Summary

Peptid Skanning-assistert Identifisering av et monoklonalt antistoff-gjenkjent Linear B-celle-epitop

Published: March 24, 2017
doi:

Summary

Here, the authors present a simple and efficient protocol to define a linear antigenic epitope using a purified monoclonal antibody and peptide scanning through dot-blot hybridization. The identified epitope can then be used in therapeutic and diagnostic applications.

Abstract

Identifiseringen av en antigen epitop av immunsystemet åpner for forståelsen av den beskyttende mekanisme av nøytraliserende antistoffer som kan fremme utvikling av vaksiner og peptid narkotika. Peptid-skanning er en enkel og effektiv metode som oversiktlig kartlegger lineær epitop som gjenkjennes av et monoklonalt antistoff (mAb). Her forfatterne presenterer en epitop besluttsomhet metodikk som involverer serielt avkortede rekombinante proteiner, syntetisk peptid design, og dot-blot hybridisering for antigen anerkjennelse av nervøs nekrose virus kappeproteinet ved hjelp av en nøytraliserende mAb. Denne teknikk er avhengig av dot-blot-hybridisering av syntetiske peptider og mAb'er på en polyvinylidenfluorid (PVDF) membran. Den minimale antigene region av et viralt kappeprotein som gjenkjennes av RG-M56 mAb kan begrenses ved steg-for-steg trimmet peptidkartlegging på en 6-mer peptid-epitop. I tillegg, alanin mutagenese og residuet ble underGrunnloven kan bli utført for å karakterisere bindingen betydningen av hver aminosyrerest som utgjør epitopen. Restene flankerer epitop nettstedet ble funnet å spille viktige roller i peptid konformasjon regulering. Den identifiserte epitop peptidet kan bli anvendt for å danne krystaller av epitop peptid-antistoff-komplekser for en røntgendiffraksjon studium og funksjonell konkurranse, eller for terapeutiske midler.

Introduction

I immunsystemet, det rekombinasjon av V, D og J segmentene gjør det mulig for antistoffer til å skape store variasjoner av komplementaritetsbestemmende regioner (CDR) for binding til forskjellige antigener for å beskytte verten fra sykdomsfremkallende infeksjon. Den nøytraliserende forsvar av antistoffer mot antigener som er avhengig av den romlige komplementaritet mellom CDR'ene fra antistoffene og epitoper av antigenene. Derfor vil en forståelse av denne molekylær interaksjon hjelpe profylaktisk vaksine utforming og terapeutiske peptidlegemiddel-utvikling. Dette kan imidlertid nøytralisering interaksjonen bli påvirket både av flere antigene domener fra ett enkelt antigen, og av flere CDR fra antistoffer, som dermed gjør det epitop bestemmelse prosessen mer kompleks. Heldigvis utvikling av hybridoma-teknologi, som sikringer individuelle antistoffproduserende celler med myelomceller, gjør det mulig for en kontinuerlig delende gruppe med celler for å sekrete en spesifikt antistoff, kjent som et monoklonalt antistoff (mAb) 1. Hybridomceller som produserer slike ren, høy-affinitets mAb til å bindes til en enkelt antigenisk område av et spesifikt antigen. Med forholdet mellom antigen-antistoff-etablert, flere fremgangsmåter, inkludert peptid skanning, kan brukes til å bestemme den epitop av et antigen ved hjelp av tilsvarende mAb. Den siste utviklingen i syntetisk peptid teknologi har gjort peptid skanning teknikk mer tilgjengelig og mer praktisk å utføre. I korthet er et sett av overlappende syntetiske peptider fremstilt i henhold til et mål-antigen sekvens og er forbundet til en fast støttede membran for mAb hybridisering. Peptid skanning ikke bare gir en enkel måte for å kartlegge antistoffbindingsregion, men letter også aminosyre (aa) mutagenese gjennom rest skanning eller substitusjon for å evaluere bindingsinteraksjonen mellom hver aa rest av epitopen peptidet og CDR'ene i antistoffet.

<p class = "jove_content"> Her, beskriver den foreliggende studien en protokoll for effektiv identifikasjon av den lineære epitop av gule havabbor nervøs nekrose virus (YGNNV) kappeproteinet ved hjelp av en nøytraliserende mAb to, tre, fire. Protokollen omfatter mAb forberedelse, konstruksjon og ekspresjon av serielt trunkerte rekombinante proteiner, syntetiske overlappende peptid utforming, dot-blot-hybridisering, alanin-skanning, og substitusjon mutagenese. Tatt i betraktning den høye kostnaden for peptid-syntese, ble det trinn å serielt å avkorte de rekombinante proteiner fra et ønsket mål-protein modifiseres, og det antigeniske region ble redusert til rundt 100 til 200 aa rester før det syntetiske peptid matrisen dot-blot-analyse ble utført.

Protocol

1. Fremstilling av monoklonalt antistoff Kultur RG-M56 musmonoklonale hybridomceller 2 i serumfritt medium i 175T kolber ved 37 ºC med 5% CO 2 supplement. Samle supernatanten når fargen av mediet blir gul etter fem dagers inkubasjon. MERK: Hybridomceller ble dyrket i serumfritt medium for å unngå forurensning antistoff fra føtalt bovint serum. Sentrifuger supernatanten ved 4500 xg i 30 min ved 4 ° C og kast celleavfall pellet. Tilsett 2 ml pr…

Representative Results

Målet med dette forsøket var å identifisere en epitop gjennom dot blotting ved hjelp av mAb. Til hurtig og effektivt begrense det antigene området gjenkjent av mAb, ble full-lengde og avkortede serielt YGNNV rekombinante kappeproteiner med en 6xHis fusjon kode ved C-terminus uttrykt fra en E. coli-ekspresjonssystem PET 10 (figur 1A). De resulterende rekombinante proteiner ble flekket ut på PVDF-membran ved hjelp av RG-M56 mAb og anti…

Discussion

Denne protokollen gir en hurtig og enkel teknikk for å identifisere en mAb-gjenkjent lineær epitop. Tatt i betraktning kostnadene for peptidsyntese og produksjonseffektivitet til å syntetisere peptider, ble den antigene region av viruskappeproteinet redusert ved å uttrykke i serie trunkerte rekombinante proteiner før peptidet scanning-analyse. Som sådan, er en pålitelig og effektiv E. coli pET-ekspresjonssystemet anvendt for å fremstille disse serielt trunkerte rekombinante proteiner som rekombinante pr…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Miss Ching-Chun Lin and Miss Diana Lin of the Core Facility of the Institute of Cellular and Organismic Biology (ICOB) of Academia Sinica for offering their expertise on peptide synthesis and DNA sequencing, respectively. This study was supported by Academia Sinica.

Materials

Hybrid-SFM medium Gibco 12045-076
Dulbeccos's Phophate-Buffered Saline (PBS) Gibco 21600-069
Pfu DNA Polymerase  Thermo Scientific  EP0502  Including buffers
T4 DNA Ligase Roche 10799009001 Including buffers
NdeI  New England Biolabs R0111S Including buffers
XhoI  New England Biolabs R0146S Including buffers
pET-20b(+) vector Novagen, Merck Millipore 69739
E.coli DH-5α competent cell RBC Bioscience RH617
E.coli BL-21(DE3) competent cell RBC Bioscience RH217
Ampicillin Amresco 0339-25G
LB broth  Invitrongen 12780-052
Isopropylthio-β-D-thiogalactoside (IPTG) MDBio, Inc. 101-367-93-1
Methanol Merck Millipore 106009
Polyoxyethylene 20 Sorbitan Monolaurate (Tween-20) J.T.Baker X251-07
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma D2650
Glycine Amresco 0167-5KG
Tris Affymetrix, USB 75825
NaCl Amresco 0241-1KG
EDTA Amresco 0105-1KG
Glycerol Amresco 0854-1L
NaN3 Sigma S2002-500G
BCIP/NBT PerkinElmer NEL937001PK
Goat Anti-Mouse IgG, Fc fragment antibody Jackson ImmunoResearch 115-055-008
Immobilon-P (Polyvinylidene fluoride, PVDF) Merck Millipore IPVH00010
Protein G Agarose Fast Flow Merck Millipore 16-266
QIAquick PCR Purification kit Qiagen 28106
UVP BioSpectrum 600 Image System UVP n/a
VisionWorks LS Analysis Software Ver 6.8 UVP n/a
MyCycler thermal cycler BioRad 1709713

References

  1. Milstein, C., Kohler, G. Clonal variations of myelomatous cells (proceedings). Minerva Med. 68 (50), 3453 (1977).
  2. Lai, Y. S., et al. In vitro neutralization by monoclonal antibodies against yellow grouper nervous necrosis virus (YGNNV) and immunolocalization of virus infection in yellow grouper Epinephelus awoara (Temminck & Schlegel). J Fish Dis. 24 (4), 237-244 (2001).
  3. Chen, C. W., Wu, M. S., Huang, Y. J., Cheng, C. A., Chang, C. Y. Recognition of Linear B-Cell Epitope of Betanodavirus Coat Protein by RG-M18 Neutralizing mAB Inhibits Giant Grouper Nervous Necrosis Virus (GGNNV) Infection. PLoS One. 10 (5), 0126121 (2015).
  4. Lai, Y. -. S., et al. Propagation of yellow grouper nervous necrosis virus (YGNNV) in a new nodavirus-susceptible cell line from yellow grouper, Epinephelus awoara (Temminck & Schlegel), brain tissue. J Fish Dis. 24 (5), 299-309 (2001).
  5. Lougee, E., Morjaria, S., Shaw, O., Collins, R., Vaughan, R. A new approach to HLA typing designed for solid organ transplantation: epityping and its application to the HLA-A locus. Int J Immunogenet. 40 (6), 445-452 (2013).
  6. Radulovich, N., Leung, L., Tsao, M. S. Modified gateway system for double shRNA expression and Cre/lox based gene expression. BMC Biotechnol. 11, 24 (2011).
  7. Froger, A., Hall, J. E. Transformation of plasmid DNA into E. coli using the heat shock method. J Vis Exp. (6), e253 (2007).
  8. Pronobis, M. I., Deuitch, N., Peifer, M. The Miraprep: A Protocol that Uses a Miniprep Kit and Provides Maxiprep Yields. PLoS One. 11 (8), e0160509 (2016).
  9. Metzker, M. L. Emerging technologies in DNA sequencing. Genome Res. 15 (12), 1767-1776 (2005).
  10. Chiu, C. C., John, J. A., Hseu, T. H., Chang, C. Y. Expression of ayu (Plecoglossus altivelis) Pit-1 in Escherichia coli: its purification and immunohistochemical detection using monoclonal antibody. Protein Expr Purif. 24 (2), 292-301 (2002).
  11. Atassi, M. Z. Antigenic structures of proteins. Their determination has revealed important aspects of immune recognition and generated strategies for synthetic mimicking of protein binding sites. Eur J Biochem. 145 (1), 1-20 (1984).
  12. Opuni, K. F., et al. Mass spectrometric epitope mapping. Mass Spectrom Rev. , (2016).
  13. Chang, C. Y., Chiu, C. C., Christopher John, J. A., Liao, I. C., Leaño, E. M. . The Aquaculture of Groupers. , 207-224 (2008).
  14. Conti-Tronconi, B. M., et al. Alpha-bungarotoxin and the competing antibody WF6 interact with different amino acids within the same cholinergic subsite. Biochemistry. 30 (10), 2575-2584 (1991).
  15. Briggs, S., Price, M. R., Tendler, S. J. Fine specificity of antibody recognition of carcinoma-associated epithelial mucins: antibody binding to synthetic peptide epitopes. Eur J Cancer. 29 (2), 230-237 (1993).
  16. Chen, N. C., et al. Crystal Structures of a Piscine Betanodavirus: Mechanisms of Capsid Assembly and Viral Infection. PLoS Pathog. 11 (10), e1005203 (2015).
  17. Badani, H., Garry, R. F., Wimley, W. C. Peptide entry inhibitors of enveloped viruses: The importance of interfacial hydrophobicity. Biochim Biophys Acta. , (2014).
  18. Qureshi, N. M., Coy, D. H., Garry, R. F., Henderson, L. A. Characterization of a putative cellular receptor for HIV-1 transmembrane glycoprotein using synthetic peptides. AIDS. 4 (6), 553-558 (1990).
check_url/55417?article_type=t&slug=peptide-scanning-assisted-identification-monoclonal-antibody

Play Video

Cite This Article
Chen, C., Chang, C. Peptide Scanning-assisted Identification of a Monoclonal Antibody-recognized Linear B-cell Epitope. J. Vis. Exp. (121), e55417, doi:10.3791/55417 (2017).

View Video