Summary

تجديد ميكروليكتروديس الذهب صفت مجهزة لهو محلل خلية في الوقت الحقيقي

Published: March 12, 2018
doi:

Summary

ويصف هذا البروتوكول وضع استراتيجية عامة لتجديد التجارية ميكروليكتروديس الذهب صفت مجهزة لهو محلل خلية خالية من التسمية تهدف إلى إنقاذ على فحوصات أوفميكروتشيب-على أساس تكاليف تشغيل عالية. وتشمل عملية التجديد الهضم التربسين، الشطف مع الإيثانول والمياه، وخطوة لغزل، الذي يتيح للاستخدام المتكرر للرقائق.

Abstract

تحليل يستند إلى الخلية خالية من التسمية مفيد لدراسة الكيمياء الحيوية نظراً لأنها لا تتطلب استخدام الحيوانات التجريبية. نظراً لقدرته على توفير معلومات أكثر دينامية حول الخلايا تحت ظروف فسيولوجية من فحوصات الكيمياء الحيوية الكلاسيكية، هذا الإنزيم الخلية خالية من التسمية في الوقت الحقيقي على أساس مبدأ مقاومة كهربائية هو جذب المزيد من الاهتمام في الماضي العقد. ومع ذلك، قد يكون استخدامها العملي محدودة بسبب تكلفة باهظة الثمن نسبيا للقياس، والتي تستخدم لمحلل الخلية مكلفة الرقائق الذهب المتاح للاستهلاك. في هذا البروتوكول، قمنا بتطوير استراتيجية عامة لتجديد ميكروليكتروديس الذهب صفت مجهزة لهو محلل خلية خالية من العلامة تجارية. وتشمل عملية التجديد الهضم التربسين، الشطف مع الإيثانول والمياه، وخطوة لغزل. الطريقة المقترحة قد تم اختبارها وأظهرت أن تكون فعالة للتجدد والاستخدام المتكرر للوحات الإلكترونية التجارية ثلاث مرات على الأقل، التي ستساعد الباحثين حفظ على التكلفة العالية لفحوصات الخلية في الوقت الحقيقي.

Introduction

نظراً لأن كفاءة وأقل عملية تجريبية ذات العمالة الكثيفة، خالية من تسمية الخلية المستندة إلى التكنولوجيا شهدت نمواً سريعاً على مدى العقد الماضي لأغراض تحليلية، فضلا عن الفحص كما هو الحال في الجانب المتعلق بالبروتينات1،2 ، المخدرات تسليم3، إلخ4،5 مقارنة مع أساليب الكيمياء الحيوية التقليدية تهدف إلى تحليل الخلية، فحص الخلية خالية من التسمية في الوقت الحقيقي مع النموذج الأولى وضعتها جيفيير وزملاء العمل السابق6 يرتكز على مبدأ تسجيل التغييرات إشارة كهربائية على سطح الرقائق الدقيقة المرفقة بالخلية، التي تسمح بقياس مستمر لنمو الخلايا أو الهجرة بطريقة كمية. وفي أعقاب هذه الاستراتيجية، أطلق خلية في الوقت الحقيقي إلكترونية الاستشعار عن نظام (RT-مؤتمر الإحصائيين الأوروبيين) باستخدام مبدأ الكشف على أساس مقاومة كهربائية تم إدخال7،8 وهو محلل تجاري خلية في الوقت الحقيقي (RTCA) في الآونة الأخيرة لمختبر البحوث9.

محلل الخلية في الوقت الحقيقي التجاري أساسا يقرأ إشارات مقولة الخلايا لمقاومة الكهربائية، التي تنتج عن التغيرات الفسيولوجية للخلايا المحتضنة بما في ذلك انتشار الخلايا، والهجرة والبقاء، ومورفولوجيا والتقيد سطح الرقائق الدقيقة10،11. كذلك يتم تحويل هذه الإشارات الكهربائية بالمحلل إلى معلمة هو اسم فهرس الخلية (CI) لتقييم حالة الخلية. تغيير المقاومة من الرقائق الدقيقة أساسا يعكس البيئة الأيونية المحلية الخلايا المغطاة في واجهة القطب/الحل. ولذلك، الأداء التحليلي لمحلل الخلية تعتمد اعتماداً كبيرا على وحدة الاستشعار الأساسية، المتاح من الرقائق الدقيقة (أي، ما يسمى لوحات إلكترونية، مثلاً، 96/16/8-جيدا)، التي تصنع من صفت ميكروليكتروديس الذهب طباعة ليثوجرافيكالي في الجزء السفلي من الآبار الحضانة. ميكروليكتروديس الذهب التجمع في شكل خط في الدائرة (الشكل 1)، وتغطي معظم مساحة السطح من الآبار الحضانة، التي تسمح بالكشف عن الخلايا المرفقة3،12،13 حيوية وحساسة ،14. كاريتاس الدولية سوف تزيد في حالة المزيد من التغطية السطحية للخلايا على الرقاقة، وينخفض عندما تتعرض الخلايا لأنها سامة أسفر عن المبرمج. على الرغم من أن محلل الخلية في الوقت الحقيقي قد استخدمت غالباً لتحديد سيتوتوكسيسيتي11 والسمية العصبية15 وتوفير معلومات الحركية أكثر من أسلوب النهاية الكلاسيكية، لوحات إلكترونية يمكن التخلص منها هي تكلفة الاستهلاكية.

وحتى الآن، كانت هناك لا الأساليب المتاحة لتجديد اللوحة الإلكترونية، التي ربما يرجع ذلك إلى حقيقة أن شروط تجديد قاسية، مثل حمض الخليك أو حل البيرانا هي17تشارك16،، 18، وقد تغير الوضع الكهربائية للرقائق الذهبية. ولذلك، سوف يكون أسلوب معتدل وتتسم بالكفاءة لإزالة الخلايا ملتصقة وغيرها من المواد من سطح رقائق الذهب مرغوب فيه لعملية تجديد اللوحة الإلكترونية. وقد وضعنا مؤخرا بروتوكول يهدف إلى تجديد لوحات الإلكترونية المتاح باستخدام كواشف غير قابلة للتآكل ورقائق المجددة اتسمت الطرق الكهروكيميائية فضلا عن البصري19. باستخدام الكواشف المختبرية متوفرة بسهولة ومعتدلة بما في ذلك التربسين والايثانول، وقد أنشأنا طريقة عامة لتجديد اللوحة الإلكترونية التجارية دون الآثار السلبية، التي يتم تطبيقها بنجاح على تجديد هما النوعان الرئيسيان لوحة إلكترونية (16 و L8) المستخدمة ل RTCA.

Protocol

ملاحظة: بشكل عام، عملية التجديد يشمل الهضم التربسين والشطف خطوة مع الإيثانول والمياه. وقت الهضم تتغير وفقا لعدد الخلايا المستخدمة ونوع وعدد من الخلايا المستخدمة قد تختلف تبعاً لأغراض تجريبية. وينصح للتحقق من الرقائق المجددة استخدام أساليب البصرية والكهروكيميائيه لتحسين شروط التجديد. أث…

Representative Results

خصائص السطح من الرقائق الذهبية: تجديد الإجراءات المستخدمة في هذا البروتوكول كانت المبين في الشكل 1. ويبين الشكل 2 مجهرية سطح صور جديد وإعادة إنشاء لوحات إلكترونية بالمجهر الضوئي. كما هو مبين في الشكل 2 ألف</strong…

Discussion

يمكننا تلخيص عدة الأساليب المتاحة17،،من2324،25،26 لتجديد الرقائق في الجدول 1. وتشارك هذه الأساليب أساسا، نسبيا قسوة الظروف التجريبية لتحقيق التجديد الكامل للرقائق بسبب وجود تفاعلات جزيء جزيء ق…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيده العمل “الوطني العلوم الطبيعية مؤسسة في الصين” (U1703118)، مشروع ممول من أولوية الأكاديمية برنامج التنمية من جيانغسو التعليم العالي المؤسسات (PAPD)، والبرنامج شوانجتشوانج جيانغسو، وصناديق مفتوحة من “مفتاح الدولة” المختبر الكيماوي/بيوسينسينج وتشيموميتريكس (2016015) و “المختبر الوطني من بيوماكروموليكوليس” (2017kf05) والمشروع البروفسور Jiangsu Specially-Appointed، الصين.

Materials

Rat: Sprague-Dawley Charles River Cat# 400
mouse anti-rat CD11b monoclonal (clone OX42) Bio-Rad Cat# MCA275R Panning: 1:1,000; Staining: 1:500
Goat polycolonal anti-Iba1  Abcam Cat# AB5076 Staining: 1:500
Rabbit polyclonal anti-Ki67  Abcam  Cat# AB15580 Staining: 1:500
Alexa Fluor Donkey anti-mouse 594 Invitrogen Cat# 11055 Staining: 1:500
Alexa Fluor Donkey anti-goat 488 Invitrogen Cat# A-21203 Staining: 1:500
Alexa Fluor Donkey anti-Rabbit 647 Invitrogen Cat# A-31573 Staining: 1:500
Triton-X (detergent in ICC staining) Thermo Fisher Cat# 28313
Heparan sulfate Galen Laboratory Supplies Cat# GAG-HS01
Heparin Sigma  Cat# M3149
Peptone from milk solids Sigma Cat# P6838
TGF-β2 Peprotech Cat# 100-35B
Murine IL-34 R&D Systems Cat# 5195-ML/CF
Ovine wool cholesterol Avanti Polar Lipids Cat# 700000P
Collagen IV Corning  Cat# 354233
Oleic acid Cayman Chemicals  Cat# 90260
11(Z)Eicosadienoic (Gondoic) Acid Cayman Chemicals  Cat# 20606
Calcein AM dye Invitrogen Cat# C3100MP
Ethidium homodimer-1 Invitrogen Cat# E1169
DNaseI Worthington Cat# DPRFS
Percoll PLUS GE Healthcare Cat# 17-5445-02
Trypsin  Sigma Cat# T9935
DMEM/F12 Gibco Cat# 21041-02
Penicillin/ Streptomycin Gibco Cat# 15140-122
Glutamine Gibco Cat# 25030-081
N-acetyl cysteine  Sigma Cat# A9165
Insulin Sigma Cat# 16634
Apo-transferrin  Sigma Cat# T1147
Sodium selenite Sigma Cat# S-5261
DMEM (high glucose) Gibco Cat# 11960-044
Dapi Fluoromount-G Southern Biotech Cat# 0100-20 
Poly-D-Lysine  Sigma Cat# A-003-E
Primaria Plates  VWR Cat# 62406-456
Stock reagents  reconstitution  Concentration used Storage
Apo-transferrin 10 mg/mL in PBS  1:100 -20°C
N-acetyl cysteine 5 mg/mL in H2 1:1,000 -20°C
Sodium selenite 2.5 mg/mL in H2 1:25,000 -20°C
Collagen IV 200 μg/mL in PBS  1:100 -80°C
TGF-b2 20 μg/mL in PBS  1:10,000 -20°C
IL-34 100 μg/mL in PBS  1:1,000 -80°C
Ovine wool cholesterol 1.5 mg/mL in 100% ethanol  1:1,000 -20°C
Heparan sulfate 1 mg/mL in H2O 1:1,000 -20°C
Oleic acid/Gondoic acid Gondoic: 0.001 mg/mL; Oleic: 0.1 mg/mL in 100% ethanol  1:1,000 -20°C
Heparin 50 mg/mL in PBS  1:100 -20°C
Solutions  Recipe  Comments
Perfusion Buffer 50 μg/mL heparin in DPBS++ (PBS with Ca++ and Mg+ +) Use when ice-cold
Douncing Buffer 200 μL of 0.4% DNaseI in 50 mL of DPBS++ Use when ice-cold
Panning Buffer 2 mg/mL of peptone from milk solids in DPBS++
Microglia Growth Medium (MGM) DMEM/F12 containing 100 units/mL penicillin, 100 μg/mL streptomycin, 2 mM glutamine, 5 μg/mL N-acetyl cysteine, 5 μg/mL insulin, 100 μg/mL apo-transferrin, and 100 ng/mL sodium selenite Use ice-cold MGM to pan microglia off of immnopanning dish.
Collagen IV Coating MGM containing 2 μg/mL collagen IV
Myelin Seperation Buffer 9 mL Percoll PLUS, 1 mL 10x PBS without Ca++ and Mg++, 9 μL 1 M CaCl2, 5 μL 1 M MgCl2 Mix well after the addition of  CaCl2 and MgCl2
TGF-b2/IL-34/Cholesterol containing growth media (TIC)  MGM containing human 2 ng/mL TGF-b2, 100 ng/mL murine IL-34, 1.5 μg/mL ovine wool cholesterol, 10 μg/mL heparan sulfate, 0.1 μg/ml oleic acid, and 0.001 μg/ml gondoic acid Make sure to add cholesterol to media warmed to 37 °C and do not add more than 1.5 μg/mL or it will precipitate out. Do not filter cholesterol-containing media. Equilibrate TIC media with 10% CO2 for 30 min- 1 hr before adding to cells to insure optimal pH. 

References

  1. Michaelis, S., Wegener, J., Robelek, R. Label-free monitoring of cell-based assays: Combining impedance analysis with SPR for multiparametric cell profiling. Biosens. Bioelectron. 49, 63-70 (2013).
  2. Hillger, J. M., et al. Whole-cell biosensor for label-free detection of GPCR-mediated drug responses in personal cell lines. Biosens. Bioelectron. 74, 233-242 (2015).
  3. Atienzar, F. A., et al. The use of real-time cell analyzer technology in drug discovery: defining optimal cell culture conditions and assay reproducibility with different adherent cellular models. J. Biomol. Screen. 16 (6), 575-587 (2011).
  4. Chen, H., et al. Label-free luminescent mesoporous silica nanoparticles for imaging and drug delivery. Theranostics. 3 (9), 650-657 (2013).
  5. Gao, Z., et al. Silicon Nanowire Arrays for Label-Free Detection of DNA. Anal. Chem. 79 (9), 3291-3297 (2007).
  6. Giaever, I., Keese, C. A morphological biosensor for mammalian cells. Nature. 366 (6455), 591-592 (1993).
  7. Xiao, C., Lachance, B., Sunahara, G., Luong, J. H. T. Assessment of cytotoxicity using electric cell-substrate impedance sensing: concentration and time response function approach. Anal. Chem. 74 (22), 5748-5753 (2002).
  8. Xiao, C., Lachance, B., Sunahara, G., Luong, J. H. T. An in-depth analysis of electric cell-substrate impedance sensing to study the attachment and spreading of mammalian cells. Anal. Chem. 74 (6), 1333-1339 (2002).
  9. Xing, J. Z., et al. Dynamic monitoring of cytotoxicity on microelectronic sensors. Chem. Res. Toxicol. 18 (2), 154-161 (2005).
  10. Abassi, Y. A., et al. Kinetic cell-based morphological screening: prediction of mechanism of compound action and off-target effects. Chem. Biol. 16 (7), 712-723 (2009).
  11. Urcan, E., et al. Real-time xCELLigence impedance analysis of the cytotoxicity of dental composite components on human gingival fibroblasts. Dent. Mater. 26 (1), 51-58 (2010).
  12. Atienza, J. M., Zhu, J., Wang, X., Xu, X., Abassi, Y. Dynamic monitoring of cell adhesion and spreading on microelectronic sensor arrays. J. Biomol. Screen. 10 (8), 795-805 (2005).
  13. Rahim, S., Uren, A. A Real-time Electrical Impedance Based Technique to Measure Invasion of Endothelial Cell Monolayer by Cancer Cells. J. Vis. Exp. (50), e2792 (2011).
  14. Moodley, K., Angel, C. E., Glass, M., Graham, E. S. Real-time profiling of NK cell killing of human astrocytes using xCELLigence technology. J. Neurosci. Meth. 200 (2), 173-180 (2011).
  15. Marinova, Z., Walitza, S., Grunblatt, E. Real-time impedance-based cell analyzer as a tool to delineate molecular pathways involved in neurotoxicity and neuroprotection in a neuronal cell line. J. Vis. Exp. (90), e51748 (2014).
  16. Chatelier, R. C., Gengenbach, T. R., Griesser, H. J., Brighamburke, M., Oshannessy, D. J. A general method to recondition and reuse Biacore sensor chips fouled with covalently immobilized protein/peptide. Anal. Biochem. 229 (1), 112-118 (1995).
  17. Vashist, S. K. A method for regenerating gold surface for prolonged reuse of gold-coated surface plasmon resonance chip. Anal. Biochem. 423 (1), 23-25 (2012).
  18. Nguyen, T. T., et al. A regenerative label-free fiber optic sensor using surface plasmon resonance for clinical diagnosis of fibrinogen. Int. J. Nanomed. 10, 155-163 (2015).
  19. Xu, Z., et al. A general method to regenerate arrayed gold microelectrodes for label-free cell assay. Anal. Biochem. 516, 57-60 (2017).
  20. Wang, H., et al. Three-dimensionally controllable synthesis of multichannel silica nanotubes and their application as dual drug carriers. ChemPlusChem. 80 (11), 1615-1623 (2015).
  21. Verrier, S., Notingher, I., Polak, J. M., Hench, L. L. In situ monitoring of cell death using Raman microspectroscopy. Biopolymers. 74 (1-2), 157-162 (2004).
  22. Keighley, S. D., Li, P., Estrela, P., Migliorato, P. Optimization of DNA immobilization on gold electrodes for label-free detection by electrochemical impedance spectroscopy. Biosens. Bioelectron. 23 (8), 1291-1297 (2008).
  23. Kandimalla, V. B., et al. Regeneration of ethyl parathion antibodies for repeated use in immunosensor: a study on dissociation of antigens from antibodies. Biosens. Bioelectron. 20 (4), 903-906 (2004).
  24. McGovern, J. P., Shih, W. Y., Shih, W. H. In situ detection of Bacillus anthracis spores using fully submersible, self-exciting, self-sensing PMN-PT/Sn piezoelectric microcantilevers. Analyst. 132 (8), 777-783 (2007).
  25. Loo, L., et al. A rapid method to regenerate piezoelectric microcantilever sensors (PEMS). Sensors. 11 (5), 5520-5528 (2011).
  26. Fischer, L. M., et al. Gold cleaning methods for electrochemical detection applications. Microelectron. Eng. 86 (4-6), 1282-1285 (2009).
check_url/56250?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Xu, Z., Song, Y., Jiang, H., Kong, Y., Li, X., Chen, J., Wu, Y. Regeneration of Arrayed Gold Microelectrodes Equipped for a Real-Time Cell Analyzer. J. Vis. Exp. (133), e56250, doi:10.3791/56250 (2018).

View Video