A ). På grund av intrikat av neuronal morfologi och de utmaningar som är förknippade med att identifiera specifika nervceller, en positiv mosaik märkning teknik, mosaik analys med en undertryckcellmarkör (MARCM), uppfanns för att göra det möjligt för visualization av en enda neuron eller en liten delmängd av nervceller av befolkningen i omgivande, omärkta neuron 4.
MARCM utnyttjar flippas (FLP) / FLP måligenkännande (FRT) system för att förmedla platsspecifik rekombination mellan homologa kromosomer inom en skiljeföregångare cell som bär en heterozygot allel av en repressorgen, vars uttryck normalt hämmar uttryck av en reportergen 4. Efter den mitotiska delning, är de rekombinanta kromosomer segregeras till enkelceller, så att en cell innehåller homozygota alleler av repressor-genen och den andra cellen har ingen repressorgen-expressionen av reportern i den cellen (och dess ättlingar) är inte längre blockerad 4. Tre klonala mönster finns vanligen i en MARCM experiment när FLP är stokastiskt induceras i NBs eller GMC: encelliga och två-cell-GMC-kloner, som skildrar neuronal morfologi vid encelliga Upplösning in, och flercelliga-NB-kloner, som avslöjar hela morfologiska mönster av neuron härledda från en gemensam NB (Figur 1B). Den MARCM teknik har i stor utsträckning i Drosophila neurobiologiska studier, bland annat i neuronal typbeteckning för att rekonstruera hjärnan hela kabelnätverk, analyser neurala härstamning för att avslöja utvecklingshistoria av nervceller, fenotypisk karakterisering av genfunktioner involverade i cell öde specifikation, och neuronal morfogenes och differentiering Studier 5, 6, 7, 8, 9, 10. Eftersom konventionell MARCM etiketter endast en av de två dotterceller (och härstamningar) efter den inducerade mitotiska rekombinationshändelsen, är potentiellt användbar information från den omärkta sidan förlorade. Denna begränsning hindrar tillämpningen av den grundläggande MARCM systemet till högupplösta analyser av många neurala linjer som byter cell öden i tempo eller precision analyser av genfunktioner i identiska neuroner i olika djur 11, 12.
Twin plats MARCM (tsMARCM) är ett avancerat system som märker neuroner som härrör från en gemensam stamfader med två distinkta färger, vilket möjliggör återvinning av nyttig information från båda sidor av de två celler och därmed övervinna begränsningen av den ursprungliga MARCM systemet 11 ( Figur 2A – 2C). I tsMARCM systemet två RNA-interferens (RNAi) baserade suppressorer ligger på trans-platser av homologa kromosomer inom en föregångare cell, och uttrycket av dessa suppressorer hämma självständigt uttryck för deras respektive reportrar (Figur 2B). Efter platsspecifik mitotiska rekombination förmedlad genom FLP / FRT-systemet, TWo RNAi-baserade suppressorer blivit segregerade till enkelceller för att tillåta uttrycket av distinkta reportrar (figur 2b). Två klonala mönster, encelliga samband med encelliga kloner och två-cell-GMC i samband med flercelliga-NB-kloner, typiskt sett i en tsMARCM experiment (figur 2C). Information som härrör från den ena sidan av de två cellerna kan användas som referens för den andra sidan, vilket möjliggör hög upplösning neurala härstamning analyser, såsom födelsehållande av märkta nervceller, och fenotypiska analyser av identiska nervceller i olika djur för exakt undersökning av nerv geners funktion 11, 12. Här presenterar vi en steg-för-steg-protokollet beskriver hur man genomför en tsMARCM experiment, som kan användas av andra laboratorier för att bredda sina studier av neural utveckling (liksom utvecklingen av andra vävnader, i förekommande fall) i Drosophila.
Kritiska steg i protokollet
Steg 1.1.1, 1.2.1, 2.3, 2.5, och 3.2 är kritiska för att erhålla goda tsMARCM resultat. Vävnadsspecifika -GAL4 förare som inte uttrycker GAL4 i neurala stamceller är att föredra för steg 1.1.1 och 1.2.1. Undvik över trängs djuren odlas i fly-mat flaskor i steg 2,3. Eftersom induktionen latens, expressionsnivån av FLP vid värmechock, och den genomsnittliga delningstiden av neurala progenitorceller (dvs., NBS och GMC) inte är kända, är …
The authors have nothing to disclose.
Detta arbete stöddes av ministeriet för vetenskap och teknik (MOST 104-2311-B-001-034) och Institutet för Cell- och organismbiologi, Academia Sinica, Taiwan.
Carbon dioxide (CO2) | Local vendor | n.a. | Anesthetize flies |
CO2 pad | Local vendor | n.a. | Sort, cross and transfer flies |
10x PBS pH 7.4 | Uniregion Bio-Tech (or other vendors) | PBS001 | Dissect, rinse, wash and immunostain fly brains |
Formaldehyde | Sigma-Aldrich | 252549 | Fix fly brains |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T8787 | Rinse, wash and immunostain fly brains |
Normal goat | Jackson ImmunoResearch | 005-000-121 | Immunostain fly brains |
serum | |||
Rat anti-mouse CD8 antibody | Invitrogen | MCD0800 | Immunostain fly brains |
Rabbit anti-DsRed antibody | Clonetech | 632496 | Immunostain fly brains |
Mouse anti-Brp antibody | Developmental Studies Hybridoma Bank | nc82 | Immunostain fly brains |
Goat anti-rat IgG antibody conjugated with Alexa Fluor 488 | Invitrogen | A11006 | Immunostain fly brains |
Goat anti-rabbit IgG antibody conjugated with Alexa Fluor 546 | Invitrogen | A11035 | Immunostain fly brains |
Goat anti-mouse IgG antibody conjugated with Alexa Fluor 647 | Invitrogen | A21236 | Immunostain fly brains |
SlowFade gold antifade reagent | Molecular Probes | S36936 | Mount fly brains and protect quenching of fluorescence |
PYREX 9 depression glass spot plate | Corning | 7220-85 | Dissect, rinse, wash and immunostain fly brains |
Sylgard 184 silicone elastomer kit | World Precision Instruments | SYLG184 | Make black Sylgard dishes to protect forceps during brain dissection |
Activated charcoal | Sigma-Aldrich | 242276-250G | Make black Sylgard dishes |
Dumont #5 forceps | Fine Science Tools | 11252-30 | Dissect and mount fly brains |
Micro slide | Corning | 2948-75×25 | Mount fly brains |
Micro cover glass No.1.5 | VWR International | 48366-205 | Mount fly brains |
Nail polish | Local vendor | not available | Seal micro cover glass on micro slides |
Incubator | Kansin Instruments | LTI603 | culture flies at 25°C |
(or other vendors) | |||
Water bath | Kansin Instruments | WB212-B2 | Induce heat-shock in flies at 37°C |
(or other vendors) | |||
Orbital shaker | Kansin Instruments | OS701 | Wash and immunostain fly brains |
(or other vendors) | |||
Dissection microscope | Leica | EZ4 | Sort, cross and transfer flies; Dissect, rinse, wash and immunostain fly brains |
Confocal microscope | Zeiss (or other vendors) | LSM 700 (or other models) | Image tsMARCM clones |
image-processing software 1 (e.g., Zeiss LSM image browser) |
Zeiss | not available | Project stacks of confocal images |
image-processing software 2 (e.g., Image-J) |
not available | not available | Count cell number of tsMARCM clones |