Summary

Optimale Vorbereitung von Formalin fixiert Proben für Peptid-Matrix basierten Assisted Laser Desorption/Ionisierung Massenspektrometrie Imaging-Workflows

Published: January 16, 2018
doi:

Summary

Dieses Protokoll beschreibt eine reproduzierbare und zuverlässige Methode für die Sublimation-basierte Erstellung von Formalin fixiert Gewebe für bildgebende Massenspektrometrie bestimmt.

Abstract

Die Verwendung von Matrix-unterstützte Laser Desorption/Ionisierung hat Massenspektrometrie imaging (MALDI MSI) schnell erweitert, da diese Technik eine Vielzahl von Biomolekülen von Drogen und Lipide zu N-Glykane analysiert. Obwohl verschiedene Probe Präparationstechniken vorhanden, bleibt Erkennung Peptide aus Formaldehyd konserviert Gewebe eine der schwierigsten Herausforderungen für diese Art der massenspektrometrischen Analyse. Aus diesem Grund haben wir erstellt und optimiert eine robuste Methode, die die räumliche Informationen innerhalb der Probe, während die größte Anzahl an ionizable Peptide zu entlocken bewahrt. Wir haben auch zum Ziel, zu erreichen dies in eine kostengünstige und einfache Möglichkeit, wodurch möglichen Voreingenommenheit oder Vorbereitung Fehler, die auftreten kann, wenn mit Instrumenten automatisierten. Das Endergebnis ist eine reproduzierbare und kostengünstige Protokoll.

Introduction

Matrix-unterstützte Laser Desorption/Ionisierung Massenspektrometrie imaging (MALDI MSI) als Bild-basierte Technik für zwei Jahrzehnte1,2, eine Reihe von Biomolekülen einschließlich Analyse beschäftigt: Lipide3, Peptide2 ,4, Proteine2,5, Metaboliten6,7, N-Glykane8und synthetische Moleküle wie z. B. Medikamente9,10. Die Anzahl der Publikationen zeigen die Nützlichkeit dieser Technik sind deutlich über der letzten Dekade6,11,12,13gewachsen. Bestimmte Moleküle wie Lipide, sind relativ einfach, über MALDI MSI zu analysieren, wie sie leicht aufgrund ihrer chemischen Natur ionisieren und erfordern daher wenig Vorbereitung3. Jedoch sind die Schritte erforderlich, um effektiv diese Moleküle ionisieren für schwieriger Ziele wie Peptide, umfangreich und in der Regel kompliziert14. Derzeit gibt es nur wenige Veröffentlichungen, die darauf abzielen, Adresse oder demonstrieren Reproduzierbarkeit in den Methoden, die eingesetzt werden, um Gewebe für dieses einzigartige visuelle Technik15vorzubereiten. Aus diesem Grund haben wir zusammengestellt, Beobachtungen und Optimierungen umgesetzt in einer einzigen, einfach zu implementieren, Methodik, die wenig bis gar keine Änderung für die Analyse von Peptiden aus einem Formaldehyd erfordern sollte vernetzt Gewebe Quelle14.

In dieser Handschrift haben wir eine validierte, low-cost reproduzierbare Methode zum Nachweis und zur räumlichen Zuordnung von Peptiden, generiert von Formalin fixiert gefroren (FFF) und Formalin fixierten Paraffin-eingebetteten (FFPE) Gewebeschnitte beschrieben. Diese Methode erfordert und verlassen Sie sich auf spezielle Instrumentierung3. Insbesondere gehen wir auf die vielen Aspekte der spezialisierten Probenvorbereitung notwendig, Peptide zu analysieren; Schritte wie Antigen-Retrieval-16 und Matrix-Beschichtung. Unser Protokoll nutzt auch preiswerte Geräte und Reagenzien, wodurch diese Methodik zugänglich zu einer größeren Gemeinschaft, die sonst nicht die Alternative Roboter Apparat17leisten.

Die Beweggründe für die Entwicklung einer manuellen Probe Vorbereitung Methode hatte zwei Ziele: Erstens die Verwendung von einem Sublimator schafft eine konsistente und homogene Beschichtung von Matrix-Kristalle, ~ 1 µm Länge18, etwas Unerreichbares mit häufiger Spritzen sind, Techniken. Zweitens die relativ kleine Einrichtung Kosten: die Gesamtkosten für den benutzerdefinierten Apparat war <$ 1500 AUD. Wir beachten Sie, dass in Bezug auf Wirtschaftlichkeit, der Preis pro Probe viel billiger ist, wenn keine Roboter Maschinen beteiligt ist. Die Verwendung von Sublimation wurde zuvor jedoch nach bestem Wissen und Gewissen, berichtet schrittweise Methoden, die diesen Prozess beschreiben und Probenvorbereitung nicht berichtet noch in der Literatur beschrieben worden.

Dieses Protokoll soll Forscher zu unterstützen, Zugang zu einem MALDI-Massenspektrometer und die Absicht auf die Generierung von räumlichen Informationen in Bezug auf ein Bio-Molekül des Interesses19. MALDI MSI ist im Wesentlichen eine Form der histologischen screening, verlässt sich nicht auf Antikörper oder2Flecken.

Protocol

Achtung: Alle geltenden Sicherheitsvorkehrungen sollten befolgt werden, bei der Durchführung dieses Verfahrens, einschließlich der Verwendung von geeigneter persönlicher Schutzausrüstung (PSA) (z.B. Kittel, Nitril-Handschuhe, Schutzbrille, etc.) 1. Vorbereitung der Reagenzien und Geräte Vorbereitung der Lösungen 500 mL Carnoys Flüssigkeit vorbereiten, mischen Sie 100 % Ethanol (EtOH), Chloroform und Eisessig in einem 6:3:1 V/V/V-Ve…

Representative Results

Wenn korrekt befolgt, produziert dieses Protokoll Bilder, die eindeutig die grobe Morphologie des Gewebes ohne jegliche Kratzer oder andere Deformationen (Abbildung 1). Die ideale Validierung für eine korrekt durchgeführte Probenvorbereitung ist, dass die Fähigkeit zur Unterscheidung zwischen verschiedenen physikalischen Strukturen durch eine Änderung des Moleküls wird angezeigt (Abbildung 2). <p class="jove_content" fo:…

Discussion

Dieses Protokoll wurde entwickelt, um die Generation der ionizable Molekülsorten ohne Verlagerung des Analyten zu maximieren. Die Schlüsselfaktoren betreffen mit dem gleichen oberstes Prinzip bei der Matrix, die Probe zu verdauen, oder recrystallizing nach Sublimation24Anwendung; nämlich, dass eine sogar Ablagerung von Dampf, Matrix oder andernfalls erstellt und gepflegt werden muss. Pipettieren Lösungsmittel wäscht für Rekristallisation und Verdauung, gleichmäßig unter der Probe verhinder…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Die Autoren möchte Sydney Medical School Foundation und Blues und Stiftung für die Finanzierung Bestandteil dieser Arbeit durch ihre PhD-Stipendien-Programm für die Alzheimer-Krankheit-Forschung und ein ARC Entdeckung Zuschuss (DP160102063), PKW anerkennen.

Materials

Cryo Microtome Leica CM3050 For preparation and section of tissue.
Indium Tin Oxide Microscope slides Bruker 8237001 For preparation and section of tissue.
Coplin Jars Sigma Aldrich S5516 For preparation and section of tissue.
Pressure Cooker Kambrook KPR620BSS For preparation and section of tissue.
Sublimator Chem Glass NA For sublimation procedure. Similar in design to the CG-3038 however it was custom made 
Sand bath NA NA For sublimation procedure. Fine grade river sand held in folded aluminium foil sourced from outside not from any specific company
Glass Petri Dish Sigma Aldrich CLS70165100 For sublimation procedure.
Vacuum Pump NA NA For sublimation procedure. Sourced as a spare part from an old mass spectrometer 
Cold trap Chem Glass CG-4510-02 For sublimation procedure.
Hot Plate John Morris EW-15956-32.  For sublimation procedure.
Plastic petri dish Sigma Aldrich Z717223 For sublimation procedure.
37 °C incubator NA NA For sublimation procedure. Not applicable, incubator is non sterile and over 30 years old 
Blotting paper Sigma Aldrich P7796 For sublimation procedure.
Nitrocellulose  Sigma Aldrich N8395 For washing of slides.
Acetone Sigma Aldrich 650501 For washing of slides.
Xylene Sigma Aldrich 214736 For washing of slides.
100% EtOH Sigma Aldrich 1.02428 For washing of slides.
70% EtOH Sigma Aldrich NA For washing of slides. Made in lab from 95% stock ethanol 
Chloroform Sigma Aldrich C2432 For washing of slides.
Glacial Acetic Acid Sigma Aldrich ARK2183 For washing of slides.
Tris HCL pH 8.8 Sigma Aldrich TRIS-RO For proteolytic cleavage. Powder made to 1M followed by equilibration with 32% HCl to PH 8.8
Milli Q Ultra-Pure Water Sigma Aldrich NA For proteolytic cleavage. Purification performed in house by sartorious water purification system
Ammonium Bircarbonate Sigma Aldrich A6141 For proteolytic cleavage. 
Trypsin Sigma Aldrich T0303 For proteolytic cleavage. 
CHCA Matrix Sigma Aldrich C2020 For recrystallisation.
Acetonitrile Sigma Aldrich 1.00029 For recrystallisation.
Trifluoroacetic Acid (TFA)  Sigma Aldrich 302031 For recrystallisation.

References

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O’Rourke, M. B., Padula, M. P., Smith, C., Youssef, P., Cordwell, S., Witting, P., Sutherland, G., Crossett, B. Optimal Preparation of Formalin Fixed Samples for Peptide Based Matrix Assisted Laser Desorption/Ionization Mass Spectrometry Imaging Workflows. J. Vis. Exp. (131), e56778, doi:10.3791/56778 (2018).

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