Summary

Laminotomy for lumbale Dorsal Root Ganglion og injeksjon i svin

Published: October 10, 2017
doi:

Summary

Vi beskriver en metode for laminotomy i svin som gir tilgang til lumbale dorsal root Ganglion (DRG) for intraganglionic injeksjon. Injeksjon fremgang overvåkes intraoperatively og histologisk bekreftet opp til 21 dager etter operasjonen. Denne protokollen kan brukes for fremtidig prekliniske studier som involverer DRG injeksjon.

Abstract

Dorsal root Ganglion (DRG) er anatomisk veldefinert strukturer som inneholder alle primære sensoriske neurons under hodet. Dette faktum gjør DRG attraktiv mål for injeksjon av romanen therapeutics rettet mot behandling av kroniske smerter. I små dyr modeller, har laminectomy blitt brukt til rette DRG injeksjon fordi det involverer kirurgisk fjerning av ryggvirvel benet rundt hver DRG. Vi viser en teknikk for intraganglionic injeksjon av lumbale DRG i en stor dyrearter, nemlig svin. Laminotomy utføres for å gi direkte tilgang til DRG bruker standard neurosurgical teknikk, instrumenter og materialer. Sammenlignet med mer omfattende bein flytting via laminectomy, implementere vi laminotomy å spare spinal anatomi mens de oppnår tilstrekkelig DRG tilgang. Intraoperativ utviklingen av DRG injeksjon overvåkes ved hjelp av en ikke-giftig fargestoff. Etter euthanasia på postoperativ dag 21 bestemmes suksess for injeksjon av histology for intraganglionic distribusjon av 4′, 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI). Vi injisere en biologisk inaktive løsning å demonstrere protokollen. Denne metoden kan være brukt i fremtiden prekliniske studier til målet terapeutiske løsninger DRG. Vår metode skal lette testing translatability av intraganglionic liten dyr paradigmer i en stor dyrearter. I tillegg kan denne protokollen tjene som en viktig ressurs for de som planlegger prekliniske studier av DRG injeksjon i svin.

Introduction

Dorsal root Ganglion (DRG) er anatomisk diskret, neuronal samlinger ligger langs virvelsøylen. Hver DRG inneholder primære sensoriske neurons som kode og videresender eksterne stimuli til sentralnervesystemet (CNS) fra bestemte kroppen regioner. For eksempel, begynner smerten av slitasjegikt når smerte reseptorene ligger omtrent en felles oppfatter skadelige stimuli. Denne prosessen kalles nociception. Langsiktig bevissthet om skadelige stimuli fører til kroniske smerter 1.

Kronisk smerte er en hyppig prekliniske studie 2 der ett mål er å utvikle nyttige metoder for målrettet levering av smertestillende til DRG, som intraganglionic injeksjon 3. Men DRG er vanskelige å finne fordi de befinner seg i boney rammen av intervertebral foramina 4. Flere grupper har med hell løse dette problemet ved hjelp av ryggraden kirurgi i gnagere 5,6,7,8,9,10.

I klinikken, laminectomy er en vanlig ryggraden operasjon og refererer til kirurgisk fjerning av ryggvirvel lamina, og dermed unroofing den vertebral kanal 11. Innlemmelse av kirurgiske teknikker råd DRG direkteforbindelser til har vært vellykket i gnagere 5,12, men oversettelse kan være urealistisk vurderer forskjeller i størrelsen på relevante strukturer og hvordan det påvirker farmakokinetikken eller teknisk gjennomførbarhet 13,14. For eksempel bestemt en studie tverrgående ryggmargen diameteren på T10 3.0, 7.0 og 8.2 mm for rotte, gris og menneskelige, henholdsvis 15. Dermed modeller store dyr bedre tilnærmet menneskelige mål av nervøs strukturer.

I svin brukt Raore et al. multi-level laminectomy tilgang til cervical ryggmargen flere intraspinal injeksjoner 16. Prosedyren ble godt tolerert og førte til en fase jeg kliniske der sammenlignbare kirurgisk resultatene var dokumentert 17. Disse resultatene oppfordrer fortsatt bruk av prekliniske store dyr modeller som prediktorer av teknisk gjennomførbarhet og sikkerhet i mennesker.

Hittil finnes ingen detaljert metodikk for kirurgiske og injeksjon av DRG i en stor dyrearter. Hvis du vil begrense dette translasjonsforskning gapet, rapportere vi en protokoll for DRG eksponering og injeksjon via laminotomy i svin. Standard neurosurgical teknikk, instrumenter og materialer ble brukt og metoden ble designet for å etterligne moderne kirurgisk praksis. Vi demonstrere intraganglionic injeksjon med en vandig løsning for lumbale DRG og bekrefte vellykket levering via histology etter postoperativ dag 21.

Protocol

alle metodene som er beskrevet her er godkjent av institusjonelle Animal Care og bruk Committee (IACUC) av Mayo Clinic. 1. forutsetninger av Rigor og reproduserbarhet sikre rigor av design, følger nasjonale standarder for god laboratorium praksis er til enhver tid og få Intern godkjennelse av IACUC (eller lignende komiteen) før alle dyr engasjement i eksperimenter. Merk: Denne protokollen ble utformet for å opprettholde en klinisk trofaste tilnærming. Dermed er material…

Representative Results

Histologic vurdering av injectate oppslagVellykket levering av injectate til DRG bestemmes av histologic vurdering av DAPI spredt. Teknikken innebærer posisjonering pinne-spissen tredimensjonale midt i DRG. Derfor bestemmes vellykket leveranse vurderer omfanget av DAPI flekker fra histologic inndelinger i (sentrale DRG deler) og fjern (eksterne DRG inndelinger) til pinne-spissen. Representerer en vellykket injeksjon av en DRG figur 1A og figur 1B</s…

Discussion

Vi søkte å beskriver en metode for kirurgiske eksponering av DRG via laminotomy og intraganglionic injeksjon i en sunn store dyrearter, spesielt svin. I Red, en lignende metode er detaljert 12 og brukes til å levere konvensjonelle pharmacologic agenter 8,10 og viral vektorer 6,7,9,12 til DRG. Resultat…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Studien ble utført med støtte av Schulze Family Foundation (til A.S.B.).

Materials

Large humane animal sling Britz & Company 002539 Modified to include abdominal aperture
Adhesive patient return electrode – 9 inch Medtronic E7506
Ranger blood & fluid warming system 3M 24500
Lactated Ringer's fluid Hospira 0409-7953-09
Force air warming device 3M 77500
Duraprep solution with applicator, 26 ml (0.7% iodine povacrylex, 74% isopropyl alcohol 3M 8630
Sterile disposable surgical towels Medline MDT2168286
Ioban 2 incise drape 3M 6651EZSB
Disposable suction canister and tubing Medline DYND44703H
Button switch electrosurgical monopolar pencil Medtronic E2450H
Fine smooth straight bipolar electrosurgical forceps, 4 1/2 inch Bovie A826
#15 blade Miltex 4-315
#11 blade Miltex 4-311
4×4 surgical gauze Dynarex 3262
Weitlaner self-retaining retractor, 8 inch Miltex 11-618
Meyerding self-retaining retractor, 1×2 3/8 inch Sklar 42-2078
Gelpi self-retaining retractor, 7 inch Sklar 60-6570
Freer elevator, 5 mm Medline MDS4641518F
Bone wax Ethicon W31G
Spurling intervertebral disc rongeur, 3 mm Sklar 42-2852
Spurling 45-degree, up-biting Kerrison rongeur, 2 mm Medline MDS4052802
Leksell angled rongeur, 2 mm Sklar 40-4097
Gelfoam, size 50 Pfizer AZL32301
Cottonoid patty Medtronic 8004007
Frazier suction tip, 6 Fr Sklar 50-2006
Frazier suction tip, 10 Fr Sklar 50-2010
Dandy blunt right angle nerve hook Medline MDS4005220
Nylon suture, 6-0 Ethicon 697G
Castroviejo smooth micro needle holder Medline MDG2428614
22 gauge Quinke point spinal needle Halyard Health 18397
32 gauge CED needle with locking Luer hub See comments n/a As in: Pleticha, J., Maus, T.P., Christner, J.A., Marsh, M.P., Lee, K.H., Hooten, W.M., Beutler, A.S. Minimally invasive convection-enhanced delivery of biologics into dorsal root ganglia: validation in the pig model and prospective modeling in humans. Technical note. J Neurosurg. 121(4), 851-8 (2014).
Polyethylene tubing, 5 feet Scientific Commodities BB31695-PE/05
Monoject syringe, 3 ml Kendall SY15352
NanoJet syringe pump Chemyx 10050
DAPI Sigma-Aldrich D9542
Fast Green FCF Sigma-Aldrich F7252
Bulb irrigation syringe Medline DYND20125
Fine-toothed Adson forceps Medline MDS1000212
Vicryl suture, 0 Ethicon J603H
Vicryl suture, 2-0 Ethicon J317H
Needle counter Medline NC20FBRGS
Steri-strip skin closure, 1/2×4 inch 3M R1547

References

  1. Millan, M. J. The induction of pain: An integrative review. Prog Neurobiol. 57 (1), 1-164 (1999).
  2. Burma, N. E., Leduc-Pessah, H., Fan, C. Y., Trang, T. Animal models of chronic pain: Advances and challenges for clinical translation. J Neurosci Res. , (2016).
  3. Pleticha, J., Maus, T. P., Beutler, A. S. Future directions in pain management: integrating anatomically selective delivery techniques with novel molecularly selective agents. Mayo Clin Proc. 91 (4), 522-533 (2016).
  4. Standring, S. . The anatomical basis of clinical practice. , (2005).
  5. Fischer, G., et al. Direct injection into the dorsal root ganglion: technical, behavioral, and histological observations. J Neurosci Methods. 199 (1), 43-55 (2011).
  6. Zhao, X., et al. A long noncoding RNA contributes to neuropathic pain by silencing Kcna2 in primary afferent neurons. Nat Neurosci. 16 (8), 1024-1031 (2013).
  7. Xu, Y., Gu, Y., Wu, P., Li, G. W., Huang, L. Y. M. Efficiencies of transgene expression in nociceptive neurons through different routes of delivery of adeno-associated viral vectors. Hum Gene Ther. 14 (9), 897-906 (2003).
  8. Puljak, L., Kojundzic, S. L., Hogan, Q. H., Sapunar, D. Targeted delivery of pharmacological agents into rat dorsal root ganglion. J Neurosci Methods. 177 (2), 397-402 (2009).
  9. Mason, M. R. J., et al. Comparison of AAV serotypes for gene delivery to dorsal root ganglion neurons. Mol Ther. 18 (4), 715-724 (2010).
  10. Jelicic Kadic, A., Boric, M., Kostic, S., Sapunar, D., Puljak, L. The effects of intraganglionic injection of calcium/calmodulin-dependent protein kinase II inhibitors on pain-related behavior in diabetic neuropathy. Neurosci. 256, 302-308 (2014).
  11. Greenberg, M. S. . Handbook of neurosurgery. , (2010).
  12. Yu, H., Fischer, G., Hogan, Q. H. AAV-mediated gene transfer to dorsal root ganglion. Methods Mol Biol. 1382, 251 (2016).
  13. Yaksh, T. L., et al. Pharmacology and toxicology of chronically infused epidural clonidine HCL in dogs. Toxicol Sci. 23 (3), 319-335 (1994).
  14. Federici, T., et al. Surgical technique for spinal cord delivery of therapies: demonstration of procedure in gottingen minipigs. J Vis Exp. (70), e4371 (2012).
  15. Lee, J. H. T., et al. A novel porcine model of traumatic thoracic spinal cord injury. J Neurotrauma. 30 (3), 142-159 (2013).
  16. Raore, B., et al. Cervical multilevel intraspinal stem cell therapy: assessment of surgical risks in Gottingen minipigs. Spine. 36 (3), e164 (2011).
  17. Riley, J., et al. Intraspinal stem cell transplantation in amyotrophic lateral sclerosis: A phase I safety trial, technical note, and lumbar safety outcomes. Neurosurg. 71 (2), 405-416 (2012).
  18. Olmarker, K., Holm, S., Rosenqvist, A., Rydevik, B. Experimental nerve root compression. A model of acute, graded compression of the porcine cauda equina and an analysis of neural and vascular anatomy. Spine. 16 (1), 61-69 (1991).
  19. Bobo, R. H., et al. Convection-enhanced delivery of macromolecules in the brain. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 91 (6), 2076-2080 (1994).
  20. Lonser, R. R., Sarntinoranont, M., Morrison, P. F., Oldfield, E. H. Convection-enhanced delivery to the central nervous system. J Neurosurg. 122 (3), 697-706 (2015).
  21. Shen, J., Wang, H. Y., Chen, J. Y., Liang, B. L. Morphologic analysis of normal human lumbar dorsal root ganglion by 3D MR imaging. AJNR Am J Neuroradiol. 27 (0195–6108 (Print)), 2098-2103 (2006).
  22. Pleticha, J., et al. Minimally invasive convection-enhanced delivery of biologics into dorsal root ganglia: validation in the pig model and prospective modeling in humans. J Neurosurg. 121 (4), 851-858 (2014).

Play Video

Cite This Article
Unger, M. D., Maus, T. P., Puffer, R. C., Newman, L. K., Currier, B. L., Beutler, A. S. Laminotomy for Lumbar Dorsal Root Ganglion Access and Injection in Swine. J. Vis. Exp. (128), e56434, doi:10.3791/56434 (2017).

View Video