Summary

Estrazioni sequenziale sale per l'analisi di massa di cromatina associazione proprietà di complessi di rimodellamento della cromatina

Published: October 02, 2017
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Summary

Estrazione del sale sequenziale delle proteine della cromatina associata è uno strumento utile per determinare le proprietà di associazione dei complessi della proteina grande. Questo metodo può essere impiegato per valutare il ruolo delle singole subunità o domini dell’affinità complessiva di una proteina complessa di massa della cromatina.

Abstract

Delucidazione delle proprietà dell’associazione di proteine della cromatina-targeting può essere molto impegnativa a causa della natura complessa della cromatina e la natura eterogenea dei mammiferi più complessi modificante la cromatina. Per superare questi ostacoli, abbiamo adattato un’analisi sequenziale estrazione del sale (SSE) per valutare le affinità relativa di legame dei complessi cromatina associato. Questo test semplice e può essere utilizzato da non esperti per valutare la differenza relativa affinità di due complessi correlati, i cambiamenti nell’affinità di un complesso quando una subunità viene persa o un singolo dominio è inattivato e il cambiamento in obbligatoria affinità di legame dopo alterazioni al paesaggio della cromatina. Sospendendo in sequenza nuovamente alla rinfusa della cromatina in quantità crescenti di sale, siamo in grado di profilare l’eluizione di una particolare proteina dalla cromatina. Utilizza questi profili, siamo in grado di determinare come le alterazioni in un complesso modificante la cromatina o alterazioni all’ambiente della cromatina influenzano interazione di legame. SSE di accoppiamento con altri saggi in vitro e in vivo , possiamo determinare i ruoli dei singoli domini e delle proteine sulla funzionalità di un complesso in una varietà di ambienti di cromatina.

Introduction

Regolamento del DNA in cellule eucariotiche è un sistema complesso e sofisticato che è strettamente controllato da un assortimento di proteine che coordinano le risposte agli stimoli intracellulari ed extracellulari. DNA è avvolto intorno octamers dell’istone di nucleosomi forma, che possono essere liberamente distribuiti lungo DNA o compattati in bobine stretto1. Questo arrangiamento strutturale del DNA e gli istoni è detta cromatina, che è regolata da una rete di proteine che leggere, scrivere e cancellare le modifiche post traduzionale (PTM) su istoni2. Alcune istone PTMs, quali acetilazione, cambiare la carica dell’amminoacido sono depositati, alterando le interazioni tra gli istoni e il DNA2. Istone PTMs servono anche a reclutare regolatori trascrizionali, remodelers della cromatina, apparato di riparazione di danni del DNA e replicazione del DNA a specifiche regioni del genoma3.

Maggior parte dei metodi per lo studio delle interazioni della cromatina o sonda interazioni su piccola scala o coinvolgere grandi analisi genoma. Studi di binding in vitro spesso utilizzano i singoli domini ricombinanti con istone peptidi o DNA in saggi quali analisi di spostamento di elettroforesi di mobilità (EMSA), calorimetria isotermica di titolazione, polarizzazione di fluorescenza e peptide trazioni alla lat machine. Perché queste analisi in genere concentrano su un dominio di singole proteine, essi facilitano la comprensione di un piccolo pezzo del puzzle, ma non ci permettono di capire la natura cooperativa di proteine multidominio, figuriamoci il loro ruolo in multi-proteina complessi. Dalla composizione eterogenea dei mammiferi più complessi modificante la cromatina è aggiunto un ulteriore livello di complessità. Questa eterogeneità di proteina, in combinazione con la natura dinamica del paesaggio della cromatina, rende difficile per ricapitolare l’ in vivo collegamento interazioni di proteine cromatiniche a cromatina in vitro.

Metodi in vivo hanno fatto progressi significativi; Tuttavia, sono spesso costoso, richiede tempo e tecnicamente impegnativo. Immunoprecipitazione della cromatina seguita da sequenziamento (ChIP-seq) è molto utile per determinare la localizzazione delle proteine e modificazioni istoniche in tutto il genoma, ma richiede notevole ottimizzazione4. Le proteine sono spesso reticolato di cromatina per preservare interazioni; Tuttavia, questo può produrre interazioni artificiale e potrebbe causare epitopo5di mascheramento. Inoltre, l’immunoprecipitazione (IP) richiedono anticorpi altamente specifici e vasta ottimizzazione di taglio del DNA e condizioni IP da ChIP-qPCR utilizzando un sito di legame noto, che spesso non è disponibile a priori. Dopo l’ottimizzazione delle condizioni di ChIP, elaborazione dei campioni è costosa e richiede parecchie settimane ai mesi di sequenza e analizzare. Anche se questo metodo ha un valore inestimabile per identificare la localizzazione della cromatina associata proteine in tutto il genoma, il costo e impegno di tempo rendono proibitivo per utilizzare questo metodo per generare le ipotesi su come piccole modifiche possono influenzare le proprietà di associazione globale .

In questo articolo, descriviamo come un’analisi sequenziale estrazione del sale (SSE) può essere usata per esaminare i profili di associazione globale di cromatina-proteine e distinguere come cambi in un profilo proteico, complesso, o globale PTM possono alterare le interazioni. Anche se le estrazioni sale sono una tecnica comunemente e ampiamente utilizzata, dimostriamo come questo metodo sequenza è altamente riproducibile e versatile. SSE permette di caratterizzare come una singola subunità di un complesso o anche un singolo dominio contribuisce l’affinità complessiva del complesso per cromatina alla rinfusa. SSE può essere utilizzata anche per determinare se l’associazione di una proteina è influenzato dai cambiamenti nel paesaggio della cromatina, fornendo interessanti ipotesi per istone mark targeting che possono essere confermate mediante ChIP-seq e altri studi di ampia del genoma.

Abbiamo adattato originariamente questo metodo da Wu et al., per esaminare la funzione di Polybromo1 (PBRM1) nell’associazione del PBAF della cromatina remodeler6,7. Utilizzando questa tecnica, abbiamo determinato il ruolo di PBRM1 per l’associazione di cromatina all’interno del complesso di rimodellamento della cromatina PBAF e quindi determinato il contributo relativo della sei bromodomains singoli per questa funzione7.

Qui descriviamo come ottimizzare questo metodo per esplorare associazione della cromatina in diversi tipi cellulari, per valutare l’affinità obbligatoria relativa della cromatina simile modifica complessi, per esaminare lo spostamento di una proteina dalla cromatina da un inibitore chimico, e per determinare gli effetti dell’associazione di cromatina dopo alterazioni al paesaggio della cromatina.

Protocol

1. preparazioni preparare 100 mL di soluzione ipotonica Buffer a: 0,3 M saccarosio, 60 mM KCl, 60 mM Tris-HCl pH 8.0, 2mm EDTA e 0,5% NP-40. Conservare a 4 ° c. Nota: Alcune linee cellulari, ad esempio di HEK293T, richiedono condizioni meno rigorose di lisante. Se i nuclei lisare facilmente, usare modifica Buffer a: 25 mM HEPES pH 7,6, 25 mM KCl, 5 mM MgCl 2, EDTA 0,05 mM, 0,1% NP-40 e 10% glicerolo. Preparare una soluzione madre di 250 mL di soluzione di x mRIPA 2: 100 mM Tris-HCl…

Representative Results

In questa carta, si dimostrano i vantaggi e le applicazioni del metodo di estrazione del sale comunemente usato sequenziale (SSE) che abbiamo adattato dalla letteratura6. Nella Figura 1, mettiamo a confronto la riproducibilità di SSE all’estrazione delle proteine non sequenziale rilevando i modelli di eluizione di ARID1a e PBRM1. Osserviamo costantemente che ARID1a, una subunità BAF, eluisce principalmente a 200mm NaCl e PBRM1, un’es…

Discussion

Caratterizzazione delle interazioni della proteina e della cromatina attraverso estrazioni sale è un metodo comune che è stato impiegato per decenni14,15; Tuttavia, esso non è stato sistematicamente ottimizzato prima di rivelare la sua utilità completo. Dimostriamo come questo metodo sequenza consente di distinguere le modifiche nell’associazione della cromatina quando la proteina o per l’ambiente è alterata in modo rapido e poco costoso. SSE è altamente ad…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato supportato da un premio di studioso di V (V2014-004) e un erudito V plus award (D2016-030) dalla Fondazione V for Cancer Research e un American Cancer Society istituzionale Research Grant (ACS IRG Grant 58-006-53) al centro di Università di Purdue per cancro Ricerca. E. g. P. è stato sostenuto dal Borch Graduate Endowment Award al reparto di farmacologia molecolare e chimica farmaceutica di Purdue University.

Materials

Sodium Chloride, Crystal 2.5 Kg AR (ACS) Avantor/Macron 7581-06
Sucrose, Crystal 500 G AR¨ (ACS) Avantor/Macron 8360-04
Potassium Chloride, Granular 500 G AR¨ (ACS) Avantor/Macron 6858-04
Trizma(R) base,Primary Standard and Buffer, >=99.9% (titration), crystalline Sigma-Aldrich T1503-1kg
EDTA (Ethylenedinitrilo) Tetraacetic Acid, Disodium Salt, Dihydrate 125 G AR (ACS) Avantor/Macron 4931-02
NONIDET P-40 SUBSTRATE, 100mL UN3082 Amresco E109-100ML
HEPES Buffer Solution (1M) Gibco 15630-080
Magnesium Chloride, 6-Hydrate, Crystal 500 G AR¨ (ACS) Avantor/Macron 5958-04
GLYCEROL, 1L Amresco 0854-1L
DEOXYCHOLIC ACID SODIUM SALT, 100g Amresco 0613-100G
Eppendorf Research plus pipette Fisher Scientific 13-690-032
Eppendorf 5424 R refrigerated microcentrifuge Eppendorf 5424 R
Secondary mouse IgG HRP-linked Cell Signaling 7076
Secondary rabbit IgG HRP-linked Cell Signaling 7074
BMI-1 antibody Millipore
PBRM1 antibody Bethyl A301-591A
ARID1a antibody Santa Cruz sc-32761
BRD4 antibody Bethyl A301-9852a
(+) JQ1 Cayman Chemical Company 11187
SAHA Cayman Chemical Company 10009929
Doxorubicin AK Scientific 25316-40-9
Dimethyl Sulfoxide (DMSO) Macron 4948-02
Mini Trans-Blot Cell BioRad 1703930
Mini Gel Tank ThermoFisher A25977
Albumin, Bovine (BSA) Amresco 0332-100g Used in as a 5% solution in PBS-T as blocking solution for Western blots
Bolt MOPS SDS Running Buffer (20x) Life Technologies B0001
Bolt LDS Sample Buffer (4x) Life Technologies B0007
PageRuler Plus Prestained Protein Ladder, 10 to 250 kDa ThermoFisher 26619
Methyl Alcohol, Anhydrous Macron 3041-10
Trypsin kEDTA, 1X Cellgro 25-053-CI
SODIUM AZIDE, 250g UN1687 Amresco 0639-250G
SODIUM DODECYL SULFATE (SDS)500g UN1325 Amresco 0227-500G
Glycine,for electrophoresis, >=99% Sigma-Aldrich G8898-1kg
BigTop Microcentrifuge Tubes, Polypropylene VWR 20170-333
1000 µL Pipet Tips VWR 83007-382
NuPAGE Bis-Tris Precast Gels 4-12% Invitrogen NW04125BOX
Leupeptin Hemisulfate, 5 MG RPI Research Products 22035-0.005 Used for Protease inhibitor solution.
APROTININ, 10 MG RPI Research Products 20550-0.01 Used for Protease inhibitor solution.
PEPSTATIN A, 5 MG RPI Research Products 30100-0.005 Used for Protease inhibitor solution.
OVCA429 cells Gift from Karen Cowden Dahl. Ph.D.
HEK293T ATCC CRL-3216
HeLa cells ATCC CCL-2
McCoy's 5A media Corning Mediatech 10-050-CV
DMEM Corning Mediatech 10-013-CV
Minimum Essential Medium (MEM), Powder Corning Mediatech 50-011-PC
MEM NEAA (100X) non-essential amino acid Gibco 11140-050
FB-11: Fetal Bovine Serum, U.S. Source Omega Scientific FB-11
Penicillin-Streptomycin Solution Life Technologies 15140-122
Glutamax Life Technologies 35050-061
sodium pyruvate Life Technologies 11360070
VWR Power Source VWR 13-690-032

References

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Porter, E. G., Connelly, K. E., Dykhuizen, E. C. Sequential Salt Extractions for the Analysis of Bulk Chromatin Binding Properties of Chromatin Modifying Complexes. J. Vis. Exp. (128), e55369, doi:10.3791/55369 (2017).

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