Summary

Инъекции Retroductal наночастиц в мышиных подчелюстной железы

Published: May 03, 2018
doi:

Summary

Доставка местных лекарств в подчелюстной желез представляет интерес в понимании слюнных желез биологии и для развития новых терапевтических средств. Мы представляем обновленную и подробную retroductal инъекции протокол, призванных повысить точность доставки и экспериментальной воспроизводимость. Представленное здесь приложение является поставка полимерных наночастиц.

Abstract

Две общие цели терапии слюнной железы являются профилактика и лечение дисфункции ткани после либо аутоиммунных или радиационной травмы. Локально поставляя биологически активных соединений в слюнных желез, большей концентрации в тканях можно безопасно достичь против системного администрирования. Кроме того от ткани-мишени эффекты от экстра железистой накопление материала могут быть значительно сокращены. В этой связи retroductal инъекции является широко используемый метод для исследования слюнных желез биологии и патофизиологии. Администрация Retroductal факторов роста, Главные ячейки, аденовирусных векторов и малые молекулы наркотиков было показано для поддержки функции железы в месте травмы. Ранее мы показали эффективность стратегии наночастиц siRNA retroductally вводят для поддержания функции железы после облучения. Здесь, подробно высокоэффективным и воспроизводимый метод для администрирования наноматериалов в мышиных подчелюстной железы через проток Wharton (рис. 1). Мы опишем доступ к ротовой полости и наметить шаги, необходимые для cannulate Wharton протока, с дальнейших наблюдений, выступающей в качестве проверки качества на протяжении всей процедуры.

Introduction

Слюнные железы дисфункция имеет много этиологии, включая Шёгрен синдром, аутоиммунных опосредованной потери функциональных секреторной ткани, и индуцированного излучения гипосаливация (Рог), общей sequella лучевой терапии рака головы и шеи1. Потеря функции слюнных вследствие либо условие предрасполагает лица устные и системные инфекции, кариес, пищеварения и глотанием дисфункция, нарушение речи и депрессия1,2,3. В результате качество жизни значительно страдает, с мероприятиями, ограничиваясь временное облегчение симптомов, а не лечения4. Расследовать Роман терапии в естественных условиях, она представляет интерес для администрирования биоактивных соединений непосредственно на слюнные железы.

Retroductal инъекции является ценным методом доставить биологически активных соединений непосредственно в слюнных желез и проверить эффективность в болезни, травмы, или под нормальной ткани гомеостаза. Три основных слюнных желез являются околоушной (PG), подчелюстной (SMG) и сублингвально (SLG), все из которых пустым в полости через выделительную воздуховодов. Анатомия мышиных SMG разрешает прямой доступ через катетеризации Wharton протока, расположенный в полу рот под язык5. После катетеризации, сольватированного препараты можно применять непосредственно SMG. После родов retroductal, экстра железистой диффузии ограничивается окружающие ткани капсулу, которая регулирует обмен материала с окружающими структуры6. SMG и ее протоков аналогичным образом структурированы в организме человека и регулярно осуществляется во время SMG хирургии и sialoendoscopy7. В организме человека и мышей PG также доступен через Stensen в воздуховод в слизистой8.

В мышиных моделях Рог SMG retroductal инъекции был использован для доставки терапии, включая факторы роста, Главные ячейки, аденовирусных векторов, цитокинов и Антиоксидантная соединений модулировать клеточный ответ на травмы, и уменьшить полученный ткани ущерб5,9,10,11,12,13,14,,1516. Наиболее заметным клинический успех retroductal инъекции является администрация аденовирусных вектора прямого выражения воды канала (Аквапорин 1; AQP1) у больных после радиации для головы и шеи рак17.

Ранее мы разработали и показана эффективность retroductally вводят полимерные наночастиц siRNA системы защиты слюнной железы от Рог-11,18,19,20. Как расширение нашей прошлой работы здесь, мы демонстрируем, что наш протокол для retroductal SMG инъекций с использованием дневно обозначенные наночастиц (NP), способный погрузки и доставки иначе слаборастворимых лекарств21,22, 23.

Мы синтезированных NP из сополимера диблок состоит из поли (alt Стиролмалеиновый anhydride)-b-poly(styrene) (КСМК) путем полимеризации реверсивные добавлением цепи фрагментации (РАФТ), как описано ранее,21. Через обмен растворителей эти полимеры спонтанно самостоятельно собрать в структуры NP мицеллы с гидрофобным интерьера и гидрофильные наружных21. NPs помечены Техас-красный Флюорофор разрешить проверку NP доставки в желез без ущерба для животного. Живут животных изображений и SMG иммуногистохимия показано на 1 час и 1 день после инъекции.

Это обновление и воспроизводимые катетеризации протокол должен позволить другим для достижения retroductal инъекции. Мы ожидаем, что эта изысканная техника станет критическим в vivo исследований и лечебных развития24,25.

Protocol

Все процедуры в естественных условиях , изложенных ниже были утверждены Комитетом университета по ресурсам животных в Университете Рочестер, Рочестер, Нью-Йорк. 1. Подготовка С помощью трубы 32G внутричерепных катетер с вставкой проволоки, резать трубы сформиро?…

Representative Results

Retroductal инъекция может использоваться для администрирования сети для мышиных SMG (рис. 1). Здесь мы поставляем 50 мкг КСМК NPs, помечены красной Техас Флюорофор. Правильное размещение мыши позволяет легким доступом и визуализ…

Discussion

Retroductal инъекций имеет решающее значение для локализованных лекарств в слюнные железы. Эта техника имеет применения в скрининг терапевтических агентов для условий, включая Шегрена и Рог9,10,28. Прямая лекарств в SMG через retroductal инъекция об?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Исследования в этой публикации было поддержано Национального Института стоматологии и челюстно-лицевой исследований (NIDCR) и национального института рака (NCI) национальных институтов здравоохранения под награду номер R56 DE025098, UG3 DE027695 и F30 CA206296. Содержание является исключительно ответственности авторов и не обязательно отражают официальную точку зрения национальных институтов здоровья. Эта работа была также поддержана NSF DMR 1206219 и получила инновации в устной Уход награды (2016).

Мы хотели бы поблагодарить за помощь в выполнении экспериментов ИВИС Джейн Gavrity. Мы хотели бы поблагодарить Карен Bentley за ее вклад и помощь в выполнении EM. Мы хотели бы поблагодарить за его помощь в ИХС Weng Пей-Lun. Мы хотели бы поблагодарить Мэтью Ingalls за его помощь в подготовке рис. Мы хотели бы поблагодарить д-ра Элейн Smolock и Эмили Ву для критических чтении этой рукописи.

Materials

Pilocarpine hydrochloride Sigma Aldrich P6503 Pilocarpine
Student Vannas Spring Scissors Fine Science Tools 91500-9 Spring Scissors for Tracheostomy
Sterile Saline Solution Medline RDI30296H Saline
Dumont #7 Forceps Fine Science Tools 11274-20 Curved Forceps
Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 11251-10 Straight Forceps
Standard Pattern Forceps Fine Science Tools 11000-12 Blunt Forceps
Fine Scissors- Tungsten Carbide Fine Science Tools 14568-09 Dissection Scissors
Microhematocrit Heparinized Capillary Tubes Fisher Scientific 22362566 Capillary tubes
Lubricant Eye Ointment Refresh N/A Refresh Lacri-Lube
Goat polyclonal anti-Nkcc1 Santa Cruz Biotech SC-21545 Nkcc1 Antibody
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride) Thermo Fisher Scientific D1306 DAPI
GraphPad Prism GraphPad ver6.0 Statistical Software
Cotton tipped applicator Medline MDS202000 Applicator for eye ointment
0.5cc Insulin Syringe, 29G x 1/2" BD 7629 Syringe for intraperitoneal injection

References

  1. Miranda-Rius, J., Brunet-Llobet, L., Lahor-Soler, E., Farre, M. Salivary Secretory Disorders, Inducing Drugs, and Clinical Management. International Journal Of Medical Sciences. 12 (10), 811-824 (2015).
  2. Acauan, M. D., Figueiredo, M. A. Z., Cherubini, K., Gomes, A. P. N., Salum, F. G. Radiotherapy-induced salivary dysfunction: Structural changes, pathogenetic mechanisms and therapies. Archives of Oral Biology. 60 (12), 1802-1810 (2015).
  3. Dirix, P., Nuyts, S., Vander Poorten, V., Delaere, P., Van den Bogaert, W. The influence of xerostomia after radiotherapy on quality of life. Supportive Care in Cancer. 16 (2), 171-179 (2008).
  4. Vissink, A., et al. Clinical management of salivary gland hypofunction and xerostomia in head-and-neck cancer patients: successes and barriers. International Journal of Radiation Oncology Biology Physics. 78 (4), 983-991 (2010).
  5. Delporte, C., et al. Increased fluid secretion after adenoviral-mediated transfer of the aquaporin-1 cDNA to irradiated rat salivary glands. Proceedings of the National Academy of Sciences. 94 (7), 3268-3273 (1997).
  6. Samuni, Y., Baum, B. J. Gene delivery in salivary glands: from the bench to the clinic. Biochimica et Biophysica Acta. 1812 (11), 1515-1521 (2011).
  7. Beahm, D. D., et al. Surgical approaches to the submandibular gland: A review of literature. International Journal of Surgery. 7 (6), 503-509 (2009).
  8. Zheng, C., Shinomiya, T., Goldsmith, C. M., Di Pasquale, G., Baum, B. J. Convenient and reproducible in vivo gene transfer to mouse parotid glands. Oral diseases. 17 (1), 77-82 (2011).
  9. Zheng, C., et al. Prevention of Radiation-Induced Salivary Hypofunction Following hKGF Gene Delivery to Murine Submandibular Glands. Clinical Cancer Research. 17 (9), 2842-2851 (2011).
  10. Okazaki, Y., et al. Acceleration of rat salivary gland tissue repair by basic fibroblast growth factor. Archives of Oral Biology. 45 (10), 911-919 (2000).
  11. Arany, S., Benoit, D. S., Dewhurst, S., Ovitt, C. E. Nanoparticle-mediated gene silencing confers radioprotection to salivary glands in vivo. Molecular Therapy. 21 (6), 1182-1194 (2013).
  12. Cotrim, A. P., Sowers, A., Mitchell, J. B., Baum, B. J. Prevention of irradiation-induced salivary hypofunction by microvessel protection in mouse salivary glands. Molecular Therapy. 15 (12), 2101-2106 (2007).
  13. Redman, R. S., Ball, W. D., Mezey, E., Key, S. Dispersed donor salivary gland cells are widely distributed in the recipient gland when infused up the ductal tree. Biotechnic & Histochemistry. 84 (6), 253-260 (2009).
  14. Grundmann, O., Fillinger, J. L., Victory, K. R., Burd, R., Limesand, K. H. Restoration of radiation therapy-induced salivary gland dysfunction in mice by post therapy IGF-1 administration. BMC Cancer. 10, 417-417 (2010).
  15. Limesand, K. H., et al. Insulin-Like Growth Factor-1 Preserves Salivary Gland Function After Fractionated Radiation. International Journal of Radiation Oncology Biology Physics. 78 (2), 579-586 (2010).
  16. Marmary, Y., et al. Radiation-induced loss of salivary gland function is driven by cellular senescence and prevented by IL-6 modulation. Cancer Research. , (2016).
  17. Baum, B. J., et al. Early responses to adenoviral-mediated transfer of the aquaporin-1 cDNA for radiation-induced salivary hypofunction. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (47), 19403-19407 (2012).
  18. Arany, S., et al. Pro-apoptotic gene knockdown mediated by nanocomplexed siRNA reduces radiation damage in primary salivary gland cultures. Journal of Cellular Biochemistry. 113 (6), 1955-1965 (2012).
  19. Benoit, D. S. W., Henry, S. M., Shubin, A. D., Hoffman, A. S., Stayton, P. S. pH-responsive polymeric siRNA carriers sensitize multidrug resistant ovarian cancer cells to doxorubicin via knockdown of polo-like kinase 1. Molecular pharmaceutics. 7 (2), 442-455 (2010).
  20. Malcolm, D. W., Varghese, J. J., Sorrells, J. E., Ovitt, C. E., Benoit, D. S. W. The Effects of Biological Fluids on Colloidal Stability and siRNA Delivery of a pH-Responsive Micellar Nanoparticle Delivery System. ACS Nano. , (2017).
  21. Baranello, M. P., Bauer, L., Benoit, D. S. Poly(styrene-alt-maleic anhydride)-based diblock copolymer micelles exhibit versatile hydrophobic drug loading, drug-dependent release, and internalization by multidrug resistant ovarian cancer cells. Biomacromolecules. 15 (7), 2629-2641 (2014).
  22. Wang, Y., et al. Fracture-Targeted Delivery of β-Catenin Agonists via Peptide-Functionalized Nanoparticles Augments Fracture Healing. ACS Nano. 11 (9), 9445-9458 (2017).
  23. Baranello, M. P., Bauer, L., Jordan, C. T., Benoit, D. S. W. Micelle Delivery of Parthenolide to Acute Myeloid Leukemia Cells. Cellular and Molecular Bioengineering. 8 (3), 455-470 (2015).
  24. Kuriki, Y., et al. Cannulation of the Mouse Submandibular Salivary Gland via the Wharton’s Duct. Journal of Visualized Experiments. (51), e3074 (2011).
  25. Nair, R. P., Zheng, C., Sunavala-Dossabhoy, G. Retroductal Submandibular Gland Instillation and Localized Fractionated Irradiation in a Rat Model of Salivary Hypofunction. Journal of Visualized Experiments. (110), (2016).
  26. Wang, Y., Malcolm, D. W., Benoit, D. S. W. Controlled and sustained delivery of siRNA/NPs from hydrogels expedites bone fracture healing. Biomaterials. 139 (Supplement C), 127-138 (2017).
  27. Hoffman, M. D., Van Hove, A. H., Benoit, D. S. W. Degradable hydrogels for spatiotemporal control of mesenchymal stem cells localized at decellularized bone allografts. Acta Biomaterialia. 10 (8), 3431-3441 (2014).
  28. Nguyen, C. Q., Yin, H., Lee, B. H., Chiorini, J. A., Peck, A. B. IL17: potential therapeutic target in Sjogren’s syndrome using adenovirus-mediated gene transfer. Laboratory Investigation. 91 (1), 54-62 (2011).
check_url/57521?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Varghese, J. J., Schmale, I. L., Wang, Y., Hansen, M. E., Newlands, S. D., Ovitt, C. E., Benoit, D. S. W. Retroductal Nanoparticle Injection to the Murine Submandibular Gland. J. Vis. Exp. (135), e57521, doi:10.3791/57521 (2018).

View Video