Summary

Перфузия DiI как метод сосудистой визуализации в<em> Разное</em

Published: June 16, 2017
doi:

Summary

Используя липофильную методику окрашивания перхлоратом 1,1'-диоктадеци-3,3,3 ', 3'-тетраметилиндокарбоцианин (DiI), Ambystoma mexicanum может подвергаться сосудистой перфузии, что позволяет легко визуализировать сосудистую систему.

Abstract

Методы перфузии использовались на протяжении веков для визуализации циркуляции тканей. Axolotl (Ambystoma mexicanum) – это вид саламандры, который стал важной моделью исследований регенерации. Мало что известно о том, как реваскуляризация возникает в контексте регенерации у этих животных. Здесь мы сообщаем простой способ визуализации сосудистой сети в аксолотле посредством перфузии перхлората 1,1'-диоктидаци-3,3,3 ', 3'-тетраметилиндокарбоцианина (DiI). DiI – липофильный карбоцианиновый краситель, который мгновенно встраивается в плазматическую мембрану эндотелиальных клеток. Перфузия осуществляется с использованием перистальтического насоса, так что DiI входит в циркуляцию через аорту. Во время перфузии краситель течет через кровеносные сосуды аксолотля и включается в липидный бислой сосудистых эндотелиальных клеток при контакте. Процедура перфузии занимает приблизительно один час для восьмидюймового аксолотля. Сразу после перфузии wiTh DiI, аксолотль можно визуализировать с помощью конфокального флуоресцентного микроскопа. DiI излучает свет в красно-оранжевом диапазоне при возбуждении зеленым флуоресцентным фильтром. Эта процедура перфузии DiI может быть использована для визуализации сосудистой структуры аксолотлей или для демонстрации моделей реваскуляризации в регенерирующих тканях.

Introduction

Визуализация сосудистой сети играет важную роль в понимании структуры и функции организмов у многих видов. Изучены модели и графические представления об обращении с 16 -го века с Леонардо да Винчи 1 . Используя воски и резиновые формы, ткани были перфузированы для создания трехмерных моделей сосудистой сети, что позволило изучить органогенез и патогенез 1 , 2 . Смолы и воски окрашивались красителями , такими как индийские чернила или карминовые красные, чтобы обеспечить их легкую визуализацию 1 , 2 . Однако эти методы вызвали множество проблем, поскольку их высокая вязкость препятствовала полной перфузии интересующей ткани 1 . По мере того, как поле становилось все более изощренным, в него входило использование конфокальных и электронных микроскопов, перемещающих перфузионную технику От литейных форм и от жидких перфузий сосудистой сети, некоторые из которых допускают перфузию и визуализацию кровеносных сосудов без разрушения исходной ткани. 3 . DiI, флуоресцентный карбоцианиновый краситель, является одним из таких пятен, который позволяет перфузию животных без повреждения сосудистой ткани.

Карбоцианиновые красители представляют собой липофильные красители, которые вступают в клеточные мембраны при контакте. Эти красители позволяют легко и мгновенно окрашивать сосудистые эндотелиальные клетки, которые затем можно рассматривать под флуоресцентным конфокальным микроскопом. DiI движется через боковую диффузию в липидной мембране клеток, как показано в маркировке и отслеживании нейронов 4 . Химически две алкильные цепи DiI дают красителю его высокое сродство к клеточной мембране, тогда как два конъюгированных кольца из флуорохрома, который отвечает за излучение красной длины волны при возбуждении зелеными флуоресцентными светофильтрами> 4. DiI был использован во многих емкостях, включая успешную маркировку плазматической мембраны и антероградную и ретроградную маркировку в нейронах 5 , 6 . DiI ранее использовался в протоколах перфузии при визуализации сосудистой сети мышей 7 .

Axolotls ( Ambystoma mexicanum ) являются саламандрами, которые живут исключительно в солоноватых озерах вблизи Мехико, Мексика. Эти животные стали важной моделью для понимания процессов регенерации, поскольку они могут восстанавливать полные конечности, хвост (включая нервный шнур), части сердца и другие внутренние органы и части глаз, как взрослые 8 , 9 . Кроме того, с недавним применением генетических инструментов в аксолотлях стало возможным беспрецедентное проникновение в молекулы и клетки, управляющие этими процессами. Успешное возвращениеРадиус целой конечности требует обширного процесса реваскуляризации, который может играть значительную роль в регенерации за пределами просто традиционных функций кровеносных сосудов в обеспечении кислорода и питательных веществ. Понимание реваскуляризации в контексте регенерации тканей обязательно. Ранее сосуды Axolotl визуализировались с использованием индийских чернил, и хотя результаты были интригующими, этот процесс не был повторно рассмотрен в последующие десятилетия 10 . Мы стремились адаптировать протокол перфузии DiI, разработанный для использования у млекопитающих, чтобы обеспечить полную перфузию и визуализацию аксолотлевой сосудистой системы 7 . Этот протокол описывает шаги, предпринятые для успешной перфузии и последующего визуализации циркуляции аксолотля с использованием метода окрашивания DiI. Эта процедура позволит точно визуализировать патентные кровеносные сосуды в гомеостатических тканях, а также в регенерирующих тканях и обеспечивает новый метод визуализацииN и анализ процесса реваскуляризации в аксолотле.

Protocol

Все эксперименты с аксолотом проводились в соответствии с Комитетом по уходу за больными и их использованием в Бригаме и Женской больнице (BWH). 1. Настройте эксперимент по перфузии Поместите взрослый аксолотль в пластиковый контейнер, заполненный 0,1% раствором трик…

Representative Results

При окрашивании DiI сосудистая сеть аксолота может быть легко визуализирована. Кровеносные сосуды животных, перфузируемые липофильным красителем, сразу видны под флуоресцентным конфокальным микроскопом. Рисунок 1 .1-1.5 представляет собой с…

Discussion

Визуализация сосудистой сети аксолота может быть успешно достигнута путем перфузии с липофильным карбоцианиновым красителем DiI. В этом исследовании мы описываем новый протокол для перфузии аксолотля с DiI с использованием перистальтического насоса. Мы также показываем последующую ви…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Это исследование было поддержано Brigham & Women's Hospital и March of Dimes. Авторы хотели бы поблагодарить всех членов Whited Lab за их поддержку и советы.

Materials

Peristaltic Pump  Marshall Scientific  RD-RP1
Perfusion tubing Excelon Lab & Vacuum Tubing 436901705 size S1A
27g butterfly needle EXELint Medical Products 26709
NaCl AmericanBio 7647-14-5
KCl AmericanBio 7747-40-7
Na2HPO4  AmericanBio 7558-79-4
NaH2PO4 AmericanBio 10049-21-5
Distilled water
HCl AmericanBio 7647-01-0
Glucose ThermoFischer A2494001
1,1′-Dioctadecyl-3,3,3′,3′-tetramethylindocarbocyanine perchlorate Sigma Aldrich 468495
Ethanol (100% vol/vol) Sigma Aldrich 64-17-5
Surgical foreceps  Medline MDG0748741
Polystyrene foam frame any polystyrene foam square with an axolotl-shaped  cut out
Surgical scissors Medline DYND04025
Scalpel  Medline MDS15210
Absorbent underpad Avacare Medical PKUFSx
Paper towels
Standard disposable transfer pipette Fisherbrand 50216954
Clamp stand Adafruit 291
Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate Sigma Aldrich E10521 Tricaine powder
Adult axolotl
MgSO4 AmericanBio 10034-99-8
CaCl2 Sigma Aldrich C1016-100G
NaHCO3 Sigma Aldrich S5761-500G
Plastic tanks Varying size appropriate for the axolotl
Paraformaldehyde Sigma Aldrich 30525-89-4
Axolotl
Leica Microscope Leica M165 FC
ET-CY3 Fluorescent Filter Leica M205FA/M165FC

References

  1. Giuvarasteanu, I. Scanning electron microscopy of vascular corrosion casts – standard method for studying microvessels. Rom J Morphol Embryo. 48 (3), 257-261 (2007).
  2. Hasan, M. R., Herz, J., Hermann, D. M., Doeppner, T. R. Intravascular perfusion of carbon black ink allows reliable visualization of cerebral vessels. J Vis Exp. (71), e4374 (2013).
  3. Minnich, B., Lametschwandtner, A. Scanning electron microscopy and vascular corrosion casting for the characterization of microvascular networks in human and animal tissues. Microscopy: Science, Technology, Applications, and Education. 1, 29-39 (2010).
  4. Honig, M., Hume, R. I. DiI and DiO: versatile fluorescent dyes for neuronal labelling and pathway tracing. Trends Neurosci. 13, 333-335 (1989).
  5. Honig, M. G., Hume, R. I. Fluorescent carbocyanine dyes allow living neurons of identified origin to be studied in long-term cultures. J Cell Biol. 103 (1), 171-187 (1986).
  6. Schwartz, M., Agranoff, B. W. Outgrowth and maintenance of neurites from cultured goldfish retinal ganglion cells. Brain Res. 206 (2), 331-343 (1981).
  7. Li, Y., Song, Y., Zhao, L., Gaidosh, G., Laties, A. M., Wen, R. Direct labeling and visualization of blood vessels with lipophilic carbocyanine dye DiI. Nat Protoc. 3 (11), 1703-1708 (2008).
  8. Kuo, T. H., Kowalko, J. E., DiTommaso, T., Nyambi, M., Montoro, D. T., Essner, J. J., Whited, J. L. Evidence of TALEN-mediated gene editing of an endogenous locus in axolotl. Regeneration. 2 (1), 37-43 (2015).
  9. Brockes, J. P., Kumar, A. Appendage Regeneration in Adult Vertebrates and Implications for Regenerative Medicine. Science. 310 (5756), 1919-1923 (2005).
  10. Smith, A. R., Wolpert, L. Nerves and angiogenesis in amphibian limb regeneration. Nature. 257 (5523), 224-225 (1975).
check_url/55740?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Saltman, A. J., Barakat, M., Bryant, D. M., Brodovskaya, A., Whited, J. L. DiI Perfusion as a Method for Vascular Visualization in Ambystoma mexicanum. J. Vis. Exp. (124), e55740, doi:10.3791/55740 (2017).

View Video