Summary

Praktiske hensyn i å studere metastatisk lungekreft kolonisering i Osteosarcoma bruker lunge metastasering analysen

Published: March 12, 2018
doi:

Summary

Målet med denne artikkelen er å gi en detaljert beskrivelse av protokollen for lunge metastasering analysen (PuMA). Denne modellen tillater forskere å studere metastatisk osteosarcoma (OS) cellevekst i lungevev bruker widefield fluorescens eller AC confocal laserskanning mikroskopet.

Abstract

Lunge metastasering analysen (PuMA) er en ex vivo lunge explant og lukket celle kultur-systemet, som tillater forskere å studere biologi lunge kolonisering i osteosarcoma (OS) ved fluorescens mikroskopi. Denne artikkelen gir en detaljert beskrivelse av protokollen, og diskuterer eksempler på innhenting bildedataene på metastatisk vekst ved hjelp av widefield eller AC confocal fluorescens mikroskopi plattformer. Fleksibiliteten til PuMA modellen tillater forskere å studere ikke bare veksten av OS celler i lunge-microenvironment, men også å vurdere effekten av anti-metastatisk therapeutics over tid. AC confocal mikroskopi gir enestående og høy oppløsning bilder av OS celle interaksjon med lunge parenchyma. Videre PuMA modellen er kombinert med fluorescerende fargestoffer eller fluorescerende protein genetisk journalister, kan forskerne studere lunge microenvironment, mobilnettet og subcellular, gen funksjon og promoter aktivitet i metastatisk OS celler. PuMA modellen gir et nytt verktøy for osteosarcoma forskere oppdage nye metastasering biologi og vurdere aktiviteten til romanen anti-metastatisk, målrettet terapi.

Introduction

Bedre utfall pediatriske pasienter med metastatisk osteosarcoma (OS) fortsatt kritisk udekket kliniske behov 1. Dette underbygger betydningen av å utvikle nye molecularly-målrettet terapi. Konvensjonelle chemotherapeutics som mål svulst celle spredning ikke har vist seg for å være effektive i behandling av metastatisk sykdom og dermed romanen strategier må mot selve metastatisk prosessen 2. Gjeldende artikkelen drøfter de praktiske sidene av en relativt ny type ex vivo lunge metastasering modell, lunge metastasering analysen (PuMA) utviklet av Mendoza og kolleger3, som gir nyttig verktøy i å oppdage nye molekylær drivere i lunge metastasering progresjon i OS 4,5. Før du fortsetter, men det ville være klokt å kort berører flere aktuelle modeller for metastasering, og hvordan PuMA modellen tilbyr flere fordeler sammenlignet med konvensjonelle i vitro søk.

Mest eksperimentelle modeller brukes til å studere metastasering utgjør i vitro og vivo systemer som recapitulate et bestemt trinn eller flere trinn i metastatisk kaskade. Disse trinnene omfatter: 1) kreftceller migrere fra den primære svulsten, 2) intravasation i nærliggende fartøy (blod og lymfatiske) og transitt i sirkulasjon, 3) arrestere på sekundær, 4) bloduttredelse og overlevelse på sekundære området, 5) dannelse micrometastases og 6) veksten i Stangeriaceae metastaser (figur 1). In vitro modeller av metastasering ha 2-dimensjonal (2D) overføring og 3-dimensjonale (3D) Matrigel invasjon analyser som er omtalt i detalj andre steder 6. I vivo modeller, de to brukte modell-systemene inkluderer: 1) den spontane metastasering modell er der en kreftceller er orthotopically injiseres i en bestemt vev type til en lokal svulst som spontant kaster metastatisk celler til fjerntliggende områder; 2) eksperimentelle metastasering modell er hvor kreftceller som injiseres i blodkaret oppstrøms av målet orgelet. For eksempel en hale vene injeksjon av tumor celler resultater i utvikling lunge metastaser5,7,8. Andre eksperimentelle metastasering modeller inkluderer injeksjon av kreftceller i milten eller hvem stemning som resulterer i utviklingen av leveren metastaser9,10. Praktiske hensyn til modellene i vivo er diskutert i detalj ved Welch 11. En annen i vivo modell brukes å studere metastasering i pediatric sarkomer er nedsatt nyre subcapsular svulst implantasjon modell som resulterer i lokale tumor formasjon og spontan metastasering til lungene 12,13. En mer teknisk krevende teknikk som intravital videomicroscopy kan visualisere direkte, i sanntid, interaksjoner mellom metastatisk kreftceller og microvasculature av et metastatisk nettsted (dvs. lungene eller leveren) som beskrevet av MacDonald14 og Entenberg15, eller kreft cellen bloduttredelse i chorioallantoic membranen som beskrevet av Kim 16.

PuMA modellen er en ex vivo, lunge vev explant, lukket kultur-systemet der veksten av fluorescerende kreftceller kan langs observeres via fluorescens mikroskopi over en periode på en måned (se figur 2A). Denne modellen viser den innledende stadiet av lungekreft kolonisering (trinn 3 til 5) i metastatisk kaskade. Store fordeler av PuMA modellen over konvensjonelle i vitro modeller er: 1) gir en mulighet til å måle langs metastatisk kreft cellevekst i en 3D microenvironment som beholder mange funksjoner i lunge microenvironment i vivo 3; 2) puMA lar forskeren å vurdere om knockdown av en kandidat genet eller narkotika behandling har anti-metastatisk aktivitet i forbindelse med en 3D lunge microenvironment; 3) PuMA modellen er fleksibel med mange typer fluorescens mikroskopi plattformer (figur 2B) som widefield fluorescens mikroskopi eller laser-skanning AC confocal mikroskopi vises eksempler på hver i figur 2C & D, henholdsvis. Denne artikkelen vil drøfte hvordan PuMA modellen til å anskaffe langsgående bildebehandling på metastatisk veksten av forbedret grønne fluorescerende protein (eGFP)-uttrykke, menneskelige høyt og lavt metastatisk osteosarcoma celler (MNNG og HOS cellene, henholdsvis) bruker lav forstørrelse widefield fluorescens. Eksempler på imaging en fluorescerende fargestoff som etiketter lunge parenchyma og en rød-fluorescerende protein genetisk reporter som etiketter mitokondrier i OS celler i PuMA modellen med AC confocal mikroskopi laserskanning er også diskutert.

Protocol

Alle dyr protokoller som bildebehandling data ble innhentet ble utført med godkjenning av Animal Care og bruk komiteen av National Cancer Institute, National Institutes of Health. Alle dyr protokoller diskutert og portrettert i artikkelen video er godkjent av University of British Columbia dyr omsorg. 1. forberedelse av kreftceller til injeksjon og materialer for PuMA modellen Merk: Løsninger og celler vil være nok for 1 musen. Skalere opp nødvendig hvis mer mus b…

Representative Results

Lav forstørrelse widefield fluorescens mikroskopi For widefield fluorescens mikroskopi av PuMA lunge skiver vises representant bilder og kvantifisering data i figur 2C, og figur 4A og B. Metastatisk propensities for høy og lav metastatisk cellelinjer er visuelt tydelig over progressiv tidspunkt. MNNG celler kan effektivt kolo…

Discussion

Følgende tekniske artikkelen beskriver noen praktiske sider ved PuMA modellen i å studere lunge kolonisering i OS. Noen viktige skritt i protokollen der forskere bør ta ekstra forsiktighet omfatter følgende:

a) cannulation av trachea. Luftrøret kan lett skades mens dissekere den omkringliggende muskler og bindevev. I tillegg kan nålen av kateter lett bli presset gjennom luftrøret. Oppmerksom på hvordan skråkant nålen går inn i luftrøret ved innsetting av kanyle.

<p class="jove_…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gjerne takke Dr. Arnulfo Mendoza som gitt opplæring i PuMA teknikken. I tillegg ønsker vi å erkjenne Dr. Chand Khanna, Susan Garfield (NCI/NIH), og Sam Aparicio (BC kreft Agency) for å gi bruk av sine mikroskoper i løpet av denne studien. Denne forskningen ble støttet (delvis) av Intramural forskningsprogrammet av National Institutes of Health, Center for Cancer Research, Pediatric Oncology avdeling. M.M.L. ble støttet av National Institutes av helse Intramural besøke andre Program (pris 15335), og støttes av en Joan Parker Fellowship i metastasering forskning. P.H.S. støttes av British Columbia Cancer Foundation.

Materials

Table 2
Cell culture reagents for A-media, B-media, and complete media
MNNG-HOS ATCC CRL-1547 highly metastatic OS cell line
HOS ATCC CRL-1543 poorly metastatic OS cell line
MG63.3 Amy LeBlanc Laboratory (NCI) N/A highly metastatic OS cell line
MG63 ATCC CRL-1427 poorly metastatic OS cell line
10X M199 media Thermofisher 11825015 Base media for A-media and B-media
Distilled Water (sterilized) Thermofisher 15230-147 Component of A-media & B-media
7.5% sodium bicarbonate solution Thermofisher 25080094 Component of A-media & B-media
Hydrocortizone Sigma-Alrich H6909 Component of A-media & B-media
Retinol acetate-water soluable Sigma-Alrich R0635-5MG Component of A-media & B-media
Penicillin/Streptomycin 10X concentrated (10000 U/ml) solution Thermofisher 15140122 Component of A-media & B-media, complete media.
Bovine insulin solution (10mg/ml) Sigma-Alrich I0516-5ML Component of A-media & B-media
DMEM, high glucose Thermofisher 11965092 Base media of Complete Media
L-Glutamine (200 mM) Thermofisher 25030081 Component of Complete Media
Fetal Bovine Serum Thermofisher 16000044 Component of Complete Media
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline Thermofisher 14190144 Used in cell culture.
Hank’s Buffered Salts Solution, no calcium, no magnesium, no phenol red Thermofisher 14175095 Used to resuspend cell pellet prior to injection
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red Thermofisher 25200114 Used in cell culture.
DAR4M Enzo ALX-620-069-M001 Used to label lung parenchyma.
Name Company Catalog Number Comments
Table 3
Materials for PuMA
Zeiss 710 Confocal LSM Zeiss N/A Upright LSM confocal microscope
Zeiss 780 Confocal LSM Zeiss N/A Inverted LSM confocal microscope
SCID mice Charles River N/A NOD.CB17-Prkdcscid/NcrCrl, female, age 6-8 weeks
GelFoam Harvard Apparatus 59-9863 Used as a support for lung tissue sections.
SeaPlaque Agarose Lonza 50100 Used during insufflation of the lung.
1 ml syringe with 27 gauge needle Fisherscientific 14-826-87 Used for tail vein injection.
10 ml syringe BD 309604 Used for insufflation of the lung.
20 gauge catheter Terumo SR-OX2032CA Used during insufflation of the lung.
Abbott IV extension set (30", Sterile) Medisca 8342 Used during insufflation of the lung.
Alcohol swabs BD 326895 For wiping tail vein before injection
Sterile surgical gloves Fisherscientific Varies with size Asceptic handing of mouse lungs
30 cm ruler Staples Used for insufflation of the lung.
Support stand for ruler Pipette.com HS29022A Used for insufflation of the lung.
35 mm glass-bottomed culture dish Ibidi 81158 Used during imaging of lung slices
Absorbent Underpads with Waterproof Moisture Barrier VWR 56617-014 Used to line the sterile work area in the biological hood.
Catgut Plain Absorbable Suture Braun N/A Used to tie off cannulated trachea.
Name Company Catalog Number Comments
Table 4
Surgical instruments for PuMA
Micro Dissecting Scissors 3.5" Straight Sharp/Sharp Roboz RS-5910 For cutting lung sections
4” (10 cm) Long Serrated Straight Extra Delicate 0.5mm Tip Roboz RS-5132 For manipulating/holding lung sections.
4” (10 cm) Long Serrated Slight Curve 0.8mm Tip Roboz RS5135 For manipulating/holding lung sections.
Thumb Dressing Forceps; Serrated; Delicate; 4.5" Length; 1.3 mm Tip Width Roboz RS-8120 For general dissection.
Thumb Dressing Forceps 4.5" Serrated 2.2 mm Tip Width Roboz RS-8100 For general dissection.
Extra Fine Micro Dissecting Scissors 3.5" Straight Sharp/Sharp, 20mm blade Roboz RS-5880 For general dissection.
Knapp Scissors; Straight; Sharp-Blunt; 27mm Blade Length; 4" Overall Length Roboz RS-5960 For general dissection.

References

  1. Khanna, C., et al. Toward a drug development path that targets metastatic progression in osteosarcoma. Clin Cancer Res. 20 (16), 4200-4209 (2014).
  2. Steeg, P. S. Perspective: The right trials. Nature. 485 (7400), S58-S59 (2012).
  3. Mendoza, A., et al. Modeling metastasis biology and therapy in real time in the mouse lung. J Clin Invest. 120 (8), 2979-2988 (2010).
  4. Hong, S. H., Ren, L., Mendoza, A., Eleswarapu, A., Khanna, C. Apoptosis resistance and PKC signaling: distinguishing features of high and low metastatic cells. Neoplasia. 14 (3), 249-258 (2012).
  5. Lizardo, M. M., et al. Upregulation of Glucose-Regulated Protein 78 in Metastatic Cancer Cells Is Necessary for Lung Metastasis Progression. Neoplasia. 18 (11), 699-710 (2016).
  6. Pouliot, N., Pearson, H. B., Burrows, A. Investigating Metastasis Using In Vitro Platforms. Metastatic Cancer: Clinical and Biological Perspectives. , (2012).
  7. Cameron, M. D., et al. Temporal progression of metastasis in lung: cell survival, dormancy, and location dependence of metastatic inefficiency. Cancer Res. 60 (9), 2541-2546 (2000).
  8. Morrow, J. J., et al. mTOR inhibition mitigates enhanced mRNA translation associated with the metastatic phenotype of osteosarcoma cells in vivo. Clinical Cancer Research. , (2016).
  9. Varghese, H. J., et al. In vivo videomicroscopy reveals differential effects of the vascular-targeting agent ZD6126 and the anti-angiogenic agent ZD6474 on vascular function in a liver metastasis model. Angiogenesis. 7 (2), 157-164 (2004).
  10. Khanna, C., Hunter, K. Modeling metastasis in vivo. Carcinogenesis. 26 (3), 513-523 (2005).
  11. Welch, D. R. Technical considerations for studying cancer metastasis in vivo. Clin Exp Metastasis. 15 (3), 272-306 (1997).
  12. Somasekharan, S. P., et al. YB-1 regulates stress granule formation and tumor progression by translationally activating G3BP1. J Cell Biol. 208 (7), 913-929 (2015).
  13. El-Naggar, A. M., et al. Translational Activation of HIF1alpha by YB-1 Promotes Sarcoma Metastasis. Cancer Cell. 27 (5), 682-697 (2015).
  14. MacDonald, I. C., Groom, A. C., Chambers, A. F. Cancer spread and micrometastasis development: quantitative approaches for in vivo models. Bioessays. 24 (10), 885-893 (2002).
  15. Entenberg, D., et al. A permanent window for the murine lung enables high-resolution imaging of cancer metastasis. Nat Methods. 15 (1), 73-80 (2018).
  16. Kim, Y., et al. Quantification of cancer cell extravasation in vivo. Nat Protoc. 11 (5), 937-948 (2016).
  17. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nat Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
  18. Underwood, E. E. . Quantitative stereology. , (1970).
  19. Tanaka, K., et al. In vivo optical imaging of cancer metastasis using multiphoton microscopy: a short review. Am J Transl Res. 6 (3), 179-187 (2014).
  20. Prouty, A. M., Wu, J., Lin, D. T., Camacho, P., Lechleiter, J. D. Multiphoton laser scanning microscopy as a tool for Xenopus oocyte research. Methods Mol Biol. 322, 87-101 (2006).
  21. Bijgaart, R. J., Kong, N., Maynard, C., Plaks, V. Ex vivo Live Imaging of Lung Metastasis and Their Microenvironment. J Vis Exp. (108), e53741 (2016).
  22. Guha, M., et al. Mitochondrial retrograde signaling induces epithelial-mesenchymal transition and generates breast cancer stem cells. Oncogene. 33 (45), 5238-5250 (2014).
  23. Ren, L., Morrow, J. J., et al. Positively selected enhancer elements endow osteosarcoma cells with metastatic competence. . Nat Med. , (2018).
  24. Ren, L., et al. Metabolomics uncovers a link between inositol metabolism and osteosarcoma metastasis. Oncotarget. 8 (24), 38541-38553 (2017).
  25. Ren, L., et al. Characterization of the metastatic phenotype of a panel of established osteosarcoma cells. Oncotarget. 6 (30), 29469-29481 (2015).
check_url/56332?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lizardo, M. M., Sorensen, P. H. Practical Considerations in Studying Metastatic Lung Colonization in Osteosarcoma Using the Pulmonary Metastasis Assay. J. Vis. Exp. (133), e56332, doi:10.3791/56332 (2018).

View Video