Neonatal Murine Cochlear Explant Technique som en<em> In Vitro</em> Screening Tool i Hearing Research
Summary
Formålet med denne protokol er at demonstrere forberedelse, kultur, behandling og immunostaining af neonatale murine cochleære eksplantater. Teknikken kan udnyttes som et in vitro- screeningsværktøj til høreforskning.
Abstract
Selv om der har været bemærkelsesværdige fremskridt med at høre forskning i de sidste årtier, er der stadig ingen kur mod Sensorineural Hearing Loss (SNHL), en tilstand, der typisk indebærer beskadigelse eller tab af de delikate mekanosensoriske strukturer i det indre øre. Sofistikeret in vitro- og ex vivo- assays er opstået i de seneste år, hvilket muliggør screening af et stigende antal potentielle terapeutiske forbindelser, samtidig med at ressourcerne minimeres og fremskyndet indsats for at udvikle kurer for SNHL. Selvom homogene kulturer af visse celletyper fortsat spiller en vigtig rolle i den nuværende forskning, er mange forskere nu afhængige af mere komplekse organotypiske kulturer af murine indre ører, også kendt som cochleære eksplanteringsstoffer. Bevarelsen af organiserede cellulære strukturer i det indre øre letter in situevalueringen af forskellige komponenter i den cochleære infrastruktur, herunder indre og ydre hårceller, spiral ganglion neuroner, neurItes og understøttende celler. Her præsenterer vi forberedelsen, kulturen, behandlingen og immunostaining af neonatale murine cochleære eksplanteringsmidler. Den omhyggelige forberedelse af disse eksplanterer letter identifikationen af mekanismer, der bidrager til SNHL, og udgør et værdifuldt værktøj til høreforeningen.
Introduction
Sensorineural Hearing Loss (SNHL) afspejler skader på det indre øre eller stigende auditiv vej. Mens høretab er det mest almindelige sensoriske underskud hos mennesker 1 , findes der ikke kurative terapier 2 . Selvom cochleære eller auditive hjernestammeimplantater kan genoprette en vis grad af hørelse hos patienter med alvorlig til dybden af SNHL, er høreapparatet fra disse enheder stadig meget forskelligt fra "naturlig" hørelse, især under forsøg på at forstå tale i støj eller at høre musik.
Mens hårcelledegenerering længe er betragtet som den primære konsekvens af traumatiske hørelser ( fx eksponering for kraftig støj), er der voksende tegn på, at synapserne, der transmitterer information fra hårceller til auditivnerven, er mindst lige så sårbare overfor akustisk traume 3 , 4 , 5 </sup > , 6 . Da menneskelige audiometriske tærskler, den nuværende guldstandard til evaluering af hørefunktion, ikke forudsiger specifik cellulær skade i det indre øre, er der brug for mere raffinerede værktøjer til at detektere cellulær degenerering så hurtigt som muligt og at indlede en passende behandling 7 .
Lovende farmaceutiske behandlinger til høretab testes ofte på homogene cellekulturer in vitro , men sådanne systemer modelker ikke nøjagtigt det cochleære mikromiljø. Cochleære celler er kendt for at secernere trofiske faktorer, som påvirker andre celletyper i cochlea 8 , 9 , en afgørende in vivo- proces, der går tabt, når orginet fra Corti 10 , 11 eller Spiral Ganglion Neurons (SGNs) 12 dyrkes isoleret eller når Molekylære markører analyseresEf "> 13. Imidlertid kræver in vivo- undersøgelser, der kan være nødvendige for validering af in vitro- data til etablering af nye, personlige behandlinger for høretab i forfølgelsen af" præcisionsmedicin "betydelige ressourcer og tid. Dette er især relevant, når man overvejer Hvor meget indsats der kræves for at perfektere og udføre mellemøre eller runde membranindsprøjtninger med høretest og efterfølgende dissektering af cochleære helmuffer. Den effektive screening af lovende forbindelser i organotypiske ex vivo kulturer, der kaldes cochleære eksplanteringsmidler, giver et økonomisk og pålideligt alternativ 14 , 15 , 16 , 17 .
Denne artikel beskriver en protokol, hvormed der genereres, vedligeholdes og evalueres behandlede cochleære eksplanteringsstoffer. Specifikke anvendelser til denne model understreges, herunder dens anvendelse i screeningenAf potentielt terapeutiske forbindelser og den sammenlignende evaluering af virale vektorer til genterapi. En ex vivo eksplosiv tilgang giver forskere mulighed for at visualisere virkningerne af en given behandling på forskellige cellepopulationer in situ , hvilket letter identifikationen af celletypespecifikke mekanismer og efterfølgende forbedring af målrettede terapeutiske midler.
Samlet set giver denne teknik en model til at studere cochlea ex vivo og samtidig bevare vital krydspredning mellem de meget forskellige celletyper, som eksisterer i cochlea.
Protocol
Representative Results
Discussion
Forskere skal perfektere dissektionsteknikken inden udførelse af eksperimenter, der involverer cochleære eksplanteringsstoffer. Hårceller beskadiges almindeligvis under dissekationer, der udføres tidligt i læringskurven, og et særligt problematisk øjeblik for deres integritet er fjernelsen af tectorialmembranen, som kræver stabile hænder, ordentlige værktøjer og erfaring. For at spare tid og ressourcer skal en visuel kontrol udføres under dissektionsmikroskopet, og potentielt beskadigede områder bør …
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Dette arbejde blev støttet af National Institute of Dovenhed og andre kommunikationsforstyrrelser tilskud R01DC015824 (KMS) og T32DC00038 (støtte SD), Department of Defense grant W81XWH-15-1-0472 (KMS), Bertarelli Foundation (KMS), Nancy Sayles Day Foundation (KMS) og Lauer Tinnitus Research Center (KMS). Vi takker Jessica E. Sagers, BA for indsigtige bemærkninger til manuskriptet.
Materials
| Ampicillin, Sodium Salt | Invitrogen | 11593-027 | |
| anti-CtBP2 antibody, mouse(IgG1) | BD Transduction Laboratories | 612044 | |
| anti-Myo7A antibody, rabbit | Proteus Biosciences | 25-6790 | |
| anti-NF-H antibody, chicken | EMD Millipore | AB5539 | |
| anti-PSD95 antibody, mouse(IgG2a) | Antibodies Inc. | 75-028 | |
| anti-TuJ1 antibody, mouse | BioLegend | 801202 | |
| Cell-Tak Cell and Tissue Adhesive, 5 mg | Corning | 354241 | |
| CELLSTAR 15 ml Centrifuge Tubes, Conical bottom, Graduation, Sterile | Greiner Bio-One | 188161 | |
| CELLSTAR Cell Culture Dish, 100×20 mm | Greiner Bio-One | 664160 | |
| CELLSTAR Cell Culture Dish, 35×10 mm, four inner rings | Greiner Bio-One | 627170 | |
| CELLSTAR Cell Culture Dish, 60×15 mm | Greiner Bio-One | 628160 | |
| CELLSTAR 50 ml Centrifuge Tubes, Conical bottom, Graduation, Sterile | Greiner Bio-One | 227261 | |
| Clear Nail Polish | Electron Microscopy Sciences | 72180 | |
| Clear Wall Glass Bottom Dishes (Glass 40mm), PELCO®, Sleeve/20, 50×7 mm | Ted Pella Inc. | 14027-20 | |
| Coverslips, Round, Glass, 10 mm diameter, Thickness #1, 0.13-0.16mm | Ted Pella Inc. | 260368 | |
| DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride) | Thermo Fisher Scientific | D1306 | |
| Distilled water, 500 ml | Thermo Fisher Scientific | 15230-162 | |
| DMEM, high glucose, pyruvate, no glutamine, 500 ml | Thermo Fisher Scientific | 10313-039 | |
| Dumont #4 Forceps | Fine Science Tools | 11241-30 | |
| Dumont #55 Forceps (Dumostar) | Fine Science Tools | 11295-51 | |
| Ethyl alcohol, Pure, 200 proof, anhydrous, ≥99.5% | Sigma-Aldrich | 459836-1L | |
| Fetal Bovine Serum, qualified, USDA-approved regions, 500 ml | Thermo Fisher Scientific | 10437-028 | Aliquot in 50 ml tubes and store in -20°C freezer |
| Glutamate – GlutaMAX supplement, 100 ml | Thermo Fisher Scientific | 35050-061 | |
| goat anti-chicken-647 secondary antibody | Thermo Fisher Scientific | A-21469 | |
| goat anti-mouse(IgG)-568 secondary antibody | Thermo Fisher Scientific | A-11004 | |
| goat anti-mouse(IgG1)-568 secondary antibody | Thermo Fisher Scientific | A-21124 | |
| goat anti-mouse(IgG2a)-488 secondary antibody | Thermo Fisher Scientific | A-21131 | |
| goat anti-rabbit-488 secondary antibody | Thermo Fisher Scientific | R37116 | |
| H2O, sterile, EmbryoMax Ultra Pure Water, 500ml | EMD Millipore | TMS-006-B | |
| HBSS, calcium, magnesium, no phenol red, 500 ml | Thermo Fisher Scientific | 14025-092 | |
| Instrument Tray with Lid Stainless Steel | Mountainside Medical | TechMed4255 | |
| Micro (dissecting) knife – angled 30° | Fine Science Tools | 10056-12 | |
| Microscope slides, VistaVision, color-coded, 75 x 25 mm (3 x 1"), 1 mm thick, white, pack of 72 | VWR | 16004-382 | |
| N-2 Supplement (100X), 5 ml | Thermo Fisher Scientific | 17502-048 | |
| NaHCO3, Sodium Bicarbonate 7.5% solution, 100 ml | Thermo Fisher Scientific | 25080-094 | |
| NaOH, sodium hydroxide solution, 1 l | Thermo Fisher Scientific | SS266-1 | |
| Normal Horse Serum (NHS) | Invitrogen | 16050130 | |
| Operating scissors | Roboz Surgical Instruments Co. | RS-6806 | |
| Paraformaldehyde, Reagent Grade, Crystalline | Sigma-Aldrich | P6148 | Prior to use: Establish Standard Operating Procedures based on protocols available online |
| PBS, pH 7.4, 500 ml | Thermo Fisher Scientific | 10010-023 | Autoclave prior to use |
| Phalloidin, Alexa Fluor 568 | Thermo Fisher Scientific | A12380 | |
| Prep Pad, Non Sterile | Medline | 05136CS | |
| Safe-Lock Microcentrifuge Tubes, Polypropylene, 0.5 ml | Eppendorf | 022363719 | Autoclave prior to use |
| Safe-Lock Microcentrifuge Tubes, Polypropylene, 1.5 ml | Eppendorf | 022363204 | Autoclave prior to use |
| Scalpel Blades – #15 | Fine Science Tools | 10015-00 | |
| Scalpel Handle – #4 | Fine Science Tools | 10004-13 | |
| Stemi 2000-C Stereo Microscope | Zeiss | 000000-1106-133 | |
| TCS SP5 confocal microscope | Leica | N/A | |
| Triton-X (non-ionic surfactant) | Integra | T756.30.30 | |
| VectaShield antifade mounting medium for fluorescence | Vector Laboratories, Inc. | H-1000 | |
| Zipper Bag, Reclosable, 4'' x 6'' – 2 mil. thick | Zipline | 0609132541599 |
References
- Geleoc, G. S., Holt, J. R. Sound strategies for hearing restoration). Science. 344 (6184), 1241062 (2014).
- Kujawa, S. G., Liberman, M. C. Acceleration of age-related hearing loss by early noise exposure: evidence of a misspent youth. J Neurosci. 26 (7), 2115-2123 (2006).
- Kujawa, S. G., Liberman, M. C. Adding insult to injury: cochlear nerve degeneration after "temporary" noise-induced hearing loss. J Neurosci. 29 (45), 14077-14085 (2009).
- Makary, C. A., Shin, J., Kujawa, S. G., Liberman, M. C., Merchant, S. N. Age-related primary cochlear neuronal degeneration in human temporal bones. J Assoc Res Otolaryngol. 12 (6), 711-717 (2011).
- Jensen, J. B., Lysaght, A. C., Liberman, M. C., Qvortrup, K., Stankovic, K. M. Immediate and delayed cochlear neuropathy after noise exposure in pubescent mice. PLoS One. 10 (5), (2015).
- Landegger, L. D., Psaltis, D., Stankovic, K. M. Human audiometric thresholds do not predict specific cellular damage in the inner ear. Hear Res. , 83-93 (2016).
- Wang, H. C., et al. Spontaneous Activity of Cochlear Hair Cells Triggered by Fluid Secretion Mechanism in Adjacent Support Cells. Cell. 163 (6), 1348-1359 (2015).
- Barclay, M., Ryan, A. F., Housley, G. D. Type I vs type II spiral ganglion neurons exhibit differential survival and neuritogenesis during cochlear development. Neural Dev. 6, (2011).
- Dinh, C., et al. Short interfering RNA against Bax attenuates TNFalpha-induced ototoxicity in rat organ of Corti explants. Otolaryngol Head Neck Surg. 148 (5), 834-840 (2013).
- Mazurek, B., Yu, Y., Haupt, H., Szczepek, A. J., Olze, H. Salicylate modulates Hsp70 expression in the explanted organ of Corti. Neurosci Lett. 501 (2), 67-71 (2011).
- Kao, S. Y., et al. Loss of osteoprotegerin expression in the inner ear causes degeneration of the cochlear nerve and sensorineural hearing loss. Neurobiol Dis. 56, 25-33 (2013).
- Jan, T. A., Chai, R., Sayyid, Z. N., Cheng, A. G. Isolating LacZ-expressing cells from mouse inner ear tissues using flow cytometry. J Vis Exp. (58), e3432 (2011).
- Haque, K. D., Pandey, A. K., Kelley, M. W., Puligilla, C. Culture of embryonic mouse cochlear explants and gene transfer by electroporation. J Vis Exp. (95), e52260 (2015).
- Parker, M., Brugeaud, A., Edge, A. S. Primary culture and plasmid electroporation of the murine organ of Corti. J Vis Exp. (36), (2010).
- Mulvaney, J. F., Dabdoub, A. Long-term time lapse imaging of mouse cochlear explants. J Vis Exp. (93), e52101 (2014).
- Wang, Q., Green, S. H. Functional role of neurotrophin-3 in synapse regeneration by spiral ganglion neurons on inner hair cells after excitotoxic trauma in vitro. J Neurosci. 31 (21), 7938-7949 (2011).
- Landegger, L. D., et al. A synthetic AAV vector enables safe and efficient gene transfer to the mammalian inner ear. Nat Biotechnol. 35 (3), 280-284 (2017).
- Dilwali, S., Landegger, L. D., Soares, V. Y., Deschler, D. G., Stankovic, K. M. Secreted Factors from Human Vestibular Schwannomas Can Cause Cochlear Damage. Sci Rep. 5, 18599 (2015).
- Soares, V. Y., et al. Extracellular vesicles derived from human vestibular schwannomas associated with poor hearing damage cochlear cells. Neuro Oncol. , (2016).
- Tong, M., Brugeaud, A., Edge, A. S. Regenerated synapses between postnatal hair cells and auditory neurons. J Assoc Res Otolaryngol. 14 (3), 321-329 (2013).
- Yuan, Y., et al. Ouabain-induced cochlear nerve degeneration: synaptic loss and plasticity in a mouse model of auditory neuropathy. J Assoc Res Otolaryngol. 15 (1), 31-43 (2014).
- Fernandez, K. A., Jeffers, P. W., Lall, K., Liberman, M. C., Kujawa, S. G. Aging after noise exposure: acceleration of cochlear synaptopathy in "recovered" ears. J Neurosci. 35 (19), 7509-7520 (2015).
- Barclay, M., Constable, R., James, N. R., Thorne, P. R., Montgomery, J. M. Reduced sensory stimulation alters the molecular make-up of glutamatergic hair cell synapses in the developing cochlea. Neuroscience. , 50-62 (2016).
- Zinn, E., et al. In Silico Reconstruction of the Viral Evolutionary Lineage Yields a Potent Gene Therapy Vector. Cell Rep. 12 (6), 1056-1068 (2015).
- Wu, Z., Yang, H., Colosi, P. Effect of genome size on AAV vector packaging. Mol Ther. 18 (1), 80-86 (2010).
- Shu, Y., et al. Identification of Adeno-Associated Viral Vectors That Target Neonatal and Adult Mammalian Inner Ear Cell Subtypes. Hum Gene Ther. , (2016).
- Kao, S. Y., Soares, V. Y., Kristiansen, A. G., Stankovic, K. M. Activation of TRAIL-DR5 pathway promotes sensorineural degeneration in the inner ear. Aging Cell. 15 (2), 301-308 (2016).
