Hjerte biowire plattformen er en in vitro metode som brukes til å modne humane embryonale og induserte pluripotent stamcelle-avledet kardiomyocytter (hPSC-CM) ved å kombinere tredimensjonale celledyrking med elektrisk stimulering. Dette manuskriptet presenterer detaljert oppsett av hjerte biowire plattformen.
Humane pluripotente stamceller celleavledede kardiomyocytter (hPSC-CMS) har vært en lovende celle kilde, og har således oppmuntret til undersøkelse av deres potensielle anvendelser i hjerteundersøkelser, inkludert medisiner, sykdom modellering, regenerering av vev, og regenerativ medisin. Imidlertid celler som produseres av eksisterende protokoller viser et utvalg av umodenhet sammenlignet med native voksen ventrikulære kardiomyocytter. Mange forsøk har vært gjort for å modne hPSC-CMS, med bare moderat modning oppnådd så langt. Derfor, en konstruert system, kalt biowire, har blitt utviklet ved å gi både fysiske og elektriske signaler for å lede hPSC-CMs til en mer moden tilstand in vitro. Systemet benytter en mikrofabrikert plattform for å pode hPSC-CMs i kollagen type I gelere sammen en stiv mal sutur for å montere inn på linje hjertevev (biowire), som utsettes for elektrisk feltstimulering med en progressivt økende frekvens. Sammenlignet med stimulerte kontroller,stimulert biowired kardiomyocytter oppviser en forbedret grad av strukturell og elektrofysiologisk modning. Slike forandringer er avhengig av stimulering hastighet. Dette manuskriptet beskriver i detalj design og etablering av biowires.
Cellbasert terapi er en av de mest lovende og undersøkte strategier for å oppnå hjertereparasjon / regenerering. Det har blitt hjulpet av hjertevevsteknikk og samlevering av biomaterialer 1 , 2 . De fleste tilgjengelige cellekilder har blitt studert i dyremodeller for deres potensielt gunstige effekter på skadede, syke eller eldre hjerter 3 . Spesielt er det gjort betydelige anstrengelser for å bruke hPSC-avledede kardiomyocytter (hPSC-CM), en potensielt ubegrenset autolog cellekilde for hjertevevsteknikk. HPSC-CM kan produseres ved hjelp av flere etablerte protokoller 4 , 5 , 6 . Imidlertid viser de oppnådde cellene føtalignende fenotyper, med et område av umodne egenskaper sammenlignet med voksne ventrikulære kardiomyocytter 7 , </sup> 8. Dette kan være et hinder for anvendelsen av hPSC-CMS som modeller for voksne hjertevevet i legemiddelforskning forskning og i utviklingen av voksne hjertesykdomsmodeller 9.
For å overvinne denne begrensningen av fenotypiske umodenhet, har nye tilnærminger vært aktivt undersøkt for å fremme cardiomyocyte modning. Tidlige studier viste effektive pro-modnings egenskaper i neonatalt rotte-kardiomyocytter via cyklisk mekanisk 10 eller elektrisk stimulering 11. Gel komprimering og cyklisk mekanisk stimulering, ble også vist seg å forbedre noen aspekter av hPSC-CM modning 12, 13, med minimal forbedring av de elektrofysiologiske og kalsiumhåndteringsegenskaper. Derfor, et plattformsystem som kalles "biologisk wire" (biowire) ble utviklet ved å tilveiebringe både strukturell signaler og elektrisk felt stimulation for å øke modningen av hPSC-CMs 14. Dette systemet bruker et mikrofabrikert plattform for å skape innrettet hjertevevet som er mottakelig for elektrisk feltstimulering. Dette kan brukes til å forbedre den strukturelle og elektrofysiologisk modenhet av hPSC-CMs. Her beskriver vi detaljene gjøre slike biowires.
Dette manuskriptet beskriver oppsett og gjennomføring av konstruert plattform, biowire, for å forbedre modning av hPSC-CMS. Anordningen kan fremstilles i standard microfabrication anlegg, og biowires kan fremstilles med vanlige celledyrkningsteknikker og en elektrisk stimulator.
Så vidt vi vet, er det ingen rapporterte metode lik biowires. Denne strategien viser at forbedrede modnings egenskaper var avhengig av den elektriske stimulering regime, som vist ved den større modningsnivå man …
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av et stipend-i-aid fra hjertet og Stroke Foundation of Canada (G-14-0006265), driftstilskudd fra den kanadiske Institutes of Health Research (137352 og 143066) og JP Bickell fundament stipend (1013821 ) til SSN.
L-Ascorbic acid | Sigma | A-4544 | hPSC-CM culture media componet |
AutoCAD | Autodesk, Inc | Software to design device | |
Carbon rods, Ø 3 mm | Electrical stimulator chamber component | ||
Collagen, type 1, rat tail | BD Biosciences | 354249 | Collagen gel: 2.1 mg/ml of rat tail collagen type I in 24.9 mM glucose, 23.8 mM NaHCO3, 14.3 mM NaOH, 10 mM HEPES, in 1xM199 media with 10 % of growth factor-reduced Matrigel. |
Collagenase type I | Sigma | C0130 | 0.2% collagenase type I (w/v) and 20% FBS (v/v) in PBS with Ca2+ and Mg2+. Sterilize with 0.22 μm filter and make 12 ml aliquots. Store at -20 °C. |
Deoxyribonuclease I (DNase I) | EMD Millipore | 260913-25MU | Make 1 mg/ml DNase I stock solution in water. Filter sterile and store 0.5 ml aliquots at −20 °C |
Drill & drill bits (Ø 1mm and 2 mm) | Dremel | Drill holes in polycarbonate frames | |
Electrical stimulator | Grass | s88x | |
Fetal bovine serum (FBS) | WISENT Inc. | 080-450 | |
D-(+)-Glucose | Sigma | G5767 | Collagen gel component |
L-Glutamine | Thermo Fisher Scientific | 25030081 | |
H2O | MilliQ | 18.2 MΩ·cm at 25 °C, ultrapure, to make all solutions | |
HEPES | Sigma | H4034 | Collagen gel component |
Hot plate | Torrey Pines | HS40 | |
Iscove's Modified Dulbecco's Medium(IMDM) | Thermo Fisher Scientific | 12440053 | |
Mask aligner | EVG | EVG 620 | |
Matrigel, growth factor reduced | Corning | 354230 | Collagen gel component |
Medium 199 (M199) | Thermo Fisher Scientific | 11150059 | Collagen gel component |
Monothioglycerol (MTG) | Sigma | M-6145 | hPSC-CM culture media componet |
Orbital shaker | VWR | 89032-088 | |
Penicillin/Streptomycin (P/S) | Thermo Fisher Scientific | 15070063 | |
Phosphate-buffered saline (PBS) with Ca2+ and Mg2+ | Thermo Fisher Scientific | 14040133 | |
Plate (6-well) | Corning | 353046 | |
Plate (6-well), low attachment | Corning | 3471 | |
Platinum wires, 0.2 mm | Electrical stimulator chamber component | ||
Polydimethylsiloxane (PDMS) | Dow Corning | Sylgard 184 | |
Propylene glycol monomethyl ether acetate (PGMEA) | Doe & Ingalls Inc. | To develop the wafer | |
Pouch, peel-open | Convertors | 92308 | For steam sterilization |
Silicon wafer, 4-inch | UniversityWafer Inc. | ||
Sodium bicarbonate (NaHCO3) | Sigma | S5761 | Collagen gel component |
Sodium hydroxide | Sigma | S8045 | Collagen gel component |
Sprin coater | Specialty Coating Systems | G3P-8 | |
StemPro-34 culture medium | Thermo Fisher Scientific | 10639011 | hPSC-CM culture medium. To make 50 ml, add 1.3 ml supplement, 500 μl of 100× L-Glutamine, 250 μl of 30 mg/ml transferrin, 500 μl of 5 mg/ml ascorbic acid, 150 μl of 26 μl /2 ml monothioglycerol (MTG), and 500 μl (1 %) penicillin/streptomycin. |
Stop media | Wash medium:FBS (1:1) | ||
SU-8 50 | MicroChem Corp. | photoresist, master component | |
SU-8 2050 | MicroChem Corp. | photoresist, master component | |
Transferrin | Roche | 10-652-202 | hPSC-CM culture media componet |
Trypsin/EDTA, 0.25% | Thermo Fisher Scientific | 25200056 | hPSC-CM culture media componet |
Wash medium | IMDM containing 1% Penicillin/Streptomycin |