Summary

Ultrasonografie in experimentele reproductieve onderzoeken op ratten

Published: December 02, 2017
doi:

Summary

Dit manuscript wordt het nut van echografie uitgevoerd op vrouwelijke ratten te ontwerpen van experimentele modellen voor reproductieve en gynaecologische onderzoek beschreven. Een stapsgewijze uitleg van het uitvoeren van de evaluatie van de ultrasonographic wordt weergegeven.

Abstract

Met de ontwikkeling van geassisteerde voortplanting technologie en de ethische beperkingen van het onderzoek op de mens, hebben de rat diermodellen wijd in reproductieve geneeskunde is gebruikt. In het verleden, heeft de studie van reproductieve systeemontwikkeling bij knaagdieren zijn gebaseerd op eenmalige histopathologisch onderzoek van het verwijderde weefsel. Onlangs, met de ontwikkeling van hoge resolutie transabdominal echografie, kwalitatief hoogwaardige echografie kan nu worden uitgevoerd om te evalueren van de voortplantingsorganen van ratten, waardoor een nieuwe methode voor het bestuderen van het voortplantingssysteem. Beelden werden verkregen met behulp van een hoge resolutie ultrasonographic systeem. Gynaecologische Ultrasonografie werd uitgevoerd op 28 acht weken oude niet-drachtige ratten en 5 zwangere Sprague-Dawley ratten. We beschrijven hoe herken je organen van het reproductieve systeem en bijbehorende structuren in typische weergaven tijdens de verschillende fasen van de estrus cyclus. Kleur stroom die Doppler werd gebruikt voor het meten van de bloedtoevoer van de baarmoeder slagader en evalueren van baarmoeder bloed stroom patroon wijzigingen tijdens verschillende stadia van de zwangerschap. We hebben aangetoond dat echografie verkenning een handige methode is voor de beoordeling van wijzigingen in interne voortplantingsorganen. Het gebruik ervan verhoogt de mogelijkheid van aanvullende experimenten, met inbegrip van medische of chirurgische procedures, en biedt de mogelijkheid om te controleren sonographic wijzigingen in inwendige organen zonder het offeren van dieren.

Introduction

Rat dierlijke modellen hebben wijd gebruikt in de reproductieve geneeskunde, met inbegrip van in het embryo en ovariële transplantatie1,2. Echter in het verleden, de studie van reproductieve systeemontwikkeling bij knaagdieren is gebaseerd op eenmalige histopathologisch onderzoek van het verwijderde weefsel, en de longitudinale studie van veranderingen van de dagelijkse reproductieve organen niet mogelijk is geweest in ratten3. Echografie is wijd verbeid gebruikt in gesubsidieerde reproductieve technologie bij de mens voor meer dan 30 jaar, maar deze waardevolle technologie is alleen toegepast op ratten onlangs.

Ons doel was een ultrasonographic aanpak voor het evalueren van de voortplantingsorganen van Sprague-Dawley ratten om te ontwerpen van experimentele modellen voor reproductie en Gynaecologie onderzoek en om aan te tonen van de procedure omdat vast te stellen om onze kennis, Er zijn geen actuele gevisualiseerde publicaties met betrekking tot deze procedure. We beschrijven de procedure van ultrasonographic onderzoek van de geslachtsorganen van de vrouwelijke rat en huidige ultrasonographic bevindingen betreffende anatomie en uteriene slagader doorbloeding met behulp van high-definition echografie. We de kenmerken van het endometrium, de eierstokken en de baarmoeder slagader bloedstroom in niet-drachtige dieren gecontroleerd in verschillende stadia van de cyclus van de estrus om te evalueren van de aanzienlijke verschillen in dikte van het baarmoederslijmvlies, ovariële morfologie en uteriene doorbloeding in verschillende stadia van de cyclus van de estrus, vergelijkbaar met vrouwen. Wij gebruikte hoogwaardige echografie apparatuur met een 70 MHz-frequentie en het niveau van een resolutie van 30 µm. Ons andere doel was om te evalueren van de wijzigingen in de weerstand van de uteriene doorbloeding bij zwangere ratten. Deze techniek zorgt voor de studie van dagelijkse veranderingen in de voortplantingsorganen zonder het offeren van dieren.

Er zijn verschillende technische moeilijkheden bij het gebruik van echografie op ratten. Deze problemen omvatten: het endometrium rat is veel dunner dan een menselijk vrouwelijke4. Moeilijkheid in de eierstokken van ratten imaging heeft toegeschreven aan dikkere huid en de buikwand musculatuur bij ratten, wat in in de buurt van-volledige demping van de echografie5 resulteerde, en de uteriene slagader is veel moeilijker te vinden niet-drachtige ratten. We hebben veel technische problemen met de procedure opgelost, en voor die problemen die blijven, laten we zien hoe ze te minimaliseren.

Succesvolle controle van sonographic veranderingen in de voortplantingsorganen van ratten zonder de noodzaak om het offeren van dieren opent de mogelijkheid van het opbouwen van toekomstige diermodellen van reproductieve geneeskunde en andere chirurgische ingrepen.

Protocol

Deze studie werd uitgevoerd in strikte overeenstemming met de aanbevelingen in de gids voor de zorg en het gebruik van proefdieren van het National Institutes of Health en overeenkomstig de aankomen (dier onderzoek: rapportage In Vivo experimenten) richtlijnen. Het protocol ontvangen een licentie voor dierproeven voldoen aan richtlijn 2010/63/EU met het nummer van de vergunning A13170404 (Anexo 1). Alle experimenten werden uitgevoerd in een Europese Unie-gecertificeerd laboratorium volgens nationale richtlijnen voor de e…

Representative Results

Er waren geen significante verschillen in antero-posterior uteriene hoorn diameters of in de dikte van het baarmoederslijmvlies tussen de twee zijkanten van de baarmoeder-hoorn (tabel 1). Vergeleken met de groep 2, de gemiddelde dikte van het baarmoederslijmvlies in de groep 1 was dikker, maar geen significante verschillen (P > 0,05) werden gevonden tussen de twee groepen (Figuur 3). Toch vonden we vloeistof in de baarmoeder (in 8 van de 28 ratten) in de buurt van de cyclus …

Discussion

Als gevolg van de procedurele wijzigingen en probleemoplossing die nodig was in deze studie, ondanks ons doel van de identificatie van alle fasen van de estrus cyclus in ratten met behulp van echografie, konden we significante verschillen vinden. We veronderstellen dat deze moeilijkheden worden kunnen omdat de estrus cyclus slechts een paar dagen bij ratten, in tegenstelling tot de cyclus bij vrouwen duurt. Wij zijn ervan overtuigd dat alle metingen werden gedaan op precies het juiste moment om te bepalen van eventuele v…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit onderzoek werd gesteund door dier experimenten sectie van Murcia Universiteit en de verloskunde en Gynaecologie afdeling van Murcia University. Wij danken alle technici die werken bij de CEIB (Centro Experimental nl Investigaciones Biomédicas), de sectie van dierproeven voor de Universiteit van Murcia, die hebben meegewerkt aan dit project.

Materials

Vevo3100 high-resolution in vivo micro-imaging system* Visual Sonics, inc. www.visualsonics.com/products
Vevo integrated rail system including physiological monitoring unit. Visual Sonics, inc. www.visualsonics.com/products
MX400 Transducter Visual Sonics, inc. www.visualsonics.com/products
Vevo Lab Software Visual Sonics, inc. www.visualsonics.com/products
HSD: Sprague Dawley SD Envigo, inc. Rat strain
Lubricating Gel General Supply
CIBERTEC CA-EAC20 Anesthesia Trolley System Cibertec S.A  Anesthesia Machine
Ecogel 100 ultrasound gel Eco-Med Pharmaceuticals Inc.
Hair removal lotion (Nair)  General Supply
Isoflurane Esteve Veterinaria Inhalatory anesthesia
* Required software is Vevo software including B-Mode application, pulse wave Doppler application, and vascular strain analysis tools package.

References

  1. Hunter, R. K., et al. Adipose-Derived Stromal Vascular Fraction Cell Effects on a Rodent Model of Thin Endometrium. PLoS ONE. 10 (12), e0144823 (2015).
  2. Wang, H., Dey, S. K. Roadmap to embryo implantation: clues from mouse models. Nat Rev Genet. 7 (3), 185-199 (2006).
  3. Pistner, A., Belmonte, S., Coulthard, T., Blaxall, B. C. Murine Echocardiography and Ultrasound Imaging. J Vis Exp. (42), (2010).
  4. Lohmiller, J. J., Swing, S. P. Reproduction and Breeding. The Laboratory Rat. , 147-164 (2006).
  5. Jaiswal, R. S., Singh, J., Adams, G. P. High-resolution ultrasound biomicroscopy for monitoring ovarian structures in mice. Reprod Biol Endocrinol. 7 (69), (2009).
  6. Kim, G. H. Murine Fetal Echocardiography. J Vis Exp. (72), (2013).
  7. Jing, Z., Qiong, Z., Yonggang, W., Yanping, L. Rat bone marrow mesenchymal stem cells improve regeneration of thin endometrium in rat. Fertil Steril. 101 (2), 587-594 (2014).
  8. Mu, J., Adamson, S. L. Developmental changes in hemodynamics of uterine artery, utero- and umbilicoplacental, and vitelline circulations in mouse throughout gestation. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 291 (3), H1421-H1428 (2006).
  9. Anderson, C. M., Lopez, F., Zhang, H. Y., Pavlish, K., Benoit, J. N. Reduced uteroplacental perfusion alters uterine arcuate artery function in the pregnant Sprague-Dawley rat. Biol Reprod. 72 (3), 762-766 (2005).
  10. Hongmei, L., et al. Ultrasound Molecular Imaging of Vascular Endothelial Growth Factor Receptor 2 Expression for Endometrial Receptivity Evaluation. Theranostics. 5 (2), 206-217 (2015).
check_url/56038?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Wang, T., Oltra-Rodríguez, L., García-Carrillo, N., Nieto, A., Cao, Y., Sánchez-Ferrer, M. L. Ultrasonography in Experimental Reproductive Investigations on Rats. J. Vis. Exp. (130), e56038, doi:10.3791/56038 (2017).

View Video