Summary

Modning av human-stamcelle avledet kardiomyocytter i Biowires ved hjelp av elektrisk stimulering

Published: May 06, 2017
doi:

Summary

Hjerte biowire plattformen er en in vitro metode som brukes til å modne humane embryonale og induserte pluripotent stamcelle-avledet kardiomyocytter (hPSC-CM) ved å kombinere tredimensjonale celledyrking med elektrisk stimulering. Dette manuskriptet presenterer detaljert oppsett av hjerte biowire plattformen.

Abstract

Humane pluripotente stamceller celleavledede kardiomyocytter (hPSC-CMS) har vært en lovende celle kilde, og har således oppmuntret til undersøkelse av deres potensielle anvendelser i hjerteundersøkelser, inkludert medisiner, sykdom modellering, regenerering av vev, og regenerativ medisin. Imidlertid celler som produseres av eksisterende protokoller viser et utvalg av umodenhet sammenlignet med native voksen ventrikulære kardiomyocytter. Mange forsøk har vært gjort for å modne hPSC-CMS, med bare moderat modning oppnådd så langt. Derfor, en konstruert system, kalt biowire, har blitt utviklet ved å gi både fysiske og elektriske signaler for å lede hPSC-CMs til en mer moden tilstand in vitro. Systemet benytter en mikrofabrikert plattform for å pode hPSC-CMs i kollagen type I gelere sammen en stiv mal sutur for å montere inn på linje hjertevev (biowire), som utsettes for elektrisk feltstimulering med en progressivt økende frekvens. Sammenlignet med stimulerte kontroller,stimulert biowired kardiomyocytter oppviser en forbedret grad av strukturell og elektrofysiologisk modning. Slike forandringer er avhengig av stimulering hastighet. Dette manuskriptet beskriver i detalj design og etablering av biowires.

Introduction

Cellbasert terapi er en av de mest lovende og undersøkte strategier for å oppnå hjertereparasjon / regenerering. Det har blitt hjulpet av hjertevevsteknikk og samlevering av biomaterialer 1 , 2 . De fleste tilgjengelige cellekilder har blitt studert i dyremodeller for deres potensielt gunstige effekter på skadede, syke eller eldre hjerter 3 . Spesielt er det gjort betydelige anstrengelser for å bruke hPSC-avledede kardiomyocytter (hPSC-CM), en potensielt ubegrenset autolog cellekilde for hjertevevsteknikk. HPSC-CM kan produseres ved hjelp av flere etablerte protokoller 4 , 5 , 6 . Imidlertid viser de oppnådde cellene føtalignende fenotyper, med et område av umodne egenskaper sammenlignet med voksne ventrikulære kardiomyocytter 7 , </sup> 8. Dette kan være et hinder for anvendelsen av hPSC-CMS som modeller for voksne hjertevevet i legemiddelforskning forskning og i utviklingen av voksne hjertesykdomsmodeller 9.

For å overvinne denne begrensningen av fenotypiske umodenhet, har nye tilnærminger vært aktivt undersøkt for å fremme cardiomyocyte modning. Tidlige studier viste effektive pro-modnings egenskaper i neonatalt rotte-kardiomyocytter via cyklisk mekanisk 10 eller elektrisk stimulering 11. Gel komprimering og cyklisk mekanisk stimulering, ble også vist seg å forbedre noen aspekter av hPSC-CM modning 12, 13, med minimal forbedring av de elektrofysiologiske og kalsiumhåndteringsegenskaper. Derfor, et plattformsystem som kalles "biologisk wire" (biowire) ble utviklet ved å tilveiebringe både strukturell signaler og elektrisk felt stimulation for å øke modningen av hPSC-CMs 14. Dette systemet bruker et mikrofabrikert plattform for å skape innrettet hjertevevet som er mottakelig for elektrisk feltstimulering. Dette kan brukes til å forbedre den strukturelle og elektrofysiologisk modenhet av hPSC-CMs. Her beskriver vi detaljene gjøre slike biowires.

Protocol

1. Master Design og Fabrication MERK: Bruk myk litografi for enhetens fabrikasjon. Lag en tolags SU-8 master for polydimetylsiloksan (PDMS) støping. Design enheten ved hjelp av en design og utkast programvare ( Figur 1A , venstre). Tegn hvert lag av masteren separat. Skriv ut enhetens design på to fotomasker ved 20.000 dpi, tilsvarende de to lagene i master 15 . Sett enhetsmønsteret så gjennomsiktig og omgivelsene er like mørke; Masker…

Representative Results

Den rasjonelle for bruk av en sutur i biowires er å tjene som et templat for dannelsen av 3D-konstrukter som tilpasses i en akse og som etterligner formen av hjerte fibre. Vi viser at etter syv dagers dyrking i biowire, celler ombygd gelen rundt suturen (figur 3A). Cellene montert langs aksen av suturen for å danne innrettet kardialt vev (figur 3). Etter 7 dager forkultur ble biowires kastet 7 dager etter elektrisk feltstimulering og videre oppviste eg…

Discussion

Dette manuskriptet beskriver oppsett og gjennomføring av konstruert plattform, biowire, for å forbedre modning av hPSC-CMS. Anordningen kan fremstilles i standard microfabrication anlegg, og biowires kan fremstilles med vanlige celledyrkningsteknikker og en elektrisk stimulator.

Så vidt vi vet, er det ingen rapporterte metode lik biowires. Denne strategien viser at forbedrede modnings egenskaper var avhengig av den elektriske stimulering regime, som vist ved den større modningsnivå man …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av et stipend-i-aid fra hjertet og Stroke Foundation of Canada (G-14-0006265), driftstilskudd fra den kanadiske Institutes of Health Research (137352 og 143066) og JP Bickell fundament stipend (1013821 ) til SSN.

Materials

L-Ascorbic acid Sigma A-4544 hPSC-CM culture media componet
AutoCAD Autodesk, Inc Software to design device
Carbon rods, Ø 3 mm Electrical stimulator chamber component
Collagen, type 1, rat tail BD Biosciences 354249 Collagen gel: 2.1 mg/ml of rat tail collagen type I in 24.9 mM glucose, 23.8 mM NaHCO3, 14.3 mM NaOH, 10 mM HEPES, in 1xM199 media with 10 % of growth factor-reduced Matrigel.
Collagenase type I  Sigma C0130 0.2% collagenase type I (w/v) and 20% FBS (v/v) in PBS with Ca2+ and Mg2+. Sterilize with 0.22 μm filter and make 12 ml aliquots. Store at -20 °C.
Deoxyribonuclease I (DNase I) EMD Millipore 260913-25MU Make 1 mg/ml DNase I stock solution in water. Filter sterile and store 0.5 ml aliquots at −20 °C
Drill & drill bits (Ø 1mm and 2 mm) Dremel Drill holes in polycarbonate frames
Electrical stimulator Grass s88x
Fetal bovine serum (FBS) WISENT Inc. 080-450
D-(+)-Glucose  Sigma G5767 Collagen gel component
L-Glutamine Thermo Fisher Scientific 25030081
H2O MilliQ 18.2 MΩ·cm at 25 °C, ultrapure, to make all solutions
HEPES Sigma H4034 Collagen gel component
Hot plate Torrey Pines HS40
Iscove's Modified Dulbecco's Medium(IMDM) Thermo Fisher Scientific 12440053
Mask aligner EVG  EVG 620
Matrigel, growth factor reduced  Corning 354230 Collagen gel component
Medium 199 (M199) Thermo Fisher Scientific 11150059 Collagen gel component
Monothioglycerol (MTG) Sigma M-6145 hPSC-CM culture media componet
Orbital shaker VWR 89032-088
Penicillin/Streptomycin (P/S) Thermo Fisher Scientific 15070063
Phosphate-buffered saline (PBS) with Ca2+ and Mg2+  Thermo Fisher Scientific 14040133
Plate (6-well) Corning 353046
Plate (6-well), low attachment Corning 3471
Platinum wires, 0.2 mm Electrical stimulator chamber component
Polydimethylsiloxane (PDMS) Dow Corning Sylgard 184
Propylene glycol monomethyl ether acetate (PGMEA) Doe & Ingalls Inc. To develop the wafer
Pouch, peel-open Convertors 92308 For steam sterilization
Silicon wafer, 4-inch UniversityWafer Inc.
Sodium bicarbonate (NaHCO3) Sigma S5761 Collagen gel component
Sodium hydroxide Sigma S8045 Collagen gel component
Sprin coater Specialty Coating Systems G3P-8
StemPro-34 culture medium Thermo Fisher Scientific 10639011 hPSC-CM culture medium. To make 50 ml, add 1.3 ml supplement, 500 μl of 100× L-Glutamine, 250 μl of 30 mg/ml transferrin, 500 μl of 5 mg/ml ascorbic acid, 150 μl of 26 μl /2 ml monothioglycerol (MTG), and 500 μl (1 %) penicillin/streptomycin.
Stop media  Wash medium:FBS (1:1)
SU-8 50  MicroChem Corp. photoresist, master component
SU-8 2050  MicroChem Corp. photoresist, master component
Transferrin Roche 10-652-202 hPSC-CM culture media componet
Trypsin/EDTA, 0.25% Thermo Fisher Scientific 25200056 hPSC-CM culture media componet
Wash medium IMDM containing 1% Penicillin/Streptomycin

References

  1. Sun, X., Nunes, S. S. Overview of hydrogel-based strategies for application in cardiac tissue regeneration. Biomed Mater. 10 (3), 034005 (2015).
  2. Sun, X., Altalhi, W., Nunes, S. S. Vascularization strategies of engineered tissues and their application in cardiac regeneration. Adv Drug Deliv Rev. 96, 183-194 (2016).
  3. Hastings, C. L., et al. Drug and cell delivery for cardiac regeneration. Advanced Drug Delivery Reviews. 84, 85-106 (2015).
  4. Yang, L., et al. Human cardiovascular progenitor cells develop from a KDR+ embryonic-stem-cell-derived population. Nature. 453 (7194), 524-528 (2008).
  5. Zhang, J., et al. Extracellular matrix promotes highly efficient cardiac differentiation of human pluripotent stem cells: the matrix sandwich method. Circ Res. 111 (9), 1125-1136 (2012).
  6. Lian, X., et al. Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (27), E1848-E1857 (2012).
  7. Snir, M., et al. Assessment of the ultrastructural and proliferative properties of human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 285 (6), H2355-H2363 (2003).
  8. Dolnikov, K., et al. Functional properties of human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes: intracellular Ca2+ handling and the role of sarcoplasmic reticulum in the contraction. Stem Cells. 24 (2), 236-245 (2006).
  9. Yang, X., Pabon, L., Murry, C. E. Engineering adolescence: maturation of human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Circ Res. 114 (3), 511-523 (2014).
  10. Zimmermann, W. H., et al. Tissue engineering of a differentiated cardiac muscle construct. Circ Res. 90 (2), 223-230 (2002).
  11. Radisic, M., et al. Functional assembly of engineered myocardium by electrical stimulation of cardiac myocytes cultured on scaffolds. Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (52), 18129-18134 (2004).
  12. Schaaf, S., et al. Human engineered heart tissue as a versatile tool in basic research and preclinical toxicology. PLoS One. 6 (10), e26397 (2011).
  13. Tulloch, N. L., et al. Growth of engineered human myocardium with mechanical loading and vascular coculture. Circ Res. 109 (1), 47-59 (2011).
  14. Nunes, S. S., et al. Biowire: a platform for maturation of human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Nat Methods. 10 (8), 781-787 (2013).
  15. Lake, M., et al. Microfluidic device design, fabrication, and testing protocols. Protocol Exchange. , (2015).
  16. Shiba, Y., Hauch, K. D., Laflamme, M. A. Cardiac applications for human pluripotent stem cells. Curr Pharm Des. 15 (24), 2791-2806 (2009).
  17. Yang, X., et al. Tri-iodo-l-thyronine promotes the maturation of human cardiomyocytes-derived from induced pluripotent stem cells. J Mol Cell Cardiol. 72, 296-304 (2014).
  18. Zhang, D., et al. Tissue-engineered cardiac patch for advanced functional maturation of human ESC-derived cardiomyocytes. Biomaterials. 34 (23), 5813-5820 (2013).
  19. Radisic, M., et al. Oxygen gradients correlate with cell density and cell viability in engineered cardiac tissue. Biotechnol Bioeng. 93 (2), 332-343 (2006).
  20. Reubinoff, B. E., Pera, M. F., Fong, C. Y., Trounson, A., Bongso, A. Embryonic stem cell lines from human blastocysts: somatic differentiation in vitro. Nat Biotechnol. 18 (4), 399-404 (2000).
check_url/55373?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sun, X., Nunes, S. S. Maturation of Human Stem Cell-derived Cardiomyocytes in Biowires Using Electrical Stimulation. J. Vis. Exp. (123), e55373, doi:10.3791/55373 (2017).

View Video