Summary

Induksjon av hypoksi i levende frosk og sebrafiskembryoer

Published: June 26, 2017
doi:

Summary

Vi introduserer et nytt hypokalsystem for bruk med vannlevende organismer som frosk og sebrafiskembryoer. Vårt system er enkelt, robust, kostnadseffektivt og muliggjør induksjon og opprettholdelse av hypoksi in vivo og i opptil 48 timer. Vi presenterer 2 reproduserbare metoder for å overvåke effekten av hypoksi.

Abstract

Her introduserer vi et nytt system for hypoksi-induksjon, som vi utviklet for å studere effekten av hypoksi i akvatiske organismer som frosk og sebrafiskembryoer. Vårt system består av et kammer som har et enkelt oppsett som likevel er robust til å indusere og opprettholde en bestemt oksygenkonsentrasjon og temperatur i en hvilken som helst eksperimentell løsning. Det presenterte systemet er svært kostnadseffektivt men svært funksjonelt, det tillater induksjon og opprettholdelse av hypoksi for direkte eksperimenter in vivo og i ulike tidsperioder opptil 48 timer.

For å overvåke og studere effekten av hypoksi har vi benyttet to metoder – måling av nivåer av hypoksi-inducerbar faktor 1alpha (HIF-1α) i hele embryoer eller spesifikke vev og bestemmelse av retinalt stamcelleproliferasjon med 5-etynyl-2'- Deoxyuridin (EdU) inkorporering i DNA. HIF-1α nivåer kan tjene som en generell hypoksi markør i hele embryoet eller vevetAv valg, her embryonalt nese. EdU-inkorporering i de prolifererende celler av embryonalt retina er en spesifikk utgang av hypoksi-induksjon. Dermed har vi vist at hypoksiske embryonale retinale progenitorer reduserer proliferasjon innen 1 time inkubering under 5% oksygen av både frosk og zebrafiskembryoer.

Når vi har mestret, kan vårt oppsett brukes til bruk med små organismer av vannmodell, for direkte in vivo eksperimenter, i en gitt tidsperiode og under normal, hypoksisk eller hyperoksisk oksygenkonsentrasjon eller under en hvilken som helst annen gitt gassblanding.

Introduction

Hypoksiforskning har mange anvendelser. Disse inkluderer undersøkelse av patogenesen og utvikling av behandlinger for medisinske tilstander preget av hypoksi 1 og akutt høyhøye sykdom 2 . Hypoksisk stress forårsaker store metabolske forandringer i alle organismer som krever oksygen. Hypoksisk stress påvirker også føtal vekst og utvikling og patogenesen av flere humane sykdommer, inkludert intrauterin vekstrestriksjon 3 . Hypoksisk stress kan ikke bare føre til redusert fødselsvekt, føtal og nyfødt dødelighet, men kan også resultere i mange komplikasjoner i voksenlivet, for eksempel kardiovaskulær sykdom, type 2 diabetes, fedme og hypertensjon 4 . Hypoksisk stress blir også ofte observert under solid tumorutvikling, når svulstvevet vokser ut blodtilførselen. Det er derfor viktig å kunne studere effekten av hypoksi in vivo og direkte under embr Yonisk utvikling.

Blant de mest kjente metoder som har vært ansatt for å studere effekter av hypoksi under utvikling er bruken av koboltklorid i vekstmediet eller inkubasjon av organismen i et hypoksisk kammer. Kobolklorid fremkaller kunstig en hypoksisk respons under normal oksygenkonsentrasjon, på grunn av sin rolle i stabiliseringen av hypoksi-inducerbar faktor-1 alfa (HIF-1a) ved å forhindre dets proteosomale nedbrytning 5 , 6 , 7 . Imidlertid, som en praktisk metode 8 , kan bruken av koboltklorid samt andre lignende kjemiske hypoksymimetika ha uspesifisert skadelig virkning på celler og vev, for eksempel apoptose 9 . Derfor er hypoksiske kamre en bedre metode for induksjon av "naturlig hypoksi" i levende organismer i løpet av normal utvikling.

Ntent "> Vi har fokusert på å utvikle et system for induksjon av hypoksi i akvatiske embryoer. Både frosker og sebrafisk har nå blitt informative vertebratmodellorganismer for studier av mange biologiske prosesser, samt modeller for ulike menneskersykdommer. Frog- og sebrafiskembryoer Utvikle seg eksternt, eliminere komplikasjonen av maternell kompensasjon. Videre gjør et raskt utviklingsløp det mulig å manipulere miljøfaktorer og observere fenotypiske forandringer i organdannelsen i sanntid. I tillegg er mange komponenter i de store signaltransduksjonsbanene sterkt konserverte i Disse modellorganismer og har blitt karakterisert i detalj av en stor litteratur. Hovedfordelen ved bruk av frosker og zebrafiskembryoer for å studere effekten av hypoksi på vertebratutvikling er at alle prosesser kan overvåkes direkte, siden oksygen raskt trenger inn i embryoene. Dermed i frosker og sebrafisk, som i motsetning til andre modellorganismer somMusembryoer, kan påvirkning av en bestemt oksygenkonsentrasjon studeres i vev av interesse uten å ta hensyn til forekomsten eller mangelen på funksjonell vaskulatur.

De fleste kommersielt tilgjengelige oppsett for hypoksisk inkubasjon har ulempen ved å være sammenlignbart store og har tilsvarende høye løpekostnader. Bortsett fra deres høye initialkostnad og gassforbruk krever ekvilibrering og vedlikehold av vanlige hypoksiekamre opprettholdelse av konstant hypoksisk atmosfære mot gassgradienten som naturlig forekommer i disse kamrene på grunn av deres større størrelse og / eller organisasjonsånding. Dette krever sysselsetting av gassfans og et kjølesystem, noe som øker mengden ekstra nødvendig utstyr, hindrer forskers fingerfylling og generelt reduserer enkelheten i eksperimentell prosedyre. I motsetning til dette er oppsettet vi presenterer her, sammenlignbart robust, men svært kostnadseffektivt, lite, lett å etablere og tillater fAst-gassekvilibrering, stabil hypoksisk atmosfære og enkel utveksling av materialer og løsninger i kammeret. Vårt system kan brukes til bruk med en vannmiljøorganisme av interesse.

Vi har konstruert et hypoksisk kammer som er bekvemt lite og kan derfor plasseres inne i en felles laboratorieinkubator, som lett tillater eksperimentelle prosedyrer ved en bestemt temperatur. For å gi praktisk kontroll over både temperatur og oksygenkonsentrasjon i mediet ligger fordelen av systemet vårt mot de kommersielt tilgjengelige hypoksi-inkubatorene i sin lille størrelse og kostnadseffektivitet. Dermed kan vårt oppsett etableres ved hjelp av generelle laboratorieforsyninger tilgjengelig for de fleste forskningslaboratorier og krever ikke dyre materialer. I tillegg genererer oppsettet ikke varme, i motsetning til kommersielt tilgjengelige hypoksi-inkubatorer, og tillater bruk ved temperaturer lavere enn romtemperaturen blir plassert i en inkubator. LaSt er spesielt kritisk for arbeidet med kaldblodige organismer som frosker og fisk der utviklings- og metabolskrate er sterkt temperaturavhengige.

Å være svært kostnadseffektiv og lett bygget, er vårt gassinkubasjonskammer likevel svært allsidig når det gjelder å etablere ulike hypoksiske eller hyperoksiske forhold, samt muliggjøre rask og enkel administrasjon av forskjellige medier og løsninger for et stort antall eksperimentelle forhold. I tillegg bruker vi en brønn på 24 brønner i stedet for vanlige retter eller laboratorietanker 10 , 11 , 12 , og lar oss observere og eksperimentelle behandling av flere mutantforhold samtidig.

For å kontrollere for korrekt induksjon av hypoksi, har vi overvåket nivåene av HIF-1a-proteinet ved Western blot-deteksjon. I tillegg er antallet prolifererende celler før og etter inkubasjonN i det hypoksiske kammeret kan brukes til å avgjøre om hypoksi har blitt indusert i vevet. Denne metoden er basert på våre tidligere publiserte resultater 13 , som viser at spredning i embryonal retinal stamcelle nisje reduseres ved induksjon av hypoksi. Dermed har vi overvåket nivået av retinalt stamcelleproliferasjon ved å tilsette 5-etynyl-2'-deoksyuridin (EdU) til embryo-mediumet og måle dets innlemmelse i DNA'et av nylig prolifererende celler.

Protocol

Denne protokollen følger retningslinjer for dyrepleie ved Universitetet i Cambridge. 1. Dyrevedlikehold Froskembryoer MERK: Embryoer kan heves og opprettholdes i henhold til dyre- og laboratorieanlegget. Her er et eksempel på vedlikehold av dyr beskrevet. Klargjør 0.1x Modifisert Barths Solution (MBS) løsning: 0,88 mM NaCl, 10 μM KCl, 24 μM NaHC03, 100 μM HEPES, 8,2 μM MgS04, 3,3 μM Ca (NO3) 2 og 4,1 μM CaCl2, pH 7,6 . Skaff Xenopus l…

Representative Results

Ved å bruke det hypoksiske kammersystemet som vi presenterer her, kan vi undersøke effekten av hypoksi enkeltvis og in vivo hos hele levende dyr. Hypoksi kan induseres ved å plassere hele frosk- eller sebrafiskembryoer i det hypoksiske kammeret ( Figur 1 ), og gjennomføres på forskjellige kombinasjoner av forhold. Et bilde av vårt gjennomførte gasskammeroppsett er vist på figur 2 . Vi har overvåket oksygenkonse…

Discussion

Her har vi presentert en enkel, men robust ny metode for å indusere hypoksi som er justert for bruk med frosk- og sebrafiskembryoer, men kan også være egnet for andre akvatiske organismer. Den største fordelen med denne metoden ligger i sin enkelhet og kostnadseffektivitet. Likevel er resultatene oppnådd med denne metoden svært robuste. Vi har vist at hypoksi kan effektivt framkalles i kammeret både i hele embryoer og i spesifikt vev – her, retina. For å fastslå effektiviteten av hypoksi-induksjonen har vi over…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av Support from Wellcome Trust SIA Award 100329 / Z / 12 / Z til WAH og DFG fellesskapet KH 376 / 1-1 tildelt HK

Materials

Sodium chloride Sigma S7653 NaCl / 0.1X MBS, Embryo medium, 10X TBST
Potassium chloride Sigma P9333 KCl / 0.1X MBS, Embryo mediu,
Sodium bicarbonate Sigma S5761 NaHCO3 / 0.1X MBS
HEPES Sigma H3375 0.1X MBS
Magnesium sulfate Sigma M7506 MgSO4 / 0.1X MBS, Embryo medium
Calcium nitrate Sigma 202967 Ca (NO3)2 / 0.1X MBS
Calcium chloride Sigma C1016 CaCl2 / 0.1X MBS, Embryo medium
Methylene blue Sigma M9140 Embryo medium
Pregnant mare serum gonadotropin Sigma CG10 frog fertilization
Zebrafish breeding tank Carolina 161937 gas chamber construction
24-well plate Thermo Scientific 142475 Nunclon Delta Surface, for gas chamber construction
Epoxy resin RS Components UK Kit 199-1468
Gas distributor valve WPI Luer Valves Kit 14011 aquatic tank attachment (Schema 1, H)
High precision gas valve BOC  200 bar HiQ C106X/2B gas tank attachment (Schema 1, I)
5% oxygen and 95% N2 gas tank BOC 226686-L hypoxic gas mixture
ceramic disc diffuser CO2 Art  Glass CO2 Nano Aquarium Diffuser, DG005DG005 Schema 1, J
silicone grease Scientific Laboratory Supplies VAC1100 Schema 1, K
oxymeter Oxford Optronix  Oxylite, CP/022/001 hypoxic chamber setup
fibre-optic dissolved oxygen sensor Oxford Optronix HL_BF/OT/E hypoxic chamber setup
plastic pasteur pipette Sterilin STS3855604D for embryo transfer
MS222  Sigma Aldrich E10521-50G embryo anesthetic
RIPA buffer  Sigma R0278-50ML tissue homogenization
Protease inhibitor Sigma P8340 tissue homogenization
Tris Sigma 77-86-1 4X Laemmli loading buffer, 10X TBST
Glycerol Sigma G5516 4X Laemmli loading buffer
Sodium Dodecyl Sulfate Sigma L3771 SDS, 4X Laemmli loading buffer, 5X Running buffer
beta-Mercaptoethanol  Sigma M6250 4X Laemmli loading buffer
Bromophenol Blue Sigma-Aldrich B0126 4X Laemmli loading buffer
Trizma base  Sigma 77-86-1 5X Running buffer, Transfer buffer
Glycine Sigma G8898 5X Running buffer, Transfer buffer
Methanol Sigma 34860 Transfer buffer
Tween 20 Sigma P2287-500ML 10X TBST
skim milk powder Sigma 70166 Blocking Solution
Eppendorf microcentrifuge tube Sigma T9661
tissue homogenizer Pellet Pestle Motor Kontes Z359971 tissue homogenization
pellet pestles Sigma Z359947-100EA tissue homogenization
precast 12% gel Biorad Mini-ProteinTGX, 456-1043 Western Blot
protein ladder Amersham Full-Range Rainbow ladder, RPN800E Western Blot
nitrocellulose membrane (0.45 µm) Biorad 162-0115 Western Blot
anti-HIF-1α antibody Abcam ab2185 Western Blot
anti-α-tubulin antibody Sigma T6074 Western Blot
goat anti-rabbit antibody Abcam ab6789 Western Blot
goat anti-mouse antibody Abcam ab97080 Western Blot
Pierce ECL 2 reagent  Thermo Scientific 80196 Western Blot
ECL films Hyperfilm GE Healthcare Amersham 28906837 Western Blot
5-Ethynyl-2′-deoxyuridine   santa cruz CAS 61135-33-9 EdU, EdU incorporation
Phosphate-buffered Saline Oxoid BR0014G 1X PBS
Formaldehyde Thermo Scientific 28908 Fixation solution
Sucrose Fluka S/8600/60 Solution solution
Triton X-100 Sigma T9284-500ML PBST
Heat-inactivated Goat Serum Sigma G6767-100ml HIGS, Blocking solution (EdU incorporation)
4',6-diamidino-2-phenylindole  ThermoFisher Scientific D1306 DAPI, EdU incorporation
Dimethyl sulfoxide Molecular Probes C10338 DMSO, EdU incorporation
glass vial VWR 98178853 EdU incorporation analysis
Tissue-Plus optimal cutting temperature compound  Scigen 4563 embedding medium, EdU incorporation analysis
cryostat Jung Fridgocut 2800E Leica  CM3035S EdU incorporation analysis
microscope slides Super-Frost plus Menzel glass Thermo Scientific J1800AMNZ EdU incorporation analysis
EdU Click-iT chemistry kit Molecular Probes C10338 EdU incorporation analysis
FluorSave Calbiochem D00170200 mounting medium, EdU incorporation analysis
coverslips VWR ECN631-1575 EdU incorporation analysis
fluorescent microscope Nikon Eclipse 80i EdU incorporation analysis
confocal scanning microscope Olympus Fluoview FV1000 EdU incorporation analysis
Volocity software PerkinElmer Volocity 6.3 EdU incorporation analysis

References

  1. Grocott, M., Montgomery, H., Vercueil, A. High-altitude physiology and pathophysiology: implications and relevance for intensive care medicine. Crit Care. 11 (1), 203 (2007).
  2. Grant, S., et al. Sea level and acute responses to hypoxia: do they predict physiological responses and acute mountain sickness at altitude?. Brit J Sport Med. 36 (2), 141-146 (2002).
  3. Kajimura, S., Aida, K., Duan, C. Insulin-like growth factor-binding protein-1 (IGFBP-1) mediates hypoxia-induced embryonic growth and developmental retardation. PNAS. 102 (4), 1240-1245 (2005).
  4. Ong, K. K., Dunger, D. B. Perinatal growth failure: the road to obesity, insulin resistance and cardiovascular disease in adults. Best Pact Res Clin Endocrinol Metab. 16, 191-207 (2002).
  5. Maxwell, P., Salnikow, K. HIF-1: an oxygen and metal responsive transcription factor. Cancer Bio Ther. 3 (1), 29-35 (2004).
  6. Semenza, G. L., Roth, P. H., Fang, H. M., Wang, G. L. Transcriptional regulation of genes encoding glycolytic enzymes by hypoxia-inducible factor 1. J Biol Chem. 269 (38), 23757-23763 (1994).
  7. Yuan, Y., Hilliard, G., Ferguson, T., Millhorn, D. E. Cobalt inhibits the interaction between hypoxia-inducible factor-alpha and von Hippel-Lindau protein by direct binding to hypoxia-inducible factor-alpha. J Biol Chem. 278 (18), 15911-15916 (2003).
  8. Elks, P., Renshaw, S. A., Meijer, A. H., Walmsley, S. R., van Eeden, F. J. Exploring the HIFs, buts and maybes of hypoxia signalling in disease: lessons from zebrafish models. Disease Models & Mechanisms. 8, 1349-1360 (2015).
  9. Guo, M., et al. Hypoxia-mimetic agents desferrioxamine and cobalt chloride induce leukemic cell apoptosis through different hypoxia-inducible factor-1alpha independent mechanisms. Apoptosis. 11 (1), 67-77 (2006).
  10. Woods, I. G., Imam, F. B. Transcriptome analysis of severe hypoxic stress during development in zebrafish. Genom Data. 6, 83-88 (2015).
  11. Rouhi, P., et al. Hypoxia-induced metastasis model in embryonic zebrafish. Nat Protoc. 5 (12), 1911-1918 (2010).
  12. Stevenson, T. J., et al. Hypoxia disruption of vertebrate CAN pathfinding through EphrinB2 is rescued by magnesium. PLoS Genet. 8 (4), e1002638 (2012).
  13. Khaliullina, H., Love, N. K., Harris, W. A. Nutrient-Deprived Retinal Progenitors Proliferate in Response to Hypoxia: Interaction of the HIF-1 and mTOR Pathway. J Dev Biol. 4 (2), (2016).
  14. Nieuwkoop, P. D., Faber, J., Nieuwkoop, D. P., Faber, J. . Normal Table of Xenopus laevis (Daudin). , (1994).
  15. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev Dyn. 203 (3), 253-310 (1995).
  16. Kohn, D. F., Wixson, S. K., White, W. J., Benson, G. J. . Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals. , (1997).
  17. McDonough, M. J., et al. Dissection, Culture, and Analysis of Xenopus laevis Embryonic Retinal Tissue. JoVE. (70), (2012).
check_url/55710?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Khaliullina-Skultety, H., Zi Chao, N., Harris, W. A. Induction of Hypoxia in Living Frog and Zebrafish Embryos. J. Vis. Exp. (124), e55710, doi:10.3791/55710 (2017).

View Video