Summary

Laminotomy pour accès de Ganglion de la racine dorsale lombaire et Injection chez le porc

Published: October 10, 2017
doi:

Summary

Nous décrivons une méthode pour laminotomy chez le porc qui donne accès au rachidiens lombaires (DRG) pour injection intraganglionic. Progrès de l’injection sont surveillée de manière et histologiquement confirmé jusqu’à 21 jours après la chirurgie. Ce protocole pourrait être utilisé pour de futures études précliniques impliquant l’injection de DRG.

Abstract

Les ganglions rachidiens (DRG) sont des structures anatomiques bien définies qui contiennent tous les neurones sensitifs primaires au-dessous de la tête. Ce fait rend les cibles intéressantes DRG pour l’injection de nouveaux médicaments destinés à traiter la douleur chronique. Dans des modèles animaux petits, laminectomie a été utilisée pour faciliter l’injection de DRG parce qu’elle implique l’ablation chirurgicale de l’OS vertébral entourant chaque DRG. Nous démontrons une technique d’injection intraganglionic de DRG lombaire dans une espèce animale, nommément, de peste porcine. Laminotomy est effectuée afin de permettre un accès direct à la DRG en utilisant les matériaux, les instruments et les techniques neurochirurgicales standard. Par rapport à la plus vaste retrait d’OS via une laminectomie, nous implémentons laminotomy pour conserver de l’anatomie de la colonne vertébrale tout en assurant un accès suffisant DRG. Des progrès peropératoire d’injection DRG est surveillé à l’aide d’un colorant non toxique. Suite à l’euthanasie au jour postopératoire 21, le succès d’injection est déterminé par histologie pour intraganglionic distribution de 4′, 6-diamidino-2-phénylindole (DAPI). On injecte une solution biologiquement inactif pour démontrer le protocole. Cette méthode pourrait être appliquée à l’avenir précliniques de solutions thérapeutiques cible de DRG. Notre méthodologie devrait faciliter le contrôle de la traduisibilité des paradigmes animaux petits intraganglionic dans une espèce animale. En outre, le présent protocole peut servir une ressource clé pour ceux qui envisagent des études précliniques de l’injection de DRG chez le porc.

Introduction

Les ganglions rachidiens (DRG) sont des collections anatomiquement discrets, neuronales, situées le long de la colonne vertébrale. Chaque DRG contient les neurones sensoriels primaires qui codent et relais des stimuli périphériques au système nerveux central (CNS) des régions spécifiques du corps. Par exemple, la douleur de l’arthrose commence lorsque les récepteurs de la douleur situés sur une articulation perçoivent des stimuli nociceptifs. Ce processus est appelé la nociception. Sensibilisation à long terme des stimuli nociceptifs mène à la douleur chronique 1.

La douleur chronique est un sujet fréquent d’étude préclinique 2 où un seul but est de développer des méthodes utiles pour l’administration ciblée des analgésiques à DRG, telles que l’injection intraganglionic 3. Cependant, DRG sont difficiles d’accès, parce qu’ils résident dans les limites boney du foramen intervertébral 4. Plusieurs groupes ont avec succès surmonter cet obstacle grâce à l’utilisation de la chirurgie de la colonne vertébrale en rongeurs 5,6,7,8,9,10.

Dans la clinique, une laminectomie est une opération courante de la colonne vertébrale et se réfère à l’ablation chirurgicale de la lame vertébrale, érosion ainsi le canal vertébral 11. Incorporation de techniques chirurgicales pour permettre un accès direct DRG a réussi à rongeurs 5,12, cependant, la traduction peut être irréalistes vu différences dans la taille des structures concernées et qui influence pharmacocinétique ou faisabilité technique 13,14. Par exemple, une étude a déterminé le diamètre transversal de la moelle épinière à T10 à 3.0, 7.0 et 8,2 mm pour rat, cochon et l’homme, respectivement le 15. Ainsi, le gros animal modèles mieux approximatives dimensions humaines des structures nerveuses.

Chez le porc, Raore al utilisé laminectomie multi-niveau pour accéder à la moelle épinière cervicale pour plusieurs injections intramédullaires 16. La procédure a été bien tolérée et ont conduit à une phase I essai clinique où des résultats chirurgicaux comparables ont été documentées 17. Ces résultats encouragent la poursuite de l’utilisation de modèles animaux grands précliniques comme prédicteurs de la faisabilité technique et de la sécurité chez les humains.

A ce jour, aucune méthodologie détaillée n’existe pour accès chirurgical et injection de DRG chez une espèce animale. Pour réduire cet écart translationnel, nous rapportons un protocole pour l’exposition DRG et injection via laminotomy chez le porc. Matériaux, instruments et techniques neurochirurgicales standard ont été utilisées et la méthode a été conçue pour imiter la pratique chirurgicale moderne. Nous démontrer intraganglionic injection en utilisant une solution aqueuse de DRG lombaire et confirmer la mise en œuvre réussie par histologie après jour postopératoire 21.

Protocol

toutes les méthodes décrites ici ont été approuvés par l’utilisation Comité (IACUC) de clinique de Mayo et d’institutionnels animalier. 1. prérequis de rigueur et de la reproductibilité pour assurer la rigueur du design, répondent à des normes nationales de laboratoire bonne pratiques soient à tout moment et obtenir l’approbation interne de IACUC (ou Comité similaire) avant tout animal implication dans les expériences de. Remarque : Ce protocole a été c…

Representative Results

Évaluation histologique de propagation d’injection co-SetMise en œuvre réussie d’injection co-Set de DRG est déterminée par une évaluation histologique de DAPI répartie. La technique consiste à positionner la pointe de l’aiguille au centre en trois dimensions de la DRG. Par conséquent, mise en œuvre réussie est déterminée en évaluant l’ampleur du DAPI coloration partir de coupes histologiques tous deux près (sections centrales de DRG) et lointain (périphériques DRG sections) …

Discussion

Nous avons cherché à décrire une méthode d’exposition chirurgicale de DRG via laminotomy et intraganglionic injection chez une espèce animale saine, plus précisément, de peste porcine. Chez les rongeurs, une méthode similaire a été détaillée 12 et utilisé pour fournir des agents pharmacologiques conventionnels 8,10 et vecteurs viraux 6,7,<sup clas…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

L’étude a été réalisée avec le soutien de la Fondation de la famille Schulze (pour le certificat).

Materials

Large humane animal sling Britz & Company 002539 Modified to include abdominal aperture
Adhesive patient return electrode – 9 inch Medtronic E7506
Ranger blood & fluid warming system 3M 24500
Lactated Ringer's fluid Hospira 0409-7953-09
Force air warming device 3M 77500
Duraprep solution with applicator, 26 ml (0.7% iodine povacrylex, 74% isopropyl alcohol 3M 8630
Sterile disposable surgical towels Medline MDT2168286
Ioban 2 incise drape 3M 6651EZSB
Disposable suction canister and tubing Medline DYND44703H
Button switch electrosurgical monopolar pencil Medtronic E2450H
Fine smooth straight bipolar electrosurgical forceps, 4 1/2 inch Bovie A826
#15 blade Miltex 4-315
#11 blade Miltex 4-311
4×4 surgical gauze Dynarex 3262
Weitlaner self-retaining retractor, 8 inch Miltex 11-618
Meyerding self-retaining retractor, 1×2 3/8 inch Sklar 42-2078
Gelpi self-retaining retractor, 7 inch Sklar 60-6570
Freer elevator, 5 mm Medline MDS4641518F
Bone wax Ethicon W31G
Spurling intervertebral disc rongeur, 3 mm Sklar 42-2852
Spurling 45-degree, up-biting Kerrison rongeur, 2 mm Medline MDS4052802
Leksell angled rongeur, 2 mm Sklar 40-4097
Gelfoam, size 50 Pfizer AZL32301
Cottonoid patty Medtronic 8004007
Frazier suction tip, 6 Fr Sklar 50-2006
Frazier suction tip, 10 Fr Sklar 50-2010
Dandy blunt right angle nerve hook Medline MDS4005220
Nylon suture, 6-0 Ethicon 697G
Castroviejo smooth micro needle holder Medline MDG2428614
22 gauge Quinke point spinal needle Halyard Health 18397
32 gauge CED needle with locking Luer hub See comments n/a As in: Pleticha, J., Maus, T.P., Christner, J.A., Marsh, M.P., Lee, K.H., Hooten, W.M., Beutler, A.S. Minimally invasive convection-enhanced delivery of biologics into dorsal root ganglia: validation in the pig model and prospective modeling in humans. Technical note. J Neurosurg. 121(4), 851-8 (2014).
Polyethylene tubing, 5 feet Scientific Commodities BB31695-PE/05
Monoject syringe, 3 ml Kendall SY15352
NanoJet syringe pump Chemyx 10050
DAPI Sigma-Aldrich D9542
Fast Green FCF Sigma-Aldrich F7252
Bulb irrigation syringe Medline DYND20125
Fine-toothed Adson forceps Medline MDS1000212
Vicryl suture, 0 Ethicon J603H
Vicryl suture, 2-0 Ethicon J317H
Needle counter Medline NC20FBRGS
Steri-strip skin closure, 1/2×4 inch 3M R1547

References

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Unger, M. D., Maus, T. P., Puffer, R. C., Newman, L. K., Currier, B. L., Beutler, A. S. Laminotomy for Lumbar Dorsal Root Ganglion Access and Injection in Swine. J. Vis. Exp. (128), e56434, doi:10.3791/56434 (2017).

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