Les progéniteurs myéloïdes qui donnent les neutrophiles, les monocytes et les cellules dendritiques (CD) peuvent être identifiés en et isolées de la moelle osseuse de souris pour les analyses hématologiques et immunologiques. Par exemple, les études sur les propriétés moléculaires et cellulaires des populations progéniteur myéloïde peuvent révéler les mécanismes sous-jacents de transformation leucémique, ou démontrer comment le système immunitaire réagit à l’exposition de l’agent pathogène. Auparavant les stratégies cytométrie en flux décrits pour l’identification des progéniteurs myéloïdes ont permis des avancées significatives dans de nombreux domaines, mais les fractions qu'ils identifient sont très hétérogènes. Les stratégies de blocage plus couramment utilisés définissent des fractions de la moelle osseuse qui sont enrichies pour les populations souhaitées, mais contiennent également un grand nombre de progéniteurs « contaminer ». Nos études récentes ont résolu une grande partie de cette hétérogénéité et le protocole que nous présentons ici permet l’isolement des 6 sous-populations d’oligopotent et progéniteurs myéloïdes lineage-commis de 2 décrit précédemment les fractions de la moelle osseuse. Le protocole décrit 3 stades : des cellules d’isolement 1) de la moelle osseuse, 2) enrichissement de progéniteurs hématopoïétiques par cellule magnétique activé tri (appauvrissement de la lignée de MACS) et 3) identification de sous-ensembles progéniteur myéloïde par cytométrie en flux (y compris fluorescence-lancée de cellules tri, FACS, si vous le souhaitez). Cette approche permet la quantification de l’ancêtre et l’isolement pour une variété d’applications in vitro et in vivo et a déjà donné lieu à nouveau aperçu de voies et les mécanismes des neutrophiles, monocytes et différenciation de DC.